- •Предмет, история развития. Задачи и основные направления науки
- •Морфология микробов
- •Строение микробной клетки и физиология микробов
- •Генетика микроорганизмов
- •2. Изменчивость у бактерий
- •3. Бактериофаги
- •Влияние факторов внешней среды на микроорганизмы
- •Экология микроорганизмов
- •Роль микроорганизмов в круговороте веществ в природе
- •8. Техника безопасности.
- •9. Бактериологическая лаборатория.
- •10. Устройство микроскопа
- •11, Основные формы бактерий.
- •12 . Бактериологические краски.
- •13. Приготовление бакпрепаратов (мазков).
- •14. Простые и сложные методы окрашивания.
- •15. Окраска спор, капсул бактерий, методы определения подвижности бактерий
- •16. Изучение морфологии грибов и актиномицетов
- •17. Лабораторная аппаратура
- •18 . Приготовление питательных сред.
- •Посев и культивирование микроорганизмов
- •Методы выделения чистых культур микробов
- •Методы механического разделения микробов
- •2.Методы использования биологических особенностей микроорганизмов
- •Изучение культуральных свойств микроорганизмов
- •Изучение биохимических (ферментативных) свойств микроорганизмов
- •Изучение действия антибиотиков, антисептиков и бактериофагов на микроорганизмы
- •Правила заражения лабораторных животных
- •Отбор, консервирование, транспортировка и хранение материала для микробиологического исследования
- •Определение патогенности и вирулентности микроорганизмов
- •Санитарно-бактериологическое исследование воды
- •Санитарно-бактериологическое исследование воздуха
- •Санитарно-бактериологическое исследование почвы
- •Изучение микрофлоры кормов
- •Биопрепараты
- •Факторы патогенности микроорганизмов.
- •Факторы и механизмы неспецифической противоинфекционной защиты. Защитная роль кожи.
- •Понятие об иммунитете. Виды иммунитета.
- •Антигены. Понятие об антигенах.
- •Центральные и периферические органы иммунной системы.
Методы выделения чистых культур микробов
Чистая культура – это микроорганизмы одного вида, выросшие на питательной среде. Выделение чистой культуры является важным этапом бактериологического исследования. Чистая культура необходима для изучения морфологических, культуральных, биохимических и антигенных свойств, по их совокупности устанавливается видовая принадлежность микроорганизма.
Микробная колония – это потомство или популяция одной микробной клетки при росте на плотных питательных средах.
Методы механического разделения микробов
Метод Дригальского. Берут 3-4 чашки Петри со стерильным агаром, на поверхность первой наносят каплю смеси бактерий, которую стерильным шпателем растирают по поверхности агара, закрывают крышкой. Этим же шпателем растирают по поверхности второй чашки, затем третьей и четвертой. Чашки помещают в термостат, перевернув вверх, чтобы конденсат не смыл колонии. Колонии изучают по внешнему виду, готовят бактериологический препарат, окрашивают и микроскопируют
Метод Пастера основан на последовательном разведении в 10 пробирках с жидкой средой капли смеси бактерий, с расчетом получить в последней пробирке чистую культуру. Кох, применил метод Пастера на плотных расплавленных средах и содержимое пробирки выливал в отдельную чашку Петри. Выдерживают в термостате. Пересевают отдельную колонию в среду с пробирками и получают чистую культуру.
2.Методы использования биологических особенностей микроорганизмов
Использование химических веществ, антибиотиков, добавленных к питательным средам для подавления роста некоторых микробов. При выделении спорообразующих микроорганизмов исследуемый материал прогревают при 80С – 20 мин, при этом вегетативные формы погибают, а споры прорастают. Затем выделяют культуру по Дригальскому. Химический метод основан на устойчивости микобактерий к действию растворов щелочей и кислот 6-18 % раствор серной кислоты в течение 30 мин, затем отмывают стерильным физраствором путем центрифугирования. Осадок высевают на специальную среду, содержащую бактериостатическую краску, которая задерживает рост посторонней микрофлоры и не препятствует росту микобактерий.
Метод биологической пробы – вводят лабораторному животному исследуемый материал, через несколько дней оно погибает и бактериологической петлей с внутренних органов делают посев на питательные среды. Проводят при очень загрязненном посторонней микрофлорой патматериале. Для выделения подвижных культур каплю исследуемого материала помещают на дно пробирки со скошенным агаром в конденсационную жидкость. При наличии в материале подвижных бактерий через 8-12 часов на поверхности агара отмечается рост бактерий. Пересев делают с самой верхней части агара. Для выделения анаэробов посевы осуществляют в пробирках и чашках Петри, помещенных в эксикатор или анаэростат.
Изучение культуральных свойств микроорганизмов
В процессе идентификации наряду с другими свойствами у микроорганизмов изучают культуральные признаки — особенности роста на плотных, жидких и полужидких питательных средах при определенных условиях.
На плотных средах изучают колонии микроорганизмов. Бактерии каждого вида формируют колонии с определенными признаками, которые обычно учитывают при идентификации. Размер колоний: крупные — диаметром 4...6 мм и более, средние—2...4 мм, мелкие — 1...2мм и точечные колонии диаметром менее 1 мм. Форма колоний может быть правильной круглой, неправильной (амебовидной, розеткообразной), корневидной (рис. 42). Цвет зависит от способности микроорганизма образовывать пигмент: белый, желтый, красный, сине-зеленый и т. д. Бактерии, не синтезирующие пигмент, формируют бесцветные колонии. Учитывают характер поверхности, которая может быть шероховатой, блестящей, матовой, сухой, влажной, гладкой, радиально или концентрически исчерченной. Края колонии могут быть ровными, волнистыми, зазубренными, бахромчатыми, их исследуют невооруженным глазом и под малым увеличением микроскопа (рис. 43). Рельеф (профиль) определяют, рассматривая колонию сбоку; различают плоские, конусообразные, куполообразные, плоские с конусовидным центром или углублением в центре колонии, с утолщенными (валикообразными) краями (рис. 44). Учитывают прозрачность колонии: непрозрачная, полупрозрачная, прозрачная. Структура может быть однородной, зернистой, волокнистой и т.д. (рис. 45). Ее выявляют при слабом увеличении микроскопа. Консистенция может быть пастообразной, слизистой, плотной (сухой) и т.д.; ее определяют, дотрагиваясь до колонии бактериологической петлей. Колонии некоторых видов врастают в толщу питательной среды, что также определяют при помощи бактериологической петли. Запах: многие виды бактерий в процессе роста на питательных средах выделяют специфические ароматические вещества.
Ценную дополнительную информацию об особенностях строения колоний дает их изучение в косопадающем пучке света (рис. 46). Культуры на прозрачной агаровой среде в чашках Петри помещают на предметный столик бинокулярной лупы. Между бинокулярной лупой и источником света помещают зеркало от микроскопа вогнутой стороной вверх таким образом, чтобы лучи, отраженные от него, попадали в плоскость изучаемого объекта под углом 40...45°. Зеркало устанавливают на равном удалении от объекта и источника света (12...14 см). При таком освещении колонии бактерий могут быть окрашены в различные цвета. Цвет зависит как от видовых особенностей, так и от состояния культуры (S-, R-формы, см. тему 12).
В жидких средах учитывают следующие признаки: степень помутнения среды (интенсивное, среднее, слабое), наличие или отсутствие пристеночного кольца на границе мениска и внутренней поверхности пробирки, характер поверхностной пленки (толщина, цвет, поверхность), характер осадка (обильный, скудный, компактный, хлопьевидный, слизистый). При характеристике осадка пробирку слегка встряхивают и учитывают результат: осадок разбивается в гомогенную равномерную суспензию; образуются мелкие или крупные хлопья, глыбки; слизистый осадок при встряхивании обычно поднимается в виде косички. Пигментообразующие микроорганизмы вызывают окрашивание питательной среды и осадка (желтое, зеленоватое, красное и т. д.).