- •1.1.1 Стійкий і тимчасовий плазмоліз
- •1.1.2 Вплив різних іонів на форму плазмолізу
- •Проникність мембран живих і мертвих клітин
- •1.2 Виявлення життєздатності клітин
- •1.2.1 Визначення життєздатності насіння методом фарбування (за д. Н. Нелюбовим)
- •1.2.2 Прижиттєве фарбування клітин нейтральним червоним
- •Використання солей тетразолію для виявлення живих і мертвих клітин
- •1.3 Рух цитоплазми
- •1.3.1 Спостереження за рухом цитоплазми у різних об'єктів
- •1.3.2 Визначення швидкості руху цитоплазми
- •Контрольні питання.
- •2.2 Кислотний гідроліз крохмалю
- •2.3 Ферментативний гідроліз крохмалю
- •Визначення ліполітичної активності насіння
- •Екстракція кислої ліпази насіння
- •2. Визначення ліполітичної активності
- •3.1. Явище осмосу. Переміщення води за градієнтом водного потенціалу в штучній «клітинці» Траубе
- •3.2 Визначення осмотичного тиску клітинного соку плазмолітичним методом (за де-Фрізом)
- •3.3 Визначення всисної сили клітин за зміною концентрації розчинів
- •Рефрактометричний метод (за н. А. Максимовим і н. З. Петіновим)
- •3.3.2 Метод цівок (за в. С. Шардаковим)
- •3.4. Визначення водного потенціалу рослинних тканин методом Уршпрунга (за зміною довжини брусків тканини)
- •Питання до семінару «Фізіологія рослинної клітини. Клітина як осмотична система»
- •Питання модульної контрольної роботи №1
- •4.2. Вплив зовнішніх умов на процес гутації
- •4.3. Визначення інтенсивності транспірації за зменшенням маси зрізаного листя
- •4.4. Порівняння транспірації верхньої і нижньої сторін листа хлоркобальтовим методом
- •4.5 Вплив зовнішніх умов на стан продихів (за Молішем)
- •4.6. Визначення стану продихів методом відбитків
- •Підняття води в рослині по судинах
- •Контрольні питання
- •5. Фотосинтетичні пігменти Мета.
- •Питання до обговорення.
- •5.2 Хімічні властивості пігментів
- •Омилення хлорофілу лугом
- •5.3 Розділення суміші фотосинтетичних пігментів
- •Метод Крауса
- •Метод Цвета
- •Приготування витяжки пігментів з листя рослин.
- •Концентрування пігментів в бензині.
- •Приготування адсорбційної колонки.
- •Розділення пігментів.
- •Метод хроматографії на папері
- •Оптичні властивості пігментів зеленого листа
- •Спектри поглинання пігментів
- •Флуоресценція хлорофілу
- •6.2 Визначення інтенсивності фотосинтезу і дихання за зміною вмісту вуглецю
- •Питання до семінару «Фізіологія фотосинтезу»
- •Питання модульної контрольної роботи №2
- •Завдання для самостійної роботи Тема "Фізіологія рослинної клітини"
- •Тема "Водообмін рослин"
- •Тема "Фотосинтез"
- •Приклади розв’язання розрахункових задач за темами: «Фізіологія рослинної клітини»
- •«Водообмін рослин»
- •«Фотосинтез»
- •Рекомендована література
2.2 Кислотний гідроліз крохмалю
Матеріали і обладнання: 1) 1% крохмальний клейстер; 2) 20% соляна кислота; 3) розчин I в КI в крапельниці (концентрований); 4) Фелінгова рідина; 5) Nа2SO3; 6) електроплитка з азбестовою сіткою; 7) штатив з пробірками (7 шт.); 8) піпетка, градуйована на 2 мл; 9) мірний циліндр; 10) колба.
Крохмаль
є полісахаридом (точніше, суміш двох
близьких полісахаридів — амілози і
амілопектину) з емпіричною формулою
(С6Н10О5)n
nH2O.
Молекула крохмалю складається з великої
кількості залишків глюкози, сполученої
попарно в мальтозу. Крохмаль є нерозчинним
у холодній воді, а в гарячій воді утворює
колоїдний розчин — крохмальний клейстер.
При кип'ятінні крохмального клейстеру
з мінеральною кислотою крохмаль
гідролізується до глюкози через ряд
проміжних продуктів з молекулярною
масою, що поступово зменшується, які
називають декстринами. Прослідити за
процесом гідролізу крохмалю можна за
допомогою реакції з розчином йоду, який
забарвлює крохмаль в синій колір,
амілодекстрин — у фіолетовий,
еритродекстрин — в червоний, ахродекстрин
— в помаранчевий, а з мальтодекстрином
і мальтозою забарвлення не дає (залишається
жовтим).
Хід роботи
Налити в колбу 50 мл 1% крохмального клейстеру. Поставити в штатив 7 пробірок і відлити в першу пробірку 4—5 мл крохмального клейстеру. Внести в колбу 1,5 мл 20% розчину НС1 і нагрівати на електроплитці. При появі перших пухирців (початок кипіння) відлити з колби 4—5 мл в другу пробірку. Продовжувати кип'ятити вміст колби, відливаючи з неї через кожні 5 хв. по 4—5 мл в наступні пробірки. Дати пробам в пробірках охолодитися, розбавити їх водою і додати по 5 крапель розчину I2 в КI. Якщо забарвлення йоду відсутнє, гідроліз можна вважати закінченим. Виконати з розчином, що залишився в колбі, реакцію на редукуючі сахари: налити 2—3 мл рідини в чисту пробірку, нейтралізувати кислоту содою, підлити рівний об'єм Фелінгової рідини і довести до кипіння. Результати занести в таблицю 2.3
Таблиця 2.3
Тривалість гідролізу (хв.) |
0 |
5 |
10 |
15 |
20 |
25 |
30 |
Забарвлення розчину |
|
|
|
|
|
|
|
Завдання: заповнити таблицю 2.3, зробити висновок про причини зміни забарвлення розчинів і вказати час, протягом якого відбувся повний гідроліз крохмалю.
2.3 Ферментативний гідроліз крохмалю
Матеріали і обладнання: 1) солод; 2) гліцерин; 3) 1% крохмальний клейстер; 4) слабий розчин I2 в КI (20 мл концентрованого розчину на 1 л води); 5) терези з важками; 6) мірний циліндр; 7) колби на 400—150 мл; 8) фільтри паперові; 9) воронка; 10) термометр; 11) електроплитка; 12) штатив з пробіркам (16 шт.); 13) піпетки на 5 мл; 14) піпетки градуйовані на 1—2 мл .
Під дією ферменту амілази крохмаль гідролізується через ті ж проміжні продукти (декстрини), які утворюються при кислотному гідролізі (див. попередню роботу), в чому легко переконатися по реакції з розчином йоду. Амілаза широко поширена в рослинах. Вельми активна амілаза міститься в солоді — подрібнених пророслих зернах злаків.
Якщо налити в пробірки однакову кількість розчину амілази і крохмального клейстеру, витримати їх при різних температурах і періодично робити проби з йодом, то за швидкістю появи проміжних продуктів можна судити про активність ферменту.
Хід роботи
Приготувати солодову витяжку, для чого помістити в колбу 10 г солоду, залити його 50 мл теплої води (35—40° С), додати трохи гліцерину для прискорення вивільнення ферменту, перемішати, настояти не менше за півгодини і профільтрувати; фільтрат містить активну амілазу.
Налити в 14 пробірок, розставлених в 2 ряди, по 5 мл слабого розчину йоду.
Нагріти водяну лазню до температури 45°С (можна використовувати колбу з водою потрібної температури). Налити в 2 чисті пробірки по 5 мл крохмального клейстеру і по 1 мл солодової витяжки і збовтати. Негайно узяти піпетками з цих пробірок по 0,5 мл рідини і внести в першу пару пробірок з розчином йоду, після чого одну пробірку з крохмалем і солодовою витяжкою (разом з піпеткою) помістити у водяну лазню (в колбу з водою 45° С), а іншу поставити в штатив. Через 3 хв. влити по 0,5 мл рідини в другу пару пробірок з розчинами йоду, ще через 2 хв. — в третю пару і т.д. Залежно від активності ферменту інтервал між узяттям проб може бути змінений; важливо тільки, щоб проби з обох пробірок бралися одночасно.
Таблиця 2.4
Забарвлення розчину за температури, 0С |
Тривалість гідролізу, хв. |
|||||||
0 |
3 |
6 |
9 |
12 |
15 |
18 |
21 |
|
20 |
|
|
|
|
|
|
|
|
45 |
|
|
|
|
|
|
|
|
Завдання: заповнити табл.2.4 і зробити висновок про вплив температури на активність амілази.
