golovina_n_a_strelkov_yu_a_voronin_v_n_i_dr_ikhtiopatologiya

12 ч в зависимости от состава корма. Возможно опрыскивание сухих гранулированных кормов водным или масляным раствором лечебного препарата.

Гранулированные лечебные корма готовят и на комбикормовых заводах по специальной технологии согласно ТУ. Так, при кишечных гельминтозах (кавиозе, ботриоцефалезе и др.) применяют готовый гранулированный комбикорм циприноцестин, содержащий лечебный препарат микросал, при филометроидозе — филомецид, содержащий нилверм и т. д. При бактериальных заболеваниях (аэромонозе и др.) применяют лечебные корма с антибиотиками (группа кормовых антибиотиков: кормогризин, биовит, биоветин и др.), а также с антисептиками (метиленовым синим), сульфаниламидами (сульфален) и препаратами нитрофуранового ряда (фура-золидон, фурадонин и др.). Для борьбы с бактериальной геморрагической септицемией очень эффективно лечебно-профилактическое кормление рыб гранулированным кормом с пробиотиком — суба-лином. При стрептококкозе рекомендуют использовать другой пробиотик — ацидофилин.

В некоторых случаях при гельминтозах и инфекционных болезнях лечебные препараты вводят рыбам перорально (с помощью зонда). Этим способом в основном индивидуально обрабатывают производителей и ремонтное стадо рыб. Для этой цели применяют тонкие резиновые катетеры. Зонд вводят в передний отдел кишечника, лечебный препарат дозируют на крахмальном клейстере. Например, производителям и ремонтной группе карпов биомицин и левомицетин против аэромоноза из расчета 50 мг/кг массы рыб вводят в составе 3%-ной крахмальной суспензии.

4.2.4. ИНЪЕКЦИОННЫЙ МЕТОД ВВЕДЕНИЯ ЛЕЧЕБНЫХ ПРЕПАРАТОВ

В ряде случаев эффективны внутрибрюшинные или внутримышечные инъекции, которые рекомендуются в основном для профилактики лечения рыб ремонтно-маточного стада.

Внутрибрюшинные инъекции чаще применяют для введения антибиотиков или вакцин при бактериальных болезнях. Вначале рассчитывают количество препарата на партию рыб, готовят соответствующее разведение, тщательно перемешивают. Инъекцию делают в области брюшных плавников, устанавливая иглу под углом 45° в направлении головы. Иглу вводят почти параллельно брюшной стенке так, чтобы не травмировать внутренние органы. Во время бонитировки карпа для профилактики аэромоноза путем инъекции вводят левомицетин, дибиомицин или вакцину ВЮС-2. Антибиотики применяют в виде растворов, суспензий на дистиллированной или кипяченой водопроводной воде, а также с добавлением пролонгаторов (экмолина, вазелинового масла). Все лечебные мероприятия должны проводиться согласно действующим инструкциям.

91

Внутримышечно (в область спины) производителям обычно инъецируют антибиотики, аминокислотные смеси, витамины группы В вместе с введением раствора гипофиза в преднерестовый период.

4.3. МЕТОДЫ ОЦЕНКИ УЩЕРБА ОТ БОЛЕЗНЕЙ РЫБ, ЗАТРАТ НА ПРОТИВОЭПИЗООТИЧЕСКИЕ МЕРОПРИЯТИЯ И ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ИХ ПРОВЕДЕНИЯ

Болезни рыб в условиях аквакультуры оказывают существенное влияние на эффективность работы многих рыбоводных предприятий. Для борьбы с заболеваниями рыб требуются значительные средства, рациональное использование которых должно быть экономически обосновано.

4.3.1. ОЦЕНКА ЭКОНОМИЧЕСКОГО УЩЕРБА ОТ БОЛЕЗНЕЙ РЫБ

Экономический ущерб, наносимый болезнями рыб, является денежным выражением потерь рыбоводной продукции. Он складывается из потерь от прямой гибели рыб, снижения темпа их роста, плодовитости, утраты племенной стоимости, ухудшения товарных качеств, вынужденной реализации рыбы по более низким ценам и т. п.

Ущерб от гибели или вынужденной реализации рыб определяют по формуле

У\ = пптЦ — В,

где лп — количество погибших или вынужденно реализованных рыб, шт.; т — планируемая конечная масса товарной рыбы, кг; Ц —цена товарной рыбы, руб/кг; В — выручка от вынужденной реализации рыбы, руб.

Ущерб от снижения прироста массы рыбы определяют по формуле

У2 = пш(т- тв)Ц,

где пъ — число выздоровевших рыб (число заболевших рыб в пруду за вычетом погибших), шт.; т — планируемая средняя масса рыб, кг; тъ — средняя масса выздоровевших рыб, кг; Ц — цена товарной рыбы, руб/кг.

Оценку влияния болезни на рост рыбы определяют в каждом конкретном случае путем сравнения больных (переболевших) рыб и незаболевших рыб в нескольких (2—3) идентичных по условиям и биотехнике выращивания рыбы прудах, бассейнах, водоемах.

Ущерб от утраты племенной стоимости или снижения качества продукции (товарной рыбы, рыбопосадочного материала) в результате болезни определяют по формуле

где пр, тр, Цр — количество, средняя масса и реализационная цена рыб, утративших племенную стоимость или снизивших свои товарные качества, шт., кг, руб/кг; Ц — рыночная цена племенной рыбы, руб/кг.

92

Составные элементы экономического ущерба могут быть определены одновременно или в разное время.

Общую величину экономического ущерба (У0) определяют как сумму составных частей экономического ущерба

4.3.2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЗАТРАТ НА ПРОТИВОЭПИЗООТИЧЕСКИЕ МЕРОПРИЯТИЯ

Затраты на противоэпизоотические мероприятия (организационные, ветеринарно-санитарные, лечебно-профилактические) включают в себя трудовые и материальные средства.

Общую сумму затрат на противоэпизоотические мероприятия (30) определяют по формуле

OQ \J p-p i^ /v,

где 3Т — текущие затраты, связанные с организацией и проведением планируемых мероприятий, руб.; к — отчисления на капитальные затраты, руб.

Текущие затраты представляют собой следующую сумму затрат: 1)стоимость израсходованных лечебных препаратов или дезин-

фектантов, руб.; 2) оплата труда работников, непосредственно связанных с проведением

лечебно-профилактических и оздоровительных мероприятий; 3)амортизационные отчисления от балансовой стоимости

ветеринарного оборудования, аппаратов, приборов.

Капитальные затраты — это расходы на сооружение складов, шлагбаумов, дезбарьеров, специального оборудования и др.

4.3.3. РАСЧЕТ СТОИМОСТИ ИЗРАСХОДОВАННЫХ ЛЕЧЕБНЫХ ПРЕПАРАТОВ

Расчет стоимости израсходованных лечебных препаратов или дезинфектантов зависит от цены и количества израсходованного препарата

где Сп — стоимость израсходованных препаратов, руб; Ци — цена препарата, руб/кг; К— количество препарата, необходимое для проведения обработки, кг.

Количество препарата, необходимое для проведения обработки, зависит от объема обрабатываемой рыбы и способа обработки.

При использовании препаратов, вносимых в воду (пруда, бассейна, садка), их количество рассчитывают исходя из рабочей концентрации препарата (в г/м3), объема воды (в пруду, бассейне, садке) (в м3) и кратности проводимых обработок.

При расчете лекарственных средств, даваемых с кормом, учитывают их

93

дозу (на 1 кг массы рыбы) и общее количество рыбы, которой необходимо дать лечебный корм, или общее количество скармливаемого корма при дозировках препарата на 1 кг корма.

При инъецировании расход препарата учитывают, умножая дозу препарата (в мг/кг или в г/кг массы рыбы) на массу всей партии рыбы, подвергающейся лечению.

4.3.4.ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОВОДИМЫХ ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ

ИОЗДОРОВИТЕЛЬНЫХ МЕРОПРИЯТИЙ

Вобщем виде экономическая эффективность противоэпизоо-тических мероприятий представляет собой разницу между предотвращенным в результате проведения лечебно-профилактических и оздоровительных мер экономическим ущербом и затратами, пошедшими на их проведение,

где Уп — предотвращенный экономический ущерб, руб.; 30 — затраты на лечебно-профилактические мероприятия.

При расчете предотвращенного ущерба предварительно устанавливают (по фактическим данным за 2—3 последних года):

коэффициент заболеваемости рыб

где п — число восприимчивых к болезнирыб, шт.; щ, — число заболевших рыб, шт.; коэффициент летальности

где пп — число погибших от болезни рыб, тыс. шт.; п6 — число заболевших рыб, шт.;

удельную величину экономического ущерба на единицу продукции (руб/шт.)

где У — экономический ущерб от болезни в среднем за последние 2—3 года, руб.; лб — число заболевших рыб, шт.

При определении этих коэффициентов используют результаты выборочного обследования ряда ближайших хозяйств или районов за период неблагополучия (регистрации болезней), а также данные специальных исследований (наблюдений, экспериментов), обработанные в соответствии с требованиями вариационной статистики. Коэффициенты возможной заболеваемости в неблагополучных прудах, хозяйствах или районах

94

характеризуют тяжесть течения болезни, когда по тем или иным причинам не были проведены лечебно-профилактические мероприятия, а также если их выполнили с опозданием или некачественно. Используют их и при экономическом обосновании необходимости проведения противоэпизоотических мероприятий.

Предотвращенный экономический ущерб в отдельном хозяйстве в результате профилактики и ликвидации болезней рыб {Уп{) определяют по формуле

где ri — общее число восприимчивых к болезни рыб, подвергнутых профилактической обработке, тыс. шт.; Кз1 — коэффициент возможной заболеваемости рыб в неблагополучных прудах; Ку — коэффициент удельного экономического ущерба, руб/тыс. шт.

При возникновении болезни в хозяйстве и последующем применении терапевтических мер предотвращенный экономический ущерб рассчитывают по формуле

где щ, щ — общее число и средняя масса рыб, подвергнутых терапевтической обработке, шт., кг; Кл— коэффициент возможной летальности; Ц — оптовая цена конечной продукции, руб/кг; У0 — фактический экономический ущерб в результате возникновения болезни, руб.

КОНТРОЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ И ЗАДАНИЯ

1. Перечислить основные санитарно-профилактические требования при проектировании и строительстве рыбоводных хозяйств. 2. Что собой представляет профилактика? 3. Что такое карантин? 4. Дать определение терапии. 5. Перечислить основные способы использования лечебных препаратов. 6. Назвать основные лечебные препараты, задаваемые рыбе с кормом. 7. Перечислить основные вносимые в воду препараты. 8. Как определить затраты на противоэпизоотическую обработку?

Раздел II. ЧАСТНАЯ ИХТИОПАТОЛОГИЯ

Вэтот раздел включены наиболее распространенные в России и соседних с ней странах заразные болезни рыб. Мировой контроль за заболеваниями гидробионтов осуществляет Особая комиссия по водным животным при Международном эпизоотическом бюро (МЭБ).

Всписок обязательно декларируемых в МЭБ заболеваний входят: эпизоотический некроз гемопоэтической ткани, инфекционный некроз гемопоэтической ткани, вирусная болезнь симы Oncorhynchus masou,

95

весенняя виремия карпа, вирусная геморрагическая септицемия.

Согласно классификации МЭБ к опасным заболеваниям рыб также отнесены герпесвирусная болезнь канального сома, вирусная энцефалопатия и ретинопатия, инфекционный некроз поджелудочной железы, инфекционная анемия атлантического лосося, иридовирусная болезнь красного пагра, иридовирусная болезнь белого осетра, эпизоотический язвенный синдром, бактериальная почечная болезнь, эдвардсиеллез канального сома, писцириккет-сиоз атлантического лосося, гидродактилез лососевых,

вызываемый Gyrodactylus salaris.

Глава 5. ВИРУСНЫЕ БОЛЕЗНИ

За 40 лет, прошедших со времени зарождения современной вирусологии рыб, у культивируемых и диких рыб, моллюсков и ракообразных обнаружено около 250 вирусных агентов, из них около половины — у обитателей моря. Эта цифра удваивается каждые 7—8 лет. Интенсивные вирусологические исследования проводят в странах с высоким уровнем разведения рыб (США, Канада, Норвегия, страны Западной Европы, Япония).

Около четверти выявленных вирусов вызывают заболевания, наносящие серьезный ущерб аквакультуре. К наиболее опасным относятся весенняя виремия карпа, инфекционный некроз поджелудочной железы, инфекционный некроз гемопоэтической ткани, папилломатоз атлантического лосося, болезнь поджелудочной железы лососевых, инфекционная анемия лосося, герпесвирусная болезнь лосося, вирусный некроз эритроцитов и др. Часть из них уже зарегистрирована в России, а угроза проникновения других заболеваний вполне реальна.

Диагностика вирусных инфекций достаточно трудоемка. Она базируется на взятии и транспортировании патматериала от больных рыб и его обработке в вирусологических лабораториях. Для выявления вируса проводят деконтаминацию патматериала и заражение (инокуляцию) им постоянных (перевиваемых) культур клеточных линий.

Постоянные клеточные линии представляют собой культуры клеток различных тканей, способные неограниченно долго расти и размножаться in vitro в специальных жидких питательных средах. Получено около 300 линий

96

клеток преимущественно пресноводных рыб. Основные клеточные линии, необходимые для исследования патма-териалов от карповых и лососевых рыб, представлены в табл. 1.

Появление цитопатического эффекта в инокулированной культуре клеток свидетельствует о выделении цитопатогенного агента (в том числе и вируса). Выделенный агент в дальнейшем идентифицируют с помощью серологических реакций и подвергают электронной микроскопии. Для установления этиологической роли выделенного вируса ставят биологическую пробу, т. е. проводят экспериментальное заражение рыб выделенным вирусом. При положительной биопробе заболевание воспроизводится с типичными клиническими и патолого-анатомическими признаками и гибелью зараженных рыб. От заболевших в биопробе рыб вирус реизолируется в эпизоотически значимых титрах (не менее 105 ТЦД 50/г ткани).

5.1. ВИРУСНАЯ ГЕМОРРАГИЧЕСКАЯ СЕПТИЦЕМИЯ

Вирусная геморрагическая септицемия (В ГС, Viral Haemorr-hagic Septicaemia, VHS) — высококонтагиозная болезнь, поражающая пресноводных и морских рыб разного возраста.

Возбудитель. Возбудителем болезни является РНК-содержа-щий рабдовирус из рода Novihablovirus. Вирус получил название Egtved-вирус,

синоним Viral haemorrhagic septicaemia virus

(VHSV). Он имеет пальцевидную форму и представлен тремя серотипами: I (типовой штамм F1), II (Не) и III (23.75), различающимися в реакции нейтрализации (рис. 6). В природе наиболее распространен первый серо-тип. Среди полевых изоля-тов вируса встречаются как авирулентные, так и высоковирулентные. Оптимальная температура для репродукции вируса in vitro 12— 15 °С. Вирус выделяют на культурах клеток BF-2, EPC, RTG-2.

Эпизоотология. ВГС — высококонтагиозная болезнь, поражающая пресноводных и морских рыб разного возраста из отрядов ло-сосеобразные, камбалообразные и сельдеобразные. Заболевание протекает по типу эпизоотии и характеризуется развитием септического процесса, множественными кровоизлияниями в органы и ткани и массовой гибелью рыб.

Болезнь широко распространена в европейских странах с развитым форелеводством, обнаружена в США и Канаде. Вспышки заболевания отмечены в Финляндии, Норвегии и Швеции, странах Балтии, Абхазии и Краснодарском крае, на Украине. Резервуары инфекции существуют в Балтийском и Северном морях, а также в Тихом океане, у побережья США, Канады и Японии. В пресноводной аквакультуре наиболее подвержена заболеванию радужная форель и в меньшей степени кумжа. Вспышки ВГС отмечены также при культивировании европейского хариуса, обыкновенной щуки и сига. В морской воде зарегистрированы эпизоотии у радужной форели и тюрбо, а также у молоди и нерестящихся производителей

97

тихоокеанской сельди.

В естественных водоемах обнаружено носительство вируса у чавычи, кижуча, атлантического и стальноголового лососей, тихоокеанской и атлантической трески, европейского угря и испанского барбуса.

К заболеванию восприимчивы рыбы разного возраста: от сеголетков (у форели в возрасте старше 4 нед) до двухгодовиков (радужная форель) и трехгодовиков (тюрбо) товарной массой от 200 г до 700 г. Мальки, ремонтные рыбы и производители более устойчивы к заболеванию. Отмечены значительные индивидуальные и межпопуляционные колебания восприимчивости Рыб к ВГС.

Заболевание развивается при температуре воды 3—14 °С и затухает при дальнейшем ее повышении. Обычно эпизоотии ВГС возникают в весеннее время (конец зимы — начало лета), но иногда регистрируются в конце лета и осенью. Наиболее остро болезнь протекает при 8—12 °С. При этом может погибнуть до 80—90 % рыб. При 3—5 °С заболевание протекает в хронической форме, но гибель может достигать 100 %. Молодь массой до 1—2 г болеет и при более высокой температуре воды (15—20 °С), что связано с несовершенством системы иммунитета у нее.

Рис. 6. Вирус — возбудитель ВГС

Клинические признаки и патолого-анатомические изменения. За-

болевание проявляется в форме экссудативно-геморрагического синдрома, развитие которого обусловлено размножением вируса в эндотелии кровеносных капилляров, гемопоэтической ткани и клетках экскреторной части почек, что ведет к нарушению водно-минерального баланса и выходу плазмы и форменных элементов крови в окружающие ткани и полости тела. Инкубационный период при температуре воды 7—15 °С колеблется от 1 до 2 нед.

Первыми признаками заболевания являются анорексия и угнетение рыб. Больные рыбы приобретают темную окраску, перемещаются к краям пруда или канала, где течение слабее. Они медленно дрейфуют по течению, с трудом сохраняя равновесие, прибиваются к решеткам стока. ВГС протекает в острой, хронической и нервной формах.

Острая форма заболевания характеризуется внезапной массовой гибелью рыб. У больных особей отмечают экзофтальм, побледнение жабр, точечные кровоизлияния в периокулярной соединительной ткани глаз,

98

жабрах, у оснований плавников, на поверхности тела и иногда на голове. Брюшко увеличено (растянуто). При вскрытии в полости тела обнаруживают скопление прозрачного желтоватого (иногда кровянистого) экссудата, множественные петехиальные кровоизлияния в мускулатуре, перивисцеральной жировой ткани, на брюшине, стенках кишечника и плавательного пузыря, сердце и поверхности паренхиматозных органов (рис. 7). Печень и почки ги-перемированы, отечны, неравномерно окрашены, реже бледные. Желудочно-кишечный тракт свободен от пищи, иногда наполнен слизеподобным содержимым молочно-белого цвета.

Рис. 7. Форель, больная ВГС 94

Хроническая форма болезни сопровождается умеренной и более растянутой во времени гибелью рыб. Больные рыбы имеют почти черную окраску тела, сильно выраженное пучеглазие (как правило, двустороннее), беловато-серые жабры. Внешние кровоизлияния обычно отсутствуют. Координация движений погибающих рыб нередко нарушена. При вскрытии отмечают общую анемию органов. Печень бледная, с точечными кровоизлияниями, почки, сердце, стенка кишечника серо-белого цвета. В брюшной полости может содержаться небольшое количество экссудата.

Нервная форма встречается редко и характеризуется поражением центральной нервной системы. Отмечают повышенный тонус скелетной мускулатуры рыб, внезапные спазматические подергивания тела. Реакция на внешние раздражители (звуковые сигналы, кормление) неадекватная: рыба начинает метаться у поверхности воды, пытаясь выскочить, плавает по кругу или штопорообразно. Приступы возбуждения чередуются с состоянием угнетения. Па-толого-анатомические изменения не выражены.

Диагноз. Его ставят на основании анализа эпизоотологических, клинических, патолого-анатомических данных и результатов вирусологических исследований, включающих выделение и серологическую идентификацию вируса, а при необходимости и постановку биопробы.

Меры борьбы. При установлении диагноза ВГС хозяйство объявляется неблагополучным и на него накладывают карантин. Независимо от формы инфекции — вирусоносительство или клинически протекающее заболевание

—факт выделения вируса от рыб достаточен для наложения карантина.

Сцелью предупреждения появления очагов инфекции оздоровление карантинированных хозяйств ведется методом радикальной дезинфекции и

99

летования. Работу по оздоровлению хозяйства проводят в соответствии с разработанным местным органом государственной ветеринарной службы планом, утвержденным администрацией района по аналогии с другими особо опасными вирусными инфекциями. В Германии выпускают живую аттенуирован-ную вакцину против ВГС. В ряде стран ведут работы по созданию рекомбинантной вакцины.

5.2. ИНФЕКЦИОННЫЙ НЕКРОЗ ГЕМОПОЭТИЧЕСКОЙ ТКАНИ

Инфекционный некроз гемопоэтической ткани (ИНГТ, Infectious hematopoietic necrosis, IHN) — высококонтагиозная вирусная болезнь лососевых рыб, наблюдающаяся в пресноводной и Морской аквакультуре.

Этиология. Болезнь вызывает РНК-содержащий вирус из рода Novirhabdovirus. Вирус ИНГТ представлен одним серотипом, тер-Молабилен: за 15 мин прогревания при 45 °С инактивируется более чем на 99,9 % и полностью разрушается при 60 0С. Среди полевых изолятов вируса встречаются как слабо-, так и высоковирулентные.

Эпизоотология. В пресноводной аквакультуре вспышки заболевания зарегистрированы у нерки, чавычи, кеты, горбуши, симы, стальноголового лосося и радужной форели. Реже болеют кумжа и лосось Кларка. Гольцы и кижуч считаются устойчивыми к заболеванию, но могут быть носителями вируса.

Наиболее восприимчива к заболеванию молодь в период от рассасывания желточного мешка до 2—6-месячного возраста. Инкубационный период инфекции при температуре воды 10—15 °С составляет 1—2 нед. Рыбы более старшего возраста (годовики и двухлетки) болеют реже

илегче. Впервые заразившиеся производители могут погибнуть. Отмечены значительные индивидуальные колебания восприимчивости рыб к ИНГТ. Заболевание протекает по типу эпизоотии и характеризуется развитием септического процесса, тяжелым поражением органов гемопоэза, кровоизлияниями в органы и ткани, а также массовой гибелью рыб.

Болезнь распространена на прилегающих к Тихому океану территориях США и Канады (от Аляски до Калифорнии), в Японии, Китае, Южной Корее

ина Тайване. Встречается во Франции, Италии, Германии, Бельгии и России.

Заболевание развивается при температуре воды 3—15 "С и затухает при дальнейшем ее повышении. Эпизоотии ИНГТ обычно имеют два пика: весенний (конец зимы — начало лета) и реже — осенний (конец лета и осень), но при соответствующей температуре могут наблюдаться в любое время года. Наиболее остро болезнь протекает при 10—12 "С. При этом может погибнуть до 80—100 % молоди. У рыб массой 100—500 г заболевание, как правило, протекает в хронической форме и гибель не превышает 10—25 %. Это связано с несовершенством системы иммунитета у ранней молоди.

Возможна циркуляция вируса в популяции рыб без возникновения вспышки ИНГТ. Заболевание провоцируется стрессирова-нием рыбы при

100