Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
МР ЛФ для Студентов / MR_LF_chastn_stud_mikologia.doc
Скачиваний:
76
Добавлен:
19.06.2017
Размер:
174.59 Кб
Скачать

Материал для исследования

№ п/п

Виды

Техника отбора материала для исследования

1

Кровь

  • Лучше брать при подъеме температуры

  • В период лечения пробы следует брать многократно (не менее 2 - 3 раз). При остром течении – 2 - 3 пробы, при хроническом – 5 - 6 проб 2 раза в сутки.

  • Брать надо в среднем 12 мл крови. Из них 10 мл срочно засевают в 100 мл жидкой питательной среды (соотношение 1:10), 2 мл вносят в пробирку с 0,2 мл 5% цитрата натрия и направляют в лабораторию.

2

Мокрота

  • До взятия материала рот больного прополоскать кипяченой водой.

  • При сборе мокроты больной не должен напрягаться для ее отхаркивания.

  • Усилить отделение мокроты можно после ингаляции в течение 15 мин теплого 10% раствора хлорида натрия.

  • Мокроту до начала исследования можно кратковременно (но не более 1 ч) хранить в холодильнике при + 40С.

  • Материал со слизистых оболочек полости рта, носоглотки, гортани, брать (до приема пищи) стерильным ватным тампоном.

  • Кусочки пленки отбирают пинцетом. Материал из миндалин извлекают из глубины крипт.

  • Слизь из носоглотки следует брать через нос ( в носовое отверстие вводят стерильную трубочку, через нее пропускают тампон на проволоке).

  • Из полости носа материал можно брать хирургической ложкой, ушным пинцетом.

3

Спинно-мозговая жидкость

  • Берут по общим правилам, асептически, во время пункции.

4

Моча

  • Следует брать утреннюю мочу в количестве 3-5 мл в середине мочеиспускания. Хранить при комнатной температуре не более 2 ч или в холодильнике – не более 24 часов.

5

Фекалии

  • Брать слизисто-гнойные комочки из разных мест каловых масс.

  • Материал из прямой кишки может быть получен с помощью ректального тампона, а у детей – трубочкой Цимана с отверстиями.

  • Фекалии хранить при комнатной температуре можно 1 ч, при 00С – 24 часа.

6

Кожа, ногти,

волосы

  • Пробы берут до начала, во время и после лечения. В двух последних случаях мазь, краску смывают за 2-3 дня до сбора материала.

  • Кожу и ногти предварительно обрабатывают 70% этиловым спиртом.

  • При остром процессе кожные чешуйки берут по периферии очага, при хроническом – с поверхности всего очага.

  • Кожные чешуйки снимают скальпелем, можно пинцетом (лучше с кожи между пальцами).

  • Кожные чешуйки можно собирать с помощью прозрачной липкой ленты. После обработки кожи – ленту приклеить к предметному стеклу и в таком виде отправить в лабораторию.

  • Волосы собирают из очагов поражения, облысения с помощью эпиляционного пинцета.

  • При хронической трихофитии их отбирают из толщи кожных чешуек в виде коротких (1 - 3 мм) закрученных волосков («черные точки»), извлекая их иглой или скальпелем.

  • Перекрученные обломанные короткие волосы типичны для трихофитии.

  • Сравнительно длинные (5 - 10 мм), с беловатым чехлом у основания характерны для микроспории (в УФЛ они дают желто-зеленую флюоресценцию).

  • Длинные, как бы посыпанные мукой, - типичны для парши (желто-зеленая или белая флюоресценция).

  • При отборе материала полезно использовать ультрафиолетовую лампу. В лучах, которой светятся волосы, пораженные одним из указанных грибов. С помощью этого метода удается обнаружить даже единичный пораженный волос. Метод особенно полезен при массовых обследованиях детей.

  • При лечении мазями свечение прекращается. Его можно восстановить через 3 - 4 дня после тщательного мытья головы.

  • Пораженный край ногтя срезают или скальпелем или ножницами, и затем делают соскоб из глубины ногтевой пластинки.

7

Биопсированная ткань

  • Берут два кусочка тканей: один кусочек помещают в изотонический 0,85 – 0,9 % раствор хлорида натрия и направляют в микологическую лабораторию; другой – фиксируют формалином и направляют на гистологическое исследование.

Приложение 2