- •1. Метод электроэнцефалографии. Ритмы ээг.
- •2. Представление о методе вызванных потенциалов.
- •3. Методика регистрации суммарной биоэлектрической активности головного мозга: виды отведений, регистрируемые ритмы.
- •4. Представление о микроэлектродной технике.
- •5. Метод фиксации потенциала. Сущность метода. Принципиальная измерительная электрическая схема.
- •6. Методика регистрации величины потенциала покоя нейрона.
- •7. Методика Определения групп крови в системе ав0. Правило переливания крови.
- •8. Лейкоциты, количественная характеристика. Лейкоцитарная формула крови.
- •9. Количественные показатели в анализах крови и мочи, отражающие функцию почек.
- •10. Методика количественного подсчета эритроцитов и лейкоцитов в крови взрослого человека.
- •11. Количественная оценка сосудисто-тромбоцитарного гемостаза.
- •12. Нарисовать кривую диссоциации оксигемоглобина, объяснить и перечислить факторы, на нее влияющие.
- •13. Что такое дыхательные объёмы и дыхательные емкости.
- •14. Показатели вентиляции легких: минутный объем дыхания, альвеолярная вентиляция, максимальная вентиляция легких. В чем различие между понятиями легочной и альвеолярной вентиляцией.
- •15. Формы переноса кислорода в крови. Содержание о2 крови, его транспорт. Кислородная емкость крови, коэффициент утилизации.
- •16. Представление о пульсоксиметрии. Цифровые показатели.
- •17. Кривая связывания кислорода гемоглобином крови и факторы на нее влияющие.
- •18. Методы спирометрии и спирографии (нарисовать график с указанием должных объемов и емкостей).
- •19. Сущность непрямого метода оценки остаточного объема легких и функциональной остаточной емкости.
- •20. Представление об электрокардиографии.
- •22. Методы оценки насосной функции сердца
- •23. Сущность объективного и субъективного методов исследования звуковых явлений деятельности сердца.
- •24. Сопоставление кривых давления в левом желудочке, давления в аорте, объема левого желудочка, экг и фонокардиограммы.
- •25. Определение минутного объёма крови.
- •26. Сущность опыта мнимого кормления.
- •27. Опыты, доказывающие наличие фаз желудочной секреции.
- •28. Фазы секреции поджелудочной железы. Опыты, доказывающие это.
- •29. Исследование секреторной деятельности слюнных желез.
- •30. Измерение скорости клубочковой фильтрации.
- •31. Оценка величины почечной реабсорбции.
- •32. Принцип оценки величины почечной секреции.
- •33. Правила и условия выработки условного рефлекса.
- •34. Инструментальные рефлексы.
- •35. Определение остроты слуха (аудиометрии).
- •36. Что такое острота зрения и методика ее определения.
6. Методика регистрации величины потенциала покоя нейрона.
При образовании потенциала покоя внутренняя сторона мембраны заряжена отрицательно, так как ионы калия по градиенту концентрации выходят через каналы утечки, а наружная сторона мембраны – положительно.
Чтобы измерить потенциал покоя и тем более проследить его изменения, вызываемые каким-либо воздействием на клетку, применяют технику внутриклеточных микроэлектродов. Микроэлектрод устанавливают над исследуемым объектом, а затем при помощи микроманипулятора - прибора, снабженного микрометрическими винтами, вводят внутрь клетки. При удачном введении микроэлектрода мембрана плотно охватывает его кончик, и клетка сохраняет способность функционировать в течение нескольких часов, не проявляя признаков повреждения.
Микроэлектрод является активным электродом (референтным). Электрод сравнения (индифферентный) обычных размеров погружают в нормальный солевой раствор, в котором находится исследуемая ткань.
До прокола мембраны микроэлектродом разность потенциалов между активным и индифферентным электродом равна нулю. Kак только микроэлектрод прокалывает поверхностную мембрану клетки, регистрируется разность потенциалов между раствором, омывающим клетку, и содержимым клетки, равная потенциалу покоя клетки. Продвижение микроэлектрода внутри протоплазмы или изменение положения электрода внутри клетки на показаниях вольтметра не сказываются. После прокола микроэлектродом мембраны на противоположной стенке клетки от входа в клетку электрода разность потенциалов вновь не регистрируется. Это свидетельствует о том, что разница потенциал действительно определяется между цитоплазмой и окружающим клетку наружным раствором.
7. Методика Определения групп крови в системе ав0. Правило переливания крови.
Определение группы крови с использованием изогемагглютинирующих (стандартных) сывороток. Группы крови определяют путем постановки реакции агглютинации крови реципиента (человека, которому переливают кровь) со стандартными сыворотками I–IV групп крови, полученных от доноров. Стандартные сыворотки содержат только агглютинины соответствующих групп. Сыворотки отличаются друг от друга по цветам.
На пластинку наносят по одной большой капле (0,1 мл) стандартных сывороток соответствующих групп. Рядом с каждой каплей сыворотки наносят маленькую каплю (0,01 мл) исследуемой крови, соблюдая соотношение 10:1. Капля вносимой в сыворотку крови должна быть меньше объема капли сыворотки, чтобы не снизить титра содержащихся в них агглютининов. Смешивают каплю сыворотки с каплей крови индивидуальной чистой стеклянной палочкой, затем, периодически покачивая пластинку, наблюдают за ходом реакции в течение 5 мин.
Агглютинация начинается в течение первых 10–30 с, однако наблюдение следует вести до 5. Через 3 мин в капли смеси сыворотки с эритроцитами, в которых наступила агглютинация, добавляют по одной капле (0,05 мл) изотонического раствора хлорида натрия и продолжают наблюдение при периодическом покачивании пластинки до истечения 5 мин.
Определение группы крови перекрестным способом проводится одновременно при помощи изогемагглютинирующих сывороток и стандартных эритроцитов. При этом способе определяют наличие или отсутствие агглютиногенов и, кроме того, при помощи стандартных эритроцитов устанавливают наличие или отсутствие групповых агглютининов.
Для определения групповой принадлежности крови применяют также стандартные реагенты — моноклональные антитела (цоликлоны) (анти-А и анти-В), реагент содержит краситель (розовый— для антител анти-А, синий— для антител анти-В). Моноклональные анти-А, анти-В, анти-АВ антитела принадлежат к иммуноглобулинам класса М.
Определение групп крови антителами анти-А и анти-В имеет ряд преимуществ по сравнению с определением изогемагглютинирующими сыворотками: обеспечиваются более высокие качество агглютинации, достоверность и надежность результатов, заметно упрощается процедура определения и сокращаются сроки реакции (наступает уже в первые 1–2 с).
Компоненты крови должны переливаться только той группы системы АВ0 и той резус-принадлежности, которая имеется у реципиента.
По жизненным показаниям:
При отсутствии одногруппных по системе АВ0 компонентов крови (за исключением детей) допускается переливание резус-отрицательной крови I группы(отмытой) рецепиенту с любой другой группой крови в количестве до 500 мл.
Резус-отрицательная отмытая эритроцитарная масса от доноров II и III групп могут быть перелиты рецепинту с IV группой, независимо от его резус-принадлежности.
При отсутствии одногруппной плазмы рецепиенту может быть перелита плазма IV группы.