- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Методы культивирования анаэробов. Выделение и культивирование сульфатвосстанавливающих бактерий
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Цианобактерии. Методы исследований. Выделение. Микроскопирование. Изучение особенностей строения клеток.
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Изучение бактерий окисляющих органические вещества. Выделение уксуснокислых бактерий. Окрашивание. Микроскопия. Индикация уксусной кислоты.
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •Микроскоп биологический мбр-3 или аналогичный
- •Спиртовка.
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Выделение спорообразующих бактерий. Методы окраски спор
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •Микроскоп биологический мбр-3 или аналогичный
- •Спиртовка.
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
5. Ход работы
Окраска спор у бактерий по методу Пешкова
На предметное стекло микробиологической петлей наносят мазок из культуры микроорганизма. Мазок высушивают на воздухе, фиксируют в пламени гарелки изаливают его раствором метиленового синего по Леффлеру. Краситель доводят до кипения, держа стекло над пламенем гарелки. По мере испарения красителя добавляют его новые порции. Продолжительность окраски с момента закипания – 20 с. Затем предметное стекло охлаждают, препарат промывают водой, что вызывает обесцвечивание цитоплазм, и докрашивают 30 с 0,5%-ным водным раствором нейтрального красного. Вновь промывают водой, подсушивают и микроскопируют под иммерсией, пользуясь объективом МИ-90. При правильном окрашивании клетки имеют красный, а споры – синий цвет. Микроскопическую картину зарисовывают.
Окраска спор у бактерий по методу Циля
На предметное стекло микробиологической петлей наносят мазок из культуры микроорганизма. Мазок высушивают на воздухе и обрабатывают протравой, заливая его 5%-ным раствором хромовой кислоты на 5 мин.
Мазок промывают водой, покрывают квадратиком фильтровальной бумаги и заливают раствором карболового фуксина. Окрашивают мазок 6—8 мин при нагревании до образования паров, держа стекло высоко над пламенем горелки. По мере испарения краситель периодически добавляют, не давая препарату подсохнуть.
Далее мазок тщательно промывают водой и дифференцируют в 1%-ном растворе серной кислоты 30—60 секунд до приобретения им слабо-розовой окраски. Краситель вымывается серной кислотой и полностью уходит из цитоплазмы вегетативных клеток. Зона проспоры в клетках - спороносцах и высыпавшиеся споры остаются окрашенными.
После дифференциации мазок немедленно промывают водой и докрашивают раствором метиленового синего 10—15 мин. Затем мазок окончательно промывают водой, высушивают на воздухе и микроскопируют под иммерсией, пользуясь объективом МИ-90. На препаратах высыпавшиеся споры и зона проспоры в клетках - спороносцах окрашиваются в красный цвет, а вегетативные клетки и концы клеток - спороносцев — в синий или голубой (рисунок).
Рисунок.
Спорообразование
у Bacillus
mesentericus.
Окраска
по Цилю. Карболовый
фуксин. Метиленовая синяя.
Просматривая препараты, делают зарисовки микроорганизмов, обращая внимание на форму, взаимное положение клеток и спор и их окрашивание.
6. Литература по теме занятия
Гусев М.В., Минеева Л.А. Микробиология. - М.: Академия, 2003.
Определитель бактерий Берджи. – Под ред. Дж. Хоулта, в 2-х томах. - М.: Мир, 1997.
Асонов Н.Р. Микробиология. – М.: Колос, 2001.
Градова Н.Б., Бабусенко Е.С. Лабораторный практикум по общей микробиологии. - М.: РХТУ, 1998.
Бакулин М. К. Получение накопительных культур микроорганизмов различных таксономических групп. - Киров, 1997.
Содержание
-
1.
Цели занятия….…………………………………………........
3
2.
Вопросы и задания для самоподготовки.……………..........
3
3.
Оборудование и материалы………..…………………..........
4
4.
Общие сведения………...………………………………........
4
5.
Ход работы………...……………………………….................
5
6.
Литература по теме занятия……………………………........
7