- •Методика проведения экспертного исследования на вещества, изолируемые с водяным паром.
- •1.Предварительная проба на метиловый и этиловый спирты в моче и крови.
- •2. Предварительное газохроматографическое исследование.
- •2.3.Ход анализа.
- •3. Предварительная проба на присутствие трихлорсодержащих соединений.
- •4.Метод перегонки с водяным паром
- •4.2.Ход анализа.
- •5. Синильная кислота
- •5.1.Реакция образования берлинской лазури.
- •5.2.Реакция образования роданида железа.
- •5.3.Реакция образования бензидиновой сини.
- •5.4.Реакция с пикриновой кислотой.
- •5.5. Реакция образования полиметинового красителя
- •6.Формальдегид
- •6.2.Реакция с фуксинсернистой кислотой.
- •6.5. Реакция с резорцином.
- •6.6. Реакция с реактивом Фелинга.
- •7. Метиловый спирт
- •7.2.Окисление метилового спирта.
- •8.Этиловый спирт
- •9.Изоамиловый спирт
- •10.Ацетон
- •10.1.Реакция образования йодоформа.
- •10.3. Реакция с фурфуролом.
- •11.Хлороформ
- •12.Четыреххлористый углерод
- •13.Дихлорэтан
- •Методика экспертного исследования ядовитых и сильнодействующих веществ, изолируемых из биологического материала подкисленным этиловым спиртом и подкисленной водой
- •1.Предварительные пробы.
- •1.2.Рекомендуемые качественные цветовые тесты
- •2.Методы выделения токсических веществ, основанные на изолировании их подкисленным спиртом
- •2.1. Метод выделения токсических веществ, основанный на изолировании их этиловым спиртом подкисленным щавелевой кислотой
- •2.2.Методы выделения токсических веществ, основанные на изолировании их подкисленной водой
- •2.2.3.Предварительная обработка образцов
- •2.2.1.Метод изолирования с использованием щавелевой кислоты (Васильевой).
- •2.2.2.Метод изолирования с использованием серной кислоты (Крамаренко).
- •2.3. Выделение барбитуратов из биологического материала
- •2.3.3.Изолирование барбитуратов подщелоченной водой. (п. Валова).
- •3. Обнаружение веществ Тонкослойная хроматография
- •1. Методы изолирования:
- •2. Проведение тсх-скрининга :
- •4. Дополнительно могут использоваться гжх, мс, вэжх исследование
- •Обнаружение веществ, экстрагируемых органическими растворителями из кислых водных вытяжек
- •Барбамил
- •Барбитал
- •Фенобарбитал
- •Бутобарбитал
- •Этаминал-натрий
- •Гексенал
- •Производные ксантина
- •Наркотин
- •Меконин
- •Обнаружение веществ, экстрагируемых органическими растворителями из подщелоченных водных вытяжек
- •Опий и омнопон
- •Папаверин
- •Никотин
- •Скополамин
- •Стрихнин
- •Пахикарпин
- •Эфедрин
- •Аконитин
- •Аминазин
- •Дипразин
- •Тизерцин Тизерцин (левомепромазин. Левопромазин, метотримепразин и др.) — белый кристаллический порошок, слаборастворимый в воде, хорошо растворяется в этиловом спирте, диэтиловом эфире и хлороформе.
- •Промедол
- •Обнаружения в биологических объектах лекарственных веществ группы 1,4-бенздиазепина
- •Помехи со стороны других продуктов гидролиза
- •Получение метаболитов и приготовление стандартных растворов (на примере хлордиазепоксида)
- •Диазепам
- •Нитразепам
- •Оксазепам
- •Частные методики экспертного исследования обнаружения в биологических объектах лекарственных веществ группы 1,4-бенздиазепина
- •Помехи со стороны других продуктов гидролиза
- •Получение метаболитов и приготовление стандартных растворов (на примере хлордиазепоксида)
- •Диазепам
- •Нитразепам
- •Оксазепам
- •Методика экспертного исследования определении опиатов при химико-токсикологическом исследовании трупного материала
- •Методы изолирования алкалоидов группы опия.
- •1.1. Изолирование опиатов из мочи (трупный материал)
- •Изолирование опиатов из крови (трупный материал)
- •Изолирование морфина из желчи
- •Изолирование морфина из тканей внутренних органов.
- •2.0. Идентификация
- •2.1. Спектрофотометрическое исследование
- •2.2.Тсх исследование
- •3.0. Количественное определение морфина
- •Наркотин
- •Меконин
- •Методика экспертного исследования обнаружения в моче морфина и его метаболитов
- •Методика экспертного исследования по определению каннабиноидов в смывах слизистой полости рта, лица, рук, в крови, в моче, в тканях внутренних органов.
- •1.Выявление в смывах лица и рук.
- •1.2.Ход анализа.
- •1.2.4.Обнаружение методом тонкослойной хроматографии.
- •2.2.Ход анализа.
- •Методика экспертного исследования определения аконитина в трупном материале.
- •Методика экспертного исследования по определению в биологических объектах фосфорорганических соединений.
- •Методика экспертного исследования по определению в биологических объектах «металлических ядов»
- •Отбор и подготовка проб биологического материала для минерализации
- •Методические указания по обнаружению металлических ядов в патологическом материале с помощью экспрессных методов исследования. Метод осадочной хроматографии на бумаге
- •Полный химико-токсикологический анализ на «металлические яды»
- •1.Разрушение биологического материала азотной и серной кислотами
- •2. Разрушение биологического материала хлорной, азотной и серной кислотами
- •3. Разрушение биологического материала пергидролем и серной кислотой
- •5. Маскировка ионов в дробном анализе
- •6. Демаскировка ионов.
- •7. Обнаружение ионов металлов
- •7.1. Обнаружение соединений бария
- •7.1.2.Исследование минерализатов на наличие бария
- •7.1.2.2. Обнаружение ионов бария в его соединениях
- •8. Соединения свинца
- •8.1. Исследование минерализатов на наличие свинца
- •8.1.1. Исследование относительно больших осадков сульфата свинца
- •8.1.2. Исследование малых осадков сульфата свинца
- •9.Соединения висмута
- •9.1.Исследование минерализатов на наличие висмута
- •9.1.1. Предварительные реакции
- •9.1.2. Выделение ионов висмута из минерализата.
- •10. Соединения кадмия
- •10.1. Исследование минерализатов на наличие соединений кадмия
- •11. Соединения марганца
- •11.1.Исследование минерализатов на наличие соединений марганца
- •12. Соединения меди
- •12.1. Исследование минерализатов на наличие соединений меди
- •13. Соединения мышьяка
- •13.1. Исследование минерализатов на наличие соединений мышьяка
- •13.1.1. Предварительные реакции.
- •14. Соединения серебра
- •14.1. Исследование минерализатов на наличие серебра
- •15. Соединения сурьмы
- •15.1. Исследование минерализата на наличие сурьмы
- •16. Соединения таллия
- •16.1. Исследование минерализатов на наличие таллия
- •17. Соединения хрома
- •17.1. Исследование минерализатов на наличие хрома
- •18. Соединения цинка
- •18.1.Исследование минерализатов на наличие цинка
- •19. Соединения ртути
- •19. 2. Методика деструкции органических веществ в моче.
- •19.4. Обнаружение ртути в деструктате
- •20. Количественное определение «металлических ядов» в минерализатах
- •20.1. Количественное определение ртути
- •20.2. Реактивы и растворы
- •21. Экстракционно-фотоколориметрическое определение меди
- •Методика экспертного исследования по определению веществ, изолируемых из биологического материала диализом (настаиванием с водой).
- •Вещества, изолируемые из биологического материала настаиванием с водой
- •1.Минеральные кислоты и щелочи
- •1.2.Серная кислота
- •1.2.5.Качественный анализ.
- •1.3.Азотная кислота
- •1.3.1.Подготовка материала. Удаление нитритов из исследуемых растворов.
- •1.3.3.Отгонка азотной кислоты из диализатов. Отгонка ведется по методике описанной в 1.2.4.1.
- •1.3.4. Качественный анализ.
- •1.4.Соляная кислота
- •1.4.3.Отгонка соляной кислоты из диализатов. Отгонка ведется по методике описанной в 1.2.4.1.
- •1.4.4. Качественный анализ.
- •2.Едкие щелочи и аммиак
- •2.2. Методика исследования на наличие карбонатов щелочных металлов (реакция с хлоридом бария) и на присутствие в них катионов калия, натрия и аммония.
- •2.2. Гидроксид калия
- •2.3.Гидроксид натрия
- •2.4. Аммиак
- •3.Соли щелочных металлов
- •3.1.Нитриты
- •3.1.1. Качественный анализ.
- •Количественное определение нитритов в биологических объектах методом капиллярной газовой хроматографии.
- •Методика экспертного исследования по определению фторид-иона в трупном материале.
- •2.Обнаружение фторид-иона.
- •3.Количественное определение.
- •Методика экспертного исследования по определению брома и йода в трупном материале.
- •Методика экспертного исследования по определению карбоксигемоглобина в крови.
- •Введение.
- •2. Химические методы обнаружения оксида углерода (II) в крови
- •Оценка результатов химических методов обнаружения.
- •3. Количественное определение оксида углерода (II) в крови
- •Судебно-медицинская оценка результатов количественного определения карбоксигемоглобина в крови
- •Методика экспертного исследования методом микродиффузии
- •Метод микродиффузии
- •Методика экспертного исследования по определению в биологических объектах некоторых ядохимикатов методом тонкослойной хроматографии.
- •1. Введение
- •3.3 Тсх анализ синтетических пиретроидов (сп).
- •Методика экспертного исследования по определению фторид-иона в трупном материале.
- •2.Обнаружение фторид-иона.
- •3.Количественное определение.
- •1.Условия газохроматографического исследования.
- •2.Методика исследования.
- •3.К судебно-медицинской оценке результатов анализа.
Опий и омнопон
Опий представляет собой сложную смесь алкалоидов, получаемую из снотворного мака. Для этой цели на недозревших коробочках (головках) снотворного мака делают надрезы, из которых вытекает млечный сок. Высохший на маковых коробочках млечный сок применяется в медицине под названием опий. В состав опия входит свыше 20 алкалоидов. В зависимости от сорта и места произрастания снотворного мака в опии может содержаться от 2—3 до 15—20 % алкалоидов, главными из которых являются морфин, кодеин, наркотин, тебаин и папаверин. К веществам, которые сопутствуют алкалоидам в опии, относятся меконовая кислота и меконин.
Обнаружение морфина, кодеина, наркотина и меконовой кислоты является доказательством наличия опия в исследуемых объектах. Для доказательства отравлений опием кроме обнаружения указанных выше веществ исследуемые объекты необходимо дополнительно проверить на наличие меконина. Это мотивируется тем, что реакции обнаружения меконовой кислоты малочувствительны и что она относительно быстро разлагается в биологическом материале. Для обнаружения меконовой кислоты необходимо, чтобы в исследуемом материале содержалось не меньше 0,05 г опия.
Обнаружение меконовой кислоты (способ описанн выше) позволяет отличить опий от омнопона при исследовании вытяжек из биологического материала, поступившего на химико-токсикологический анализ. Опий содержит меконовую кислоту, а в омнопоне она отсутствует.
При химико-токсикологических исследованиях алкалоидов опия в биологическом материале их экстрагируют органическими растворителями из подщелоченных вытяжек. Морфин, кодеин, папаверин и тебаин хорошо экстрагируются органическими растворителями из щелочной среды. Однако значительное количество тебаина может экстрагироваться и из кислой среды. Наркотин начинает экстрагироваться хлороформом, 1,2-дихлорэтаном при рН выше единицы. При рН = 5...7 теми же органическими растворителями экстрагируется свыше 90 % наркотина.
Омнопон (пантопон) представляет собой смесь гидрохлоридов алкалоидов опия. В состав омнопона входят около 50 % морфина и 32—35 % других алкалоидов. Омнопон представляет собой порошок от кремоватого до коричневато-желтого цвета. Он растворяется в воде (1 : 15) и этиловом спирте (1 :50). При взбалтывании водных растворов омнопона они сильно пенятся. Омнопон в основном применяется для тех же целей, что и морфин. Выпускается промышленностью в виде порошка и ампул. В 1 мл 1 %-го раствора омнопона содержится 6,7 морфина гидрохлорида, 2,7 наркотина, 0,72 кодеина, 0,36 папаверина гидрохлорида и 0,05 мг тебаина.
В химико-токсикологическом анализе при исследовании биологического материала на наличие омнопона в вытяжках определяют наличие морфина, кодеина и наркотина, а при исследовании биологического материала на наличие опия определяют те же алкалоиды и дополнительно проводят реакции идентификации на меконовую кислоту и по возможности на меконин. В омнопоне меконовая кислота и меконин отсутствуют.
МОРФИН
Морфин является одним из главных алкалоидов опия, в котором содержится 3—20 % этого алкалоида. В молекуле морфина содержится атом азота, ОН-группа фенольного-и ОН-группа спиртового характера. Наличие атома азота и указанных ОН-групп обусловливает химические свойства морфина, используемые для аналитических целей. Осно вание морфина слабо растворяется в воде (в холодной 1 :5000, в кипящей — 1 :500) и диэтиловом эфире (1:7630). Еще хуже основание морфина растворяется в диэтиловом эфире, насыщенном водой (1 : 10 600). Основание морфина слабо растворяется в бензоле (1 : 1600) и хлороформе (1 : 1500), лучше — в этиловом спирте (в холодном 1 : 250, в кипящем — 1:13).
Ацетат морфина растворяется в этиловом спирте (1: 100), лучше — в воде (1 : 2,5), почти не растворяется в диэтиловом эфире.
Гидрохлорид морфина растворяется в этиловом спирте (1 : 100), воде (1 : 23), почти не растворяется в диэтиловом эфире и хлороформе.
Сульфат морфина слабо растворяется в этиловом спирте (1 : 1000), лучше — в воде (1 :21), практически не растворяется в диэтиловом эфире и хлороформе.
Тартрат морфина растворяется в воде (1 : 10), хуже — в этиловом спирте (1 : 1000), почти не растворяется в диэтиловом эфире и хлороформе.
Морфин экстрагируется органическими растворителями из щелочных водных растворов. Максимальные количества морфина экстрагируются хлороформом при рН = 8,6...10,2.
Действие на организм. В медицине применяется гидрохлорид морфина. Этот препарат является основным представителем группы наркотических анальгетиков.
Морфин оказывает сильное болеутоляющее действие, понижает возбудимость болевых центров, оказывает противошоковое действие при травмах и т. д. Морфин вызывает эйфорию. При повторном применении морфина к нему быстро развивается болезненное пристрастие (морфинизм). Слабо всасывается в кровь через пищеварительную систему. После парентерального введения морфина в организм максимальный уровень его в крови достигается примерно через 1 ч.
Метаболизм. В организме основное количество морфина связывается с глюкуроновой кислотой и в виде глюкуронида выделяется с мочой. За первые 8 ч после введения морфина 50 % его выделяется с мочой в виде глюкуронида, а за 24 ч выделяется из организма примерно 90 % глюкуронида морфина. В организме незначительная часть морфина подвергается N-деметилированию (образуется норморфин) и О-метилированию (образуется кодеин).
В органах трупов морфин постепенно превращается в псевдоморфин (оксидиморфин, дегидроморфин), по которому определяют отравление морфином.
Выделение морфина из биологического материала. Для выделения морфина из биологического материала рекомендованы методы, основанные на изолировании этого алкалоида спиртом, подкисленным щавелевой кислотой, или водой, подкисленной щавелевой или серной кислотой. Большие количества морфина выделяются с помощью метода, основанного на изолировании его водой, подкисленной серной кислотой.
Обнаружение морфина
Реакции с реактивами группового осаждения алкалоидов.
Морфин дает осадки с реактивами группового осаждения алкалоидов (реактивы Бушарда, Драгендорфа, Майера, Зонненшейна).
Цветные реакции. Морфин дает окраску с концентрированной азотной кислотой, реактивами Манделина, Марки, Фреде и Эрдмана. Эти реакции описаны выше.
Реакция Пеллагри. Выполнение реакции. В пробирку вносят несколько капель хлороформной вытяжки, которую выпаривают досуха. К сухому остатку прибавляют 1—2 капли концентрированной соляной кислоты. После растворения сухого остатка в этой кислоте в пробирку вносят 1—2 капли концентрированной серной кислоты и смесь нагревают на водяной бане до полного выпаривания соляной кислоты. После этого жидкость еще нагревают в течение 15 мин, потом охлаждают и прибавляют 2—3 мл воды. Если при этом образуется осадок, то его растворяют в нескольких миллилитрах разбавленной соляной кислоты. Полученный раствор нейтрализуют 10 %-м раствором карбоната натрия и прибавляют 2—3 капли спиртового раствора иода. При этом появляется зеленая окраска. После прибавления 0,5—1,0 мл диэтилового эфира и взбалтывания водный слой сохраняет зеленую окраску, а зфирный приобретает пурпурно-красную. Избыток иода мешает этой реакции, так как его окраска маскирует окраску конечного продукта реакции. Реакцию Пеллагри дают и другие вещества (кодеин, этилморфин, диацетил морфин, апоморфин и др.).
Реакция с хлоридом железа (Ш). В фарфоровую чашку вносят несколько капель хлороформной вытяжки, которую при комнатной температуре выпаривают досуха. К сухому остатку прибавляют 1—2 капли свежеприготовленного 2 %-го раствора хлорида железа (Ш). При наличии морфина появляется синяя окраска.
Реакция с йодноватой кислотой (НIO 3 ). При взбалтывании раствора морфина, слабо подкисленного серной кислотой, с раствором йодноватой кислоты или раствором иодата калия (KIO 3 ), не содержащего иодидов, выделяется свободный иод, который при взбалтывании с хлороформом переходит в хлороформный слой, окрашивая его в фиолетовый цвет.
Эту реакцию дают и некоторые примеси, которые переходят в хлороформную вытяжку при выделении морфина из биологического материала. Поэтому реакцию с HIO 3 можно применить для обнаружения морфина в препарате и смесях лекарственных веществ, а также в хорошо очищенных вытяжках из биологического материала.
Реакция с гексацианоферратом (Ш) калия и хлоридом железа (Ш). К водному раствору исследуемого вещества прибавляют несколько капель смеси растворов гексацианоферрата (III) калия и хлорида железа (III). При наличии морфина появляется синяя окраска или такого же цвета осадок.
Эту реакцию дают и некоторые примеси, которые из биологического материала переходят в алкалоидные вытяжки. Поэтому реакцию с гексацианоферратом (III) калия применяют для обнаружения морфина в лекарственных смесях и в хорошо очищенных вытяжках из биологического материала.
Метод хроматографии. На линию старта на хроматографической пластинке наносят аликвоту хлороформной вытяжки. Правее на расстоянии не менее 1 см на линию старта наносят каплю раствора «свидетеля» (0,01 %-й раствор морфина в хлороформе). Пятна на пластинке подсушивают на воздухе. Затем пластинку вносят в камеру для хроматографирования, насыщенную парами растворителей (эфир — ацетон — 25 %-ый аммиак в соотношении 40 : 20 : 2). Камеру плотно закрывают крышкой. После того как система растворителей поднимется на 10 см выше линии старта, пластинку вынимают из камеры, подсушивают на воздухе и опрыскивают реактивом Драгендорфа, модифицированным по Мунье.
При наличии морфина пятна этого алкалоида на хроматографической пластинке приобретают розовато-бурую окраску (Rf = 0,18±0,01).
Приготовление реактива Драгендорфа, модифицированного по Мунье (см. выше).
Обнаружение морфина по УФ- и ИК-спектрам. Раствор морфина в этиловом спирте имеет максимум поглощения при 287 нм. В 0,1 н. растворе гидроксида натрия максимумы поглощения морфина наблюдаются при длинах волн, равных 250 и 296 нм. В 0,1 н. растворе серной кислоты морфин имеет максимум поглощения при 284 нм. Водные растворы гидрохлорида и сульфата морфина имеют максимум поглощения при 285 нм.
В ИК-области спектра основание морфина (диск с бромидом калия) имеет основные пики при 805, 1243, 1448, и 945 см -1.
Фотоколориметрический метод определения морфина
(по В. Ф. Крамаренко).
Техника определения. В мерную колбу вместимостью 25 мл вносят 3 мл 0,11 %-го раствора силиката калия K 2 SiO 3, 4 мл воды, 2 мл 0,5 н. раствора соляной кислоты и 2 мл 5 %-го раствора молибдата аммония. Через 3 мин прибавляют 2 мл исследуемого раствора и 5 мл 6 %-го раствора аммиака. Через 10 мин объем жидкости доводят водой до метки и измеряют оптическую плотность окрашенного в синий цвет раствора с помощью фотоэлектроколориметра ФЭК-М (светофильтр красный, кювета 3 мм). В качестве раствора сравнения берут смесь, состоящую из 3 мл 0,11 %-го раствора силиката калия, 2 мл 0,5 н. раствора соляной кислоты, 2 мл 5 %-го раствора молибдата аммония, 5 мл 6 %-го раствора аммиака и 13 мл. воды.
Расчет содержания морфина в пробах производят по калибровочному графику. Для построения калибровочного графика в 6 мерных колб вместимостью по 25 мл каждая вносят по 3 мл 0,11 %-го раствора силиката калия, 4 мл воды, 2 мл 0,5 н. раствора соляной кислоты и 2 мл 5 %-го раствора молибдата аммония. Через 3 мин в колбы вносят соответственно по 0,1; 0,5; 0,8; 1,0; 1,5 и 2,0 мл стандартного раствора (в 1 мл стандартного раствора содержится 2 мг гидрохлорида морфина), а далее поступают, как указано выше.
Этот метод позволяет определять от 0,2 до 4 мг морфина в пробе.
КОДЕИН
Кодеин представляет собой монометиловый эфир морфина. Он является одним из алкалоидов опия. В опии, полученном из снотворного мака, содержится 0,2—2 % кодеина. В отдельных сортах индийского опия содержится около 6 % кодеина. Кодеин является сильным основанием, которое не осаждается аммиаком. Основание кодеина растворяется в холодной (1 : 120) и кипящей воде (1 :20), диэтиловом эфире (1 : 50), хлороформе (1:2) и этиловом спирте (1:2). Гидрохлорид кодеина слабо растворяется в хлороформе (1 : 800), лучше —в этиловом спирте (1:100) и воде (1 : 30). Фосфат кодеина плохо растворяется в этиловом спирте (1 : 450), диэтиловом эфире и хлороформе, лучше — в воде (1 :4), сульфат кодеина плохо растворяется в этиловом спирте (1:1300), диэтиловом эфире и хлороформе, лучше — в воде (1:30).
Кодеин экстрагируется органическими растворителями из подщелоченных водных вытяжек. Максимальные количества кодеина экстрагируются хлороформом при рН = 8,0...3,5.
Действие на организм. Кодеин менее токсичен, чем морфин. Однако при частом, повторяющемся приеме кодеина возможно привыкание к нему.
Метаболизм. Кодеин подвергается метаболизму тремя путями. Часть кодеина связывается с глюкуроновой кислотой и выделяется из организма с мочой в виде глюкуронида. Некоторое количество кодеина подвергается О-деметилированию (образуется морфин) и N-деметилированию (образуется норкодеин). Образовавшиеся метаболиты (морфин и норкодеин) выделяется с мочой в виде глюкуронидов. Незначительная часть кодеина выделяется с мочой в несвязанном виде. Через 6 ч после поступления кодеина в кровь из организма выделяется около двух третих дозы этого алкалоида, а через 24 ч он почти полностью исчезает из организма.
Обнаружение кодеина
Реакция с реактивами группового осаждения алкалоидов. При взаимодействии кодеина с реактивами Драгендорфа, Бушарда, Майера и другими образуются осадки.
Цветные реакции. Кодеин с реактивами Манделина, Марки и Фреде дает окрашенные продукты реакции, которые описаны выше.
Реакция Пеллагри. При нагревании кодеина с концентрированной соляной кислотой, а затем с концентрированной серной кислотой происходит деметоксилирование этого алкалоида и образуется апоморфин, который дает реакцию со спиртовым раствором иода. Выполнение реакции Пеллагри описано выше.
Обнаружение кодеина методом хроматографии. На линию старта на хроматографической пластинке наносят аликвоту хлороформного раствора исследуемого вещества. Правее на расстоянии 2 см на линию старта наносят каплю раствора «свидетеля» (0,01 %-й раствор кодеина). Пятна нанесенных растворов подсушивают на воздухе, а затем пластинку вносят в камеру для хроматографирования, насыщенную парами растворителей (хлороформ-ацетон-диэтиламин в соотношении 50 : 30 : 2). После продвижения системы растворителей на 10 см выше линии старта пластинку вынимают из камеры, подсушивают на воздухе и опрыскивают реактивом Драгендорфа, модифицированным по Мунье.
При наличии кодеина в исследуемом растворе пятна этого алкалоида приобретают буровато-розовую окраску (Rf = 0,40± ±0,02).
Обнаружение кодеина по УФ- и ИК-спектрам. Основание кодеина в растворе этилового спирта имеет максимум поглощения при 286 нм; в ИК-области спектра основание кодеина (диск с бромидом калия) имеет основные пики при 1052 1268, 1500 см -1.
Способы идентификации, позволяющие отличить кодеин от морфина. Ввиду того что морфин и кодеин являются близкими по строению алкалоидами, они дают ряд реакций с одними и теми же реактивами. Однако кодеин не дает реакций с хлоридом железа (III), с НIO 3, с гексацианоферратом (III) калия и хлоридом железа (III), которые дает морфин. Кодеин можно отличить от морфина и по светопоглощению в ИК-области спектра.
Кодеин отличается от морфина и тем, что морфин не экстрагируется диэтиловым эфиром из щелочных растворов (образуется морфинат). Это свойство указанных алкалоидов используется для разделения их в ходе анализа.
Экстракционно-фотоколориметрический метод определения кодеина
Метод фотоколориметрического определения кодеина основан на реакции с тропеолином 00, при которой образуется ионный ассоциат, экстрагирующийся хлороформом:
Техника определения. 1 мл исследуемого раствора вносят в делительную воронку, прибавляют 9 мл ацетатной буферной смеси (рН = 4,6), 5 мл 0,1 %-го водного раствора тропеолина 00 и 5 мл хлороформа. Содержимое делительной воронки взбалтывают в течение 5 мин. Через 3 мин от водного слоя отделяют хлороформную вытяжку. Водный слой взбалтывают с новыми порциями хлороформа (по 5 мл) до тех пор, пока 3—4 капли последней хлороформной вытяжки не перестанут давать окраску с 1—2 каплями 1 %-го раствора концентрированной серной кислоты в метиловом спирте. Хлороформные вытяжки соединяют и доводят хлороформом до 50 мл. К 5 мл полученного хлороформного раствора прибавляют 20 мл хлороформа и 2,5 мл 1 %-го раствора концентрированной серной кислоты в метиловом спирте. Затем измеряют оптическую плотность полученного фиолетово-красного раствора с помощью фотоэлектроколориметра ФЭК-М (светофильтр зеленый, кювета 10 мм). В качестве раствора сравнения берут хлороформную вытяжку из смеси, совтоящей из 5 мл 0,1 %-го раствора тропеолина 00, 9 мл ацетатной буферной смеси (рН = 4,6) и 1 мл воды. К полученной хлороформной вытяжке прибавляют 2,5 мл 1 %-го раствора концентрированной серной кислоты в метиловом спирте.
Расчет содержания кодеина в пробе производят по калибровочному графику. Для построения калибровочного графика берут делительные воронки, в которые вносят по 0,1; 0,2; 0,4; 0,6; 0,8 и 1 мл стандартного раствора (в 1 мл содержится 2 мг фосфата кодеина). В первые 5 делительных воронок прибавляют воду до 1 мл. Затем во все делительные воронки вносят по 9 мл ацетатной буферной смеси (рН = 4,6), по 5 мл 0,1 %-го раствора тропеолина 00 и поступают, как указано выше.
С помощью этого метода можно определить от 0,2 до 2,0 мг кодеина в пробе.
