Производственный контроль предприятий отрасли. Лабораторный практикум. Учебное пособие
.pdf
Реактивы и материалы: 1 г соевого шрота, раствор серной кислоты с массовой долей 4 %, 50 см3 раствора гидроокиси калия с массовой долей 5 %, спиртоацетоновая смесь в объемном соотношении 1:1 с водой дистиллированной, фосфатный буферный раствор (рН 7,0), мочевина, раствор серной кислоты с массовой долей 4 %.
Теоретические сведения
Клетчатка (целлюлоза) – это полисахарид, составляющий основную массу клеточных растений (рис. 1).
Рис. 1. Клетчатка
Она нерастворима в воде, но в ней набухает. Составляет более 50 % древесины, в волокнах хлопка более 90 %. При кипячении с крепкой серной кислотой клетчатка нацело превращается в глюкозу. При более слабом гидролизе из клетчатки получается целлобиоза.
Виды целлюлозы: целлюлоза (нерастворимая) присутствует в непросеянной пшеничной муке, отрубях, капусте, молодом горохе, зеленых и восковидных бобах, брокколи, брюссельской капусте, в огуречной кожуре, перцах, яблоках, моркови.
Гемицеллюлоза (растворимая, за исключением некоторых видов) содержится в отрубях, злаковых, неочищенном зерне, свекле, брюссельской капусте, зеленых побегах горчицы.
Целлюлоза и гемицеллюлоза впитывают воду, облегчая деятельность толстой кишки. В сущности, они «придают объем» отходам и быстрее продвигают их по толстому кишечнику. Это не только предотвращает возникновение запоров, но и защищает от дивертикулеза, спазматического колита, геморроя, рака толстой кишки и варикозного расширения вен.
11
Лигнин (нерастворим) встречается в злаковых, отрубях, лежалых овощах (при хранении овощей содержание лигнина в них увеличивается, и они хуже усваиваются), а также в баклажанах, зеленых бобах, клубнике, горохе, редисе. Лигнин уменьшает усваиваемость других волокон. Кроме того, он связывается с желчными кислотами, способствуя снижению уровня холестерина, и ускоряет прохождение пищи через кишечник.
Каме́ди или гумми(растворимые) содержатся в овсяной каше и других продуктах из овса, в сушеных бобах.
Пектин (растворим, за исключением некоторых видов) присутствует в яблоках, цитрусовых, моркови, цветной и кочанной капусте, сушеном горохе, зеленых бобах, картофеле, землянике, клубнике, фруктовых напитках. Камеди и пектин влияют на процессы всасывания в желудке и тонком кишечнике. Связываясь с желчными кислотами, они уменьшают всасывание жира и снижают уровень холестерина. Задерживают опорожнение желудка и, обволакивая кишечник, замедляют всасывание сахара после приема пищи, что полезно для диабетиков, так как снижает необходимую дозу инсулина.
Протопектин - нерастворимые комплексы пектинов с целлюлозой и гемицеллюлозой, которые содержатся в незрелых фруктах и овощах.
Так как клетчатка почти не переваривается в желудочнокишечном тракте человека, ее относят к группе балластных веществ, которые, однако, необходимы организму для регуляции двигательной функции кишечника. Она используется также при приготовлении сред для выращивания различных микроорганизмов. Молекула целлюлозы имеет нитевидную форму и построена из глюкозных остатков, количество которых колеблется от 1 400 до 10 000. 60-70 молекул целлюлозы соединены в пучки – мицеллы, образующие сетчатую структуру.
Метод определения целлюлозы основан на удалении из продукта кислотощелочерастворимых веществ и определении массы остатка, условно принимаемого за клетчатку.
Уреаза — это фермент группы амидаз. Уреаза производит гидролитическое расщепление мочевины на углекислоту и аммиак. Фермент уреаза нашел широкое распространение в растениях
12
и бактериях — семенах бобовых, грибках. Кроме того, фермент уреаза найден у некоторых беспозвоночных и полностью отсутствует у позвоночных животных. Для получения фермента уреазы самый удобный материал – это обезжиренная мука из соевых бобов.
Уреаза легко поддается извлечению при помощи воды. Оптимальная температура при этом – 50-55 ºС, так как уже при 70 ºС уреаза разрушается. Наиболее оптимальная реакция среды -на блюдается при pH 7,3-7,5.
Количественно уреаза измеряется аммиаком, освобождаемым из мочевины при стандартных условиях. На таком же принципе основаны методы определения мочевины в биологических объектах. Большое количество аммиака в слизистой оболочке желудка способствует возникновению атрофических процессов.
Метод заключается в изменении рН фосфатного буферного раствора, которое образуется в результате воздействия уреазы на содержащуюся в растворе мочевину.
Ход работы
1. Определение сырой клетчатки. 1 г соевого шрота зали-
вают 100 см3 раствора серной кислоты с массовой долей 4 %. Смесь тщательно перемешивают и кипятят в течение 5 мин с момента закипания. Стакан снимают с плитки, смывают со стенок приставшие частицы, дают отстояться осадку и еще горячий раствор отсасывают с помощью вакуумного водоструйного насоса Комовского. Для этого используют воронку диаметром5 см, обтянутую тканью из капронового сита.
По окончании отсасывания воронку вынимают из стакана, переворачивают вверх и дают оставшейся жидкости стечь в колбу Бунзена. Воронку промывают над стаканом дистиллированной водой из промывалки. Остаток три раза ополаскивают дистиллированной водой, повторяя процедуру.
Затем в стакан наливают 50 см3 раствора гидроокиси калия с массовой долей 5 % и доводят дистиллированной водой до метки 100 см3. Смесь тщательно перемешивают и кипятят на электрической плитке в течение 5 мин с момента закипания. По окончании отсасывания воронку вынимают из стакана, переворачи-
13
вают вверх и дают оставшейся жидкости стечь в колбу Бунзена. Воронку промывают над стаканом. Остаток ополаскивают дистиллированной водой, повторяя процедуру.
Отмытый остаток переносят на воронку Бюхнера с бумажным фильтром, предварительно высушенным при температуре 160 оС в течение 15 мин. Осадок на фильтре последовательно отмывают дистиллированной водой от щелочи и просушивают спиртоацетоновой смесью. Фильтр с промытым остатком сворачивают, чтобы избежать потерь клетчатки и высушивают в сушильном шкафу при температуре 160 оС в течение 1,5 ч.
Массовую долю сырой клетчатки, Х, %, вычисляют по формуле
X = m1 ×100 , m
где m – масса соевого шрота, взятая на анализ, г; m1 – масса полученного сухого остатка, вычисленная по разности между массами фильтра с клетчаткой и пустого фильтра, г; 100 – коэффициент пересчета в проценты.
2. Определение активности уреазы в соевом шроте потен-
циометрическим методом. В два стеклянных стакана помещают по 1 г соевого шрота. В первый стакан приливают 50 см3 фосфатного буферного раствора, во второй добавляют 1,5 г мочевины и приливают 50 см3 буферного раствора.
Первый стакан ставят на водяную баню при температуре 30 оС. Через 5 мин на водяную баню при той же температуре ставят второй стакан.
Время термостатирования – 30 мин. Содержимое каждого стакана перемешивают стеклянной палочкой каждые5 мин. Последнее перемешивание – за 5 мин до окончания термостатирования.
По окончании термостатирования измеряют рН жидкости каждого стакана.
Активность уреазы в единицах рН вычисляют по формуле А = рН1 – рНо,
где рН1 – значение рН в основном испытании; рН0 – значение рН в контрольном испытании.
14
Контрольные вопросы
1.Какие виды клетчатки вы знаете?
2.В чем сущность метода определения сырой клетчатки?
3.В чем сущность потенциометрического метода определения активности уреазы в соевом шроте.
Лабораторная работа № 3.
Физико-химический анализ мелассы
Цель работы: овладеть методами проведения физико-
химического анализа мелассы. |
|
|
|
|
||
Реактивы и материалы: |
150 г мелассы, 10 см3 раствора |
|||||
серной кислоты концентрацией0,1 моль/дм3, раствором NaOH |
||||||
концентрацией 0,1 моль/дм3, |
раствор |
йода |
концентрацией |
|||
0,1 моль/дм3, тимолфталеин, раствор гидроксида натрия концен- |
||||||
трацией |
1 моль/дм3, 30 |
см3 |
суспензии |
фосфата , меди |
||
0,5 см3 ледяной уксусной кислоты, 1 г йодистого калия, раствор |
||||||
тиосульфата натрия концентрацией 0,01 моль/дм3, раствор крах- |
||||||
мала с массовой долей 1 |
%, |
|
раствор |
йода концентрацией |
||
0,1 моль/дм3, 50 см3 реактива Герлеса, 9 г сухого измельченного |
||||||
порошка |
дигидрофосфата |
натрия(NaH2PO4), 0,2 г |
бисульфита |
|||
натрия (NaHSO3). |
|
|
|
|
|
|
Теоретические сведения
Меласса – густая вязкая жидкость темно-коричневого цвета, с запахом карамели используется в качестве сырья для приготовления хлебопекарных дрожжей, этилового спирта и других продуктов.
В зависимости от типа перерабатываемого сырья мелассу подразделяют:
-на свеклосахарную, получаемую при переработке сахарной свеклы;
-рафинадную, получаемую при производстве рафинированного сахара;
15
-сахаротростниковую, получаемую при переработке тростникового сахара;
-тростниковую (черную), получаемую при производстве сахара из сахарного тростника.
На отечественных заводах в основном перерабатывается свеклосахарная меласса и в небольших количествах – рафинадная
исахаротростниковая.
Ценность мелассы как сырья дрожжевого и спиртового производства определяется наличием в ней сахара и веществ, необходимых для нормальной жизнедеятельности дрожжей(азотистые, минеральные вещества и витамины).
Состав мелассы непостоянен и зависит от многих факторов: зрелости свеклы, технологии сахара, условий хранения и транспортировки и т. д. Состав ее не регламентирован. Основные требования к свеклосахарной мелассе это: содержание не менее 75 % сухих веществ, из них количество сбраживаемых сахаров – не менее 45 %. Общего азота должно быть не менее 1,3 % (если это количество меньше, то это нарушает нормальную жизнедеятельность дрожжей); инвертного сахара (смесь глюкозы и фруктозы) – не более 0,5 % (это количество может возрастать при хранении мелассы в неблагоприятных условиях); рН не ниже6,8; цветность – не более 2 см3 0,1 моль/дм3 йода на 100 см3 раствора мелассы с массовой долей сухих веществ2 %; обсемененность микроорганизмами – не более 10 тыс. клеток в 1 г мелассы.
Важным показателем качества мелассы, от которого зависит выход этилового спирта, является ее доброкачественность. Это отношение количества сбраживаемых сахаров к общему количеству сухих веществ. Этот показатель должен быть на уровне
55-65 %.
При поступлении мелассы на завод, в первую очередь, контролируется ее реакция. Если меласса имеет кислую реакцию, то это является признаком развития в ней кислотообразующих бактерий. Такая меласса считается дефектной. К дефектной относится также меласса, если она по своим качественным показателям не удовлетворяет вышеперечисленным требованиям.
Меласса поступает на спиртовые заводы в железнодорожных или автомобильных цистернах. Отбор пробы составляет
16
1,5 кг от каждых 10 т при сливе из железнодорожных цистерн и от каждых 5 т при сливе из автоцистерны. Отобранные пробы тщательно перемешивают и составляют объединенную пробу. От объединенной пробы отбирают1,5 кг и разливают по0,5 кг в 3 чистые бутылки объемом по 0,5 дм3, закупоривают пробками, заливают сургучом, парафином и опечатывают. Одну бутылку анализируют в лаборатории завода, другую хранят в течение двух месяцев, а в случае возникновения разногласий между поставщиком и получателем – до окончания спора. Третья бутылка – контрольная, ее при возникновении спора о качестве мелассы между поставщиком и получателем направляют для арбитражного анализа. На такую бутылку наклеивают этикетку с указанием: массы мелассы; номера цистерн, из которых отобрана проба; номера накладных; даты отбора проб; подписи отбиравших пробы.
Ход работы
1.Органолептическая оценка качества мелассы. Для опре-
деления вкуса мелассы отвешивают в стеклянном стаканчике (25,00+0,01) г, перемешивают со 100 см3 воды комнатной температуры и полученный раствор пробуют на вкус, отмечая чистоту вкуса и наличие посторонних привкусов.
Для определения запаха в коническую колбу с притертой пробкой вместимостью 250 см3 наливают мелассу до 3/4 объема колбы, закрывают пробкой и выдерживают 1 ч, затем открывают
иопределяют запах на уровне края колбы. При этом отмечают присутствие посторонних запахов.
2.Определение реакции среды. В мелассе определяют ак-
тивную кислотность (рН), общую щелочность или кислотность. Активную кислотность в водном растворе мелассы определяют с помощью лабораторного рН-метра. Показания рН-метра записывают через 5 мин после погружения электродов в раствор мелассы, разбавленный 1:1.
Для определения общей титруемой щелочности илики слотности в химический стакан вместимостью100 см3 взвешивают (10,00+0,01) г мелассы, добавляют 20 см3 дистиллированной воды и измеряют рН на рН-метре.
17
|
При щелочной реакции (рН > 7) к раствору мелассы добав- |
|||||
ляют |
10 |
см3 |
раствора |
серной |
кислоты |
концентрацией |
0,1 моль/дм3, перемешивают и через 10 мин оттитровывают из- |
||||||
быток кислоты раствором NaOH концентрацией 0,1 моль/дм3 до |
||||||
рН = 7,0. Щелочность выражают в градусах. За 1 градус прини- |
||||||
мают |
1 |
см3 |
раствора |
серной |
кислоты |
концентрацией |
1 моль/дм3, израсходованной на нейтрализацию 100 г мелассы. |
||||||
|
При кислой реакции среды раствор мелассы титруют непо- |
|||||
средственно раствором NaOH концентрацией 0,1 моль/дм3. Коли- |
||||||
|
|
|
|
|
3 |
|
чество израсходованной щелочи выражают в см раствора NaOH |
||||||
концентрацией 1 моль/дм3, а затем пересчитывают на 100 г ме- |
||||||
лассы и получают кислотность в градусах. |
|
|
||||
|
3. Определение цветности мелассы. Цвет мелассы обу- |
|||||
словлен наличием в ней красящих веществ(карамелей, меланои- |
||||||
динов). Высокое содержание красящих веществ в мелассе замед- |
||||||
ляет рост дрожжей. |
|
|
|
|
||
|
Цветность мелассы определяют путем сравнения окраски |
|||||
раствора мелассы с массовой долей2 % с окраской раствора |
||||||
йода. |
В химический стакан на 50 см3 отвешивают 20 г мелассы и |
|||||
|
||||||
смывают ее горячей дистиллированной водой в мерную колбу на |
||||||
100 см3. После охлаждения содержимое колбы доводят дистил- |
||||||
лированной водой до метки и перемешивают. |
|
|||||
|
10 см3 полученного раствора переносят в мерную колбу на |
|||||
100 см3, доливают дистиллированной водой до метки, перемеши- |
||||||
вают и фильтруют. |
|
|
|
|
||
|
Определение |
проводят в |
двух химических стаканах. Для |
|||
этого |
50 |
см3 фильтрата помещают в |
химический |
стакан на |
||
100 см3, в другой стакан такого же объема наливают 47 см3 дис- |
||||||
тиллированной воды. Стаканы ставят против света и в стакан с водой наливают из микробюретки раствор йода концентрацией
0,1 моль/дм3 до |
выравнивания окраски жидкости в обоих |
стаканах. |
3 |
|
|
Цветность мелассы выражают в см раствора йода концен- |
|
трацией 0,1 моль/дм3 |
на 100 см3 раствора мелассы с массовой |
3
долей 2 %. Для этого количество израсходованного в см раствора йода концентрацией 0,1 моль/дм3 умножают на 2.
18
4.Определение массовой доли сухих веществ. Мелассу раз-
бавляют водой в соотношении 1:1 и 2-3 капли стеклянной палоч-
кой помещают на призму рефрактометра. Температура при определении сухих веществ должна быть20 оС. По шкале рефрактометра отмечают массовую долю сухих веществ в разбавленной мелассе. Для нахождения массовой доли сухих веществ в мелассе
впроцентах показания рефрактометра удваивают.
5.Определение содержания аминного азота. Аминный азот является источником азотистого питания дрожжей. Определение его проводят йодометрическим способом по Попу и Стивенсону.
Навеску мелассы массой (13,00+0,01) г переводят количественно дистиллированной водой в мерную колбу на100 см3 и доводят до метки. Из полученного раствора отбирают10 см3 в мерную колбу вместимостью 50 см3, добавляют 3-4 капли тимолфталеина и раствор гидроксида натрия концентрацией 1 моль/дм3 до бледно-голубого (синего) окрашивания (2,0–2,5 см3). Затем небольшими порциями при помешивании вливают 30 см3 суспензии фосфата меди, доводят дистиллированной водой до метки и фильтруют через складчатый фильтр. Первые порции фильтрата
перефильтровывают. Фильтрат |
должен |
быть |
абсолютно |
прозрачным. |
|
|
|
10 см3 фильтрата помещают в стаканчик, добавляя 0,5 см3 ледяной уксусной кислоты и 1 г йодистого калия. После перемешивания выделившийся йод оттитровывают из микробюретки раствором тиосульфата натрия концентрацией0,01 моль/дм3, добавляя под конец титрования 1-2 капли раствора крахмала с массовой долей 1 %. Титрование ведут до исчезновения синего окрашивания.
Массовую долю аминного азота в мелассеХ, %, определя-
ют по формуле |
|
|
|
Х=0,28·10·а·100/n/1000, |
|
где а – объем |
раствора тиосульфата |
натрия концентрацией |
0,01 моль/дм3, пошедшего на титрование, см3; 0,28 – массовая |
||
доля аминного |
азота, эквивалентная 1 см3 |
тиосульфата натрия; |
19
100 – пересчет в проценты; 1000 – пересчет мг азота в граммы; 10 – объем жидкости, взятый на анализ, см3; n – масса мелассы в растворе, взятом на анализ, г.
6. Определение цветности фотоэлектроколориметром.
Определяют цветность растворов мелассы с массовой долей 2 % с помощью ФЭК и выражают её в см3 0,1 моль/дм3 раствора йода на 100 г сухих веществ. Предварительно строят градуировочный график, для чего готовят растворы с содержанием1,0; 2,0; 3,0; 4,0; 5,0; 6,0; 7,0; 8,0; 9,0; 10,0 см3 0,1 моль/дм3 раствора йода в
100 см3 раствора. Затем с помощью ФЭК измеряют величины оптической плотности этих растворов, пользуясь кюветой с рабочей длиной грани 1,0 см при длине световой волны λ = 455 нм. По полученным данным на миллиметровой бумаге строят график: на
3 |
3 |
ис- |
оси абсцисс откладывают число см раствора йода в100 см |
|
следуемого раствора, а на оси ординатвеличину оптической плотности соответствующих растворов.
При проведении анализа взвешивают20,0 г мелассы и готовят раствор с массовой долей 2 % (см. выше). Полученный раствор колориметрируют, пользуясь такими же кюветами и светофильтром, как и для растворов йода. По найденной величине оптической плотности с помощью градуировочного графика нахо-
дят цветность мелассы |
в 3 смраствора йода |
концентрацией |
|
0,1 моль/дм3. Цветность мелассы Z пересчитывают на 100 г сухих |
|||
веществ по формуле |
|
|
|
Z = Z1 · 100 · 100 / |
2 ∙ CCB , |
|
|
где Z1 – цветность 100 см3 |
раствора |
мелассы с |
массовой долей |
2 %, см3 раствора йода концентрацией 0,1 моль/дм3; СCB – содержание сухих веществ в мелассе, % мас.
7. Определение сахаристости мелассы. Основным сахаром мелассы является сахароза. Наряду с ней могут присутствовать инвертный сахар (смесь глюкозы и фруктозы), раффиноза и др.
В нормальной мелассе содержание инвертного сахара не более 0,5 %, поэтому его не принимают во внимание при определении суммы сбраживаемых сахаров. Массовую долю сахарозы и раффинозы определяют поляриметрическим методом, основанным на измерении угла вращения плоскости поляризованного света. Для этого используют метод прямой и инверсионной поля-
20
