- •Раздел 3. Частная вирусология
- •Тема 3.1. Микробиологическая диагностика стафило- и стрептокок-
- •Тема 3.2. Микробиологическая диагностика рожи свиней и листериоза. 149
- •Введение
- •Требования к уровню освоения дициплины
- •Раздел 1. Общая микробиология
- •Устройство бактериологической лаборатории
- •Устройство микроскопа
- •Правила работы с микроскопом
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.2. Основные формы бактерий. Бактериологические краски. Приго-
- •Формы бактерий
- •Бактериологические краски
- •Техника приготовлениябактериологических препаратов (мазков)
- •Методы фиксации мазков:
- •Простые методы окраски бактерий
- •Сложные методы окраски
- •Окраска по Граму
- •Окраска по Циль-Нильсену
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.3. Окраска спор, капсул бактерий, методы определения подвижно- сти бактерий.
- •Метод Пешкова:
- •Метод Виртца:
- •Ные капсулы.
- •Метод Михина:
- •Метод Ольта:
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.4. Изучение морфологии грибов и актиномицетов.
- •Классификация
- •Тофтора).
- •Культивирование грибов
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.5. Лабораторная аппаратура. Методы стерилизации.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.6.Приготовление питательных сред.
- •Классификация питательных сред
- •По назначению:
- •Специальные питательные среды
- •Методы создания анаэробных условий
- •Дифференциально-диагностические среды
- •Висмут-сульфит агар (среда Вильсон-Блера).
- •Среды накопления (обогащения)
- •Синтетические среды
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.7.Посев и культивирование микроорганизмов. Методы выделения чистых культур микробов.
- •Техника посева на поверхность плотной питательной среды в чашках Петри
- •Техника посева на скошенный агар
- •Техника посева на жидкую
- •Техника пересевов культур микробов
- •Ной среды на другую.
- •Методы механического разделения микробов
- •Методы использования биологических особенностей микроорганизмов
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.8.Изучение культуральных и биохимических (ферментативных)
- •Определение протеолитических ферментов
- •Определение сахаролитических свойств микробов
- •Определение окислительно-восстановительных ферментов
- •Определение редуцирующих свойств
- •Определение гемолитических свойств
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.9.Изучение действия антибиотиков,антисептиков и бактерио-
- •Метод диффузии антибиотиков в агар с применением дисков
- •Метод серийных разведений антибиотика
- •Контрольные вопросы:
- •Способы заражения лабораторных животных
- •Вскрытие трупов лабораторных животных
- •Определение токсигенности микробов
- •Определение токсичности микробов
- •Методы лабораторных исследований
- •Отбор патматериала
- •Принципы организации и оборудование бактериологических лабораторий
- •Правила взятия, консервирования и транспортировки патологического материала
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.11.Санитарно-бактериологическое исследование воды.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.12.Санитарно-бактериологическое исследование воздуха и почвы.
- •Санитарно-микробиологическое исследование почвы
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 1.13.Изучение микрофлоры кормов. Коллоквиум №1 «Общая микро-
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 2. Инфекция и иммунитет Тема 2.1.Серологические реакции. Реакция агглютинации (ра).
- •Метод ра.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 2.2.Реакция преципитации (рп).
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 2.3.Реакция связывания комплемента (рск).
- •Компоненты реакции:
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 2.4.Реакция нейтрализации (рн), метод флуоресцирующих антител
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 2.5.Биопрепараты. Коллоквиум № 2 «Серологические реакции в мик- робиологии».
- •Лиофилизация микроорганизмов
- •Правила использования и хранения биопрепаратов, их транспортировка
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 3. Частнаямикробиология Тема 3.1.Микробиологическая диагностика стафило- и стрептококкозов
- •Стафилококки.
- •Специфическая терапия и профилактика.
- •Стрептококкоза молодняка.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.2.Микробиологическая диагностика рожи свиней и листериоза Цель занятия: ознакомить студентов с возбудителями рожи свиней и листе-
- •Содержание:
- •Слева: гладкие s-формы (колонии возбудителя на пита- тельной среде и мазок под микроскопом); Справа: шероховатые r-формы (колонии возбудителя на питательной среде и мазок под микроскопом).
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.3.Микробиологическая диагностика сибирской язвы.
- •Ная» дорожка.
- •Специфическая профилактика.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.4.Микробиологическая диагностика клостридиозов.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.5. Микробиологическая диагностика некробактериоза и копытной гнили овец.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.6. Коллоквиум № 3 «Грамположительные микроорганизмы». Цель занятия: выявить у студентов остаточные знания по пройденному ма-
- •Содержание:
- •Тема 3.7. Микробиологическая диагностика туберкулеза.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.8. Микробиологическая диагностика паратуберкулеза.
- •Тема 3.9. Микробиологическая диагностика эшерихиозов и сальмонелле-
- •Мпа; 2. Среда Эндо; 3. Среда Левина; 4. Среда Плоскирева.
- •Специфическая профилактика.
- •Специфическая профилактика.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.10. Микробиологическая диагностика бруцеллеза и туляремии.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.11.Микробиологическая диагностика пастереллеза и гемофилезов свиней.
- •Специфическая терапия.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.12. Микробиологическая диагностика сапа лошадей и мелиоидоза.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.13. Коллоквиум № 4 «Грамотрицательные микроорганизмы». Цель занятия: выявить у студентов остаточные знания по пройденному ма-
- •Содержание:
- •Тема 3.14. Микробиологическая диагностика лептоспироза и кампило-
- •Вакцины импортные для собак:
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.15. Патогенные микоплазмы.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.16. Хламидии, риккетсии.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.17. Лабораторная диагностика микозов.
- •Лабораторная диагностика, специфическая терапия и профилактика.
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3.18. Лабораторная диагностика микотоксикозов.
- •Контрольные вопросы:
- •Форма промежуточного контроля знаний студентов
- •Список рекомендованной литературы
- •Дополнительная литература
- •Периодические издания
- •Перечень ресурсов информационно-телекоммуникационной сети «Интернет»
Контрольные вопросы:
В чем особенности строения грибов.
Каковы особенности строения актиномицетов.
Как называются гифы, несущие спорангии.
Как называются гифы, несущие конидии.
Назовите видоизменения мицелия.
Чем характеризуется вегетативное размножение.
Чем характеризуется репродуктивное размножение.
Назовите классификацию грибов.
Какие болезни у животных могут вызыватьмикроскопические грибки.
Тема 1.5. Лабораторная аппаратура. Методы стерилизации.
Цель занятия: изучить разные методы стерилизации. Ознакомить студентов с физическим и механическим методами стерилизации. В зависимости от стерили- зуемого материала ставят задачу уничтожить микробы и не испортить стерили- зуемый материал.
Содержание:
Лабораторная аппаратура
Методы стерилизации
Стерилизация (лат. – sterilis, бесплодие) – обеспложивание, уничтожение па- тогенных и непатогенных микроорганизмов, их вегетативных и споровых форм.
Стерилизации подвергают питательные среды, стеклянную посуду (пробирки, пи- петки, колбы), инструменты, халаты. В основе действия стерилизации лежит спо- собность нарушения жизненных процессов микробной клетки: денатурация бел- ков, угнетение функции ферментных систем.
Применяют полную и частичную стерилизацию. При полной стерилизации уничтожаются вегетативные и споровые формы бактерий. При частичной – только вегетативные.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ СУХИМ ЖАРОМ
Прокаливание(фламбирование) на огне, пламени горелки бактериологиче- ских петель, игл, пинцетов, скальпелей, предметных стекол.
Стерилизация сухим нагретым возду- хом – сушильный шкаф, печь Пастера (ри- сунок 36). Снаружи шкаф облицован тепло- непроницаемым материалом, в верхней час- ти - термометр. Внутри шкафа полочки для размещения стерилизуемого материала.
Стерилизуют в течение 2 ч при 160°С. Вос-
пламеняющиеся вещества, жидкости, пита- тельные среды, резиновые предметы стери- лизовать сухим жаром нельзя.
Рисунок 36 - Печь Пастера.
СТЕРИЛИЗАЦИЯ ВЛАЖНЫМ ЖАРОМ
Кипячение – в металлические стерилизаторы (иглы, шприцы, пинцеты, нож- ницы)раскладывают инструменты обернутые в 2-3 слоя марли.Наливают воду, чтобы полностью покрывала инструменты. В дистиллированную воду добавляют 2 % соду. Кипятят 20-25 мин.Водопроводную воду нельзя, она дает накипь. По окончании кипячения воду сливают, инструменты берут стерильным пинцетом.
Стерилизация текучим паром. Текучим называется насыщенный водяной пар (без примеси воздуха), имеющий давление 760 мм рт. ст. и температуру 100
°С. Стерилизацию текучим паром осуществляют в паровом стерилизаторе или ав- токлаве при открытом спусковом кране в течение 15 - 60 мин в зависимости от объема раствора. Аппарат Коха представляет собой сосуд цилиндрической формы, сверху закрытый крышкой с отверстиями для термометра и для выхода пара. На дно сосуда помещена подставка с отверстиями, до уровня которой наливают воду. Предназначенные для стерилизации питательные среды ставят на подставку. Для уничтожения спор стерилизацию проводят дробно, а в промежутках среды хранят в термостате для прорастания спор.
Тиндализация -жидкость стерилизуется дробно при 60-65 °С пять дней под- ряд по 30 мин. Это используют для стерилизации сред, содержащих яичный белок, сыворотку крови, витамины. В первый день среды стерилизуют 2 часа, в после- дующие дни – по одному часу. В промежутках между прогреваниями среды хра- нят в термостате, чтобы споры проросли,а затем вегетативные клетки были уничтожены при следующем прогревании.
Пастеризация– это метод частичной стерилизации, предложенный Пастером для обработки пищевых продуктов, нестойких к действию высокой температуры (вино, пиво, молоко, соки). Продукт нагревают до 65-80 °С в течение 10-60 мин, затем резко охлаждают. При этом погибают вегетативные формы бактерий, а споры сохраняются. Последующее хранение при низкой температуре (4-5 °С) препятствует прорастанию спор и размножению оставшихся в продукте микробов.
Стерилизация паром под давлением, или автоклавирование. Автоклав представляет собой двустенный металлический котел с герметически закрываю- щейся крышкой (рисунок 37). В пространство между стенками автоклава налива- ют воду,уровень которой в котле определяют по уровню ее водомерной трубки. Снаружи котел одет металлическим кожухом, в ко-
тором есть два манометра, показывающие давление пара внутри котла и между стенками.
Стерилизуемый объект помещают внутрь паро- вой камеры. Во время нагревания автоклава после закрывания крана необходимо следить за давлени- ем, параллельно с возрастанием которого увеличи- вается температура пара. Зависимость между тем- пературой и давлением пара выражается следую- щим образом: 1 атм. - 100 °С; 1,5 атм. - 112,7 °С; 2
атм. - 119,6 °С; 3 атм. - 132,9 °С; 5 атм. - 151,1 °С.
Обычно стерилизация в автоклаве производится при
120 °С в течение 5-30 мин в зависимости от объема
Рисунок 37 - Автоклав.
раствора. Этим гарантируется достаточно полная стерилизация независимо от ви- да микроорганизма. Таким способом стерилизуют посуду,фильтры, инструменты, водные растворы устойчивых к воздействию высокой температуры лекарственных веществ, перевязочный материал, а также трупный материал.
Фильтрация. Растворы, содержащие термолабильные вещества, удобнее все- го стерилизовать фильтрованием. Неглазурованные фарфоровые цилиндры (свечи Шамберлена) применялись уже в лаборатории Пастера. Фильтрация проводится через мембранные бактериальные фильтры – диски из нитроклетчатки, вставлен- ные в аппарат Зейтца и глубинные – свечи Шамберлена, Беркефельда. Некоторые из них выпускаются с различной величиной пор, что позволяет разделять орга- низмы разной величины и формы.
Облучение. Для полной или частичной стерилизации применяют ультрафио- летовые, рентгеновские и гамма-лучи. В лабораторных условиях наибольшее зна-
чение имеют ультрафиолетовые лучи. В спектре УФ-ламп преобладает излучение в области 260 нм,поглощаемое нуклеиновыми кислотами и при достаточно дли- тельном воздействии вызывающее гибель всех бактерий. УФ-облучение использу- ется для частичной стерилизации помещений;при этом бактерии погибают очень быстро, а споры грибов, гораздо менее чувствительные к ультрафиолету, значи- тельно медленнее. Бокс облучают 2-3 часа, лампы выключают не позднее, чем за 30 мин до начала работы.
Ионизирующее излучение, стерилизацию ультразвуком применяют для сте- рилизации питательных сред, пищевых продуктов и других компактных материа- лов.