- •Микробиология. Лабораторный практикум Волгоград 2012
- •Тема №2. Микроскопический метод исследования микроорганизмов.
- •Тема №3 «Бактериологические красители. Техника приготовления окрашенных препаратов бактерий. Простые и сложные методы окраски»
- •Тема №4. Специальные методы окраски и определение подвижности бактерий.
- •Тема №5. Питательные среды и приготовление их.
- •Тема №6. Техника посева бактериологических культур на жидкие и плотные питательные среды.
- •Тема №7. Культуральный рост микроорганизмов. Рост аэробов.
- •Тема №8. Биохимические свойства микробов и методы их изучения.
- •Тема №9. Заражение лабораторных животных. Определение патогенности микроорганизмов
- •Тема №10. Бактериофаги (биологические факторы)
- •Тема №11. Антибиотики и антибиотикочувствительность
- •Тема №12. Реакция агглютинации и ее модификации.
- •Тема №13. Реакция преципитации и ее модификации.
- •Тема №14. Реакция связывания комплемента (рск).
- •Тема №15. Метод флуоресцирующих антител (мфа). Реакция нейтрализации (рн).
- •Тема №16. Грамположительные, аэробные и факультативные кокки
- •Тема №17. Бактерии рода Streptococcus
- •Стрептококки группы в
- •S. Pneumoniae (пневмококк)
- •Лабораторная диагностика
- •Негемолитические стрептококки
- •Лабораторная диагностика
- •Тема №18. Бактерий рода Erysipelothrix
- •Питательные среды для культивирования е. Rhusiopathiae
- •Лабораторная диагностика бактерий рода Listeria
- •Лабораторная диагностика
- •Тема №19. Бактерии рода Mycobacterium
- •Лабораторная диагностика
- •Биологическая проба
- •Серологические исследования
- •Кожные пробы с туберкулином
- •Bacillus anthracis - Возбудитель сибирской язвы у человека и животных. Морфология возбудителя
- •Тема №20. Бактерии рода Clostridium
- •Возбудитель столбняка Clostridium tetani
- •Лабораторная диагностика
- •Возбудитель ботулизма Clostridium botulinum
- •Тема № 21. Бактерии рода Pasteurella
- •Лабораторная диагностика. Основана на выделении и индикации возбудителя. В мазках из клинического материала выявляют грамотрицательные мелкие палочки, часто окрашивающиеся биполярно.
- •Питательные среды для культивирования пастерелл
- •Тема № 22. Бактерии рода Brucella
- •Лабораторная диагностика
- •Тема № 23. Бактерии рода Pseudomonas
- •Pseudomonas aeruginosa (синегнойная палочка)
- •Морфология и тинкториальные свойства возбудителя
- •Биохимические свойства
- •Морфология и тинкториальные свойства
- •Культуральные свойства. Растет на простых средах, дополненных 4-5% глицерина; растет в интервале 20-45°с (оптимум 37°с); оптимум рН 6,5-7,2. Строгий аэроб.
- •Тема № 25. Бактерии рода Salmonella
- •Тема № 26.Возбудитель аспергиллеза.
Возбудитель ботулизма Clostridium botulinum
Clostridium botulinum — возбудитель ботулизма, вызывает тяжелую пищевую токсикоинфекцию. Clostridium botulinum широко распространены в почве, заболевание регистрируют повсеместно.
Выделение возбудителя проводят по общепринятой схеме (рис. 4). Лабораторному исследованию подлежат остатки пищевых продуктов, материал, полученный от больного, секционный материал. Кровь берут из вены в количестве 5-10 мл и разводят 3-4% раствором цитрата натрия в соотношении 2:1, промывные воды из желудка забирают в объеме 50-100 мл, кал — 50-60 г. На секции забирают кусочки печени (50-60 г), отрезки кишечника и желудка и их содержимое. До поступления в лабораторию образцы хранят на холоде.
Кровь исследуют только на наличие токсина с помощью биологической пробы на мышах (вводят 2 мл) или морских свинках (вводят 5-8 мл). Испражнения исследуют только на наличие возбудителя посевом на питательные среды, весь остальной материал — на наличие токсина и возбудителя. Банки с консервами выдерживают в термостате 10-12 суток, стерильно отбирают 50-100 г, растирают и центрифугируют, в надосадочной жидкости определяют токсин, в осадке — возбудитель. Мясо и рыбу обрабатывают спиртом и забирают пробы из внутренних частей (пробы рыбы рекомендуют брать от хребта и внутренних органов). Пробы изучают аналогично исследованиям консервированных продуктов.
Рисунок 14. Принципиальная схема бактериологического выделения Clostridium botulinum
Специальная среда для культивирования клостридий Китта-Тароцци, состав: Мясо или печень крупного рогатого скота нарезают мелкими кусочками, заливают трехкратным объемом МПБ или бульона Хоттингера (рН 7,4—7,6) и 30 минут кипятят. Затем среду фильтруют, печень (мясо) промывают водопроводной водой, подсушивают фильтровальной бумагой. По 3—4 кусочка мяса (печени) помещают в пробирку, наливают 7—8 мл бульона, покрывают слоем вазелинового масла и стерилизуют при 120°С 20 минут. Перед использованием среду регенерируют (кипятят с последующим охлаждением).
Тема № 21. Бактерии рода Pasteurella
Цель занятия: изучить бактерии рода Pasterella, морфологию, структуру.
Материалы и оборудование: культуры микроорганизмов рода Pasterella, чашки Петри, штативы с пробирками
Pasteurella — род паразитических бактерий, вызывающих поражения у млекопитающих и птиц. Пастереллезы (геморрагическая септицемия) - инфекционная болезнь многих видов сельскохозяйственных животных, птиц и людей. Она характеризуется явлениями септицемии и воспалительно-геморрагическими процессами во внутренних органах, на серозных и слизистых оболочках.
Род включает много видов, основные из которых — Р.multocida с подвидами (multocida, septica и gallicida), P. dagmatis, P. gallinarum, P. canis, P. stomatis, P. anatis, P. langaa, P. avium, Р. aerogenes, P. haemolytica, P. pneumotropica и Р. volantium. Типовой вид — Р. multocida.
Пастереллы часто входят в состав микрофлоры дыхательных путей и глотки многих животных и птиц. При неблагоприятных условиях (обычно на фоне стресса) Р. multocida способна вызывать пневмонии и сепсис у животных (заболевания известны как транспортная лихорадка и куриная холера, гемморагическая септицемия). P. haemolytica – возбудитель септицемии ягнят и пневмонии КРС и овец. Заболевания человека до настоящего времени слабо изучены.
Пастереллы — мелкие грамотрицательные коккобациллы (0,3-1,40,25-0,4 мкм); у Р. multocida, P.haemolytica и иногда у Р.pneumotropica выявляют капсулу. На этапах выделения предпочтительно использовать кровяные или сывороточные среды; вторичные генерации хорошо растут на обычных бактериологических средах. На твердых средах образуют мелкие, серые, иризирующие (радужные) при боковом освещении колонии (на момент выделения обычно S-формы); на жидких дают гомогенное помутнение и иногда осадок (на пептонной воде растут плохо).