Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Новые методы анализа аминокислот, пептидов и белков

..pdf
Скачиваний:
22
Добавлен:
23.10.2023
Размер:
26.6 Mб
Скачать

ДОСТУПНОСТЬ ДЛЯ РЕАГЕНТОВ АМИНОКИСЛОТНЫХ ОСТАТКОВ

383

139.Fraenkel-Conrat Н., Olcoit Н. S., J. Am. Chem. Soc., 68, 34 (1946).

140.Nakaya /(., Horitiishi Н., Shibata К., J. Biochem. (Tokyo), 61, 337 (1967).

141.Sakaguchi S., J. Biochem. (Tokyo), 5, 25 (1925).

142.Sakaguchi S„ J. Biochem. (Tokyo), 37, 231 (1950).

143.Ozawa /(., Ishida R., Kaino T., Tanaka S., Seikagaku, 39, 568 (1967).

144.Takahashi /(., J. Biol. Chem., 243, 6171 (1968).

145.King T. P., Biochemistry, 5, 3454 (1966).

146.

Hoare D. G., Koshland D. E., Jr., J. Am. Chem.

Soc., 88,

2057 (1966).

147.

Horitiishi H., Nakaya K., Tani A., Shibata K., J.

Biochem.

(Tokyo), 63,

41(1968).

148.Chibnall A. C., Mangan J. L., Rees M. W., Biochem. J., 68, 114 (1958).

149.Wilcox P. E., Abstracts 12th Intern. Congr. Pure Appl. Chem. New York, 1951, 61, 62.

150.Broomfield C. A., Riehm J. P., Scheraga H. A., Biochemistry, 4, 751 (1965).

151.Riehm J. P., Broomfield C. A., Scheraga H. A., Biochemistry, 4, 760 (1965).

152.Riehm J. P„ Sheraga H. A., Biochemistry, 4, 772 (1965).

153.Boyer P. D., J. Am. Chem. Soc., 76, 4331 (1954).

154.Nosoh Y., J. Biochem. (Tokyo), 50, 450 (1961).

155.Bennett H. S., Yphantis D. A., J. Am. Chem. Soc., 70, 3522 (1948).

156.Murachi T., Nippon Kagaku Zasshi, 88, 899 (1967).

157.Murachi T., Yasui M., Seikagaku, 33, 586 (1961).

158.Alexander N. M., Anal. Chem., 30, 1292 (1958).

159.

Sekine

T., Barnett

L.

M„

Kielley W. W., J. Biol. Chem., 237, 2769(1962).

160.

Sekine

T., Kielley

W.

W.,

Biochim. Biophys. Acta, 81, 336 (1964).

161.

Sekine

T., Yamaguchi

M., J. Biochem. (Tokyo), 54, 196 (1963).

162.

Witter A., Tuppy H., Biochim. Biophys. Acta, 45, 429

(1960).

163.

Yamashita T., Soma

Y., Kobayashi S., Sekine T.,

Titani K-, Narlta K-,

J. Biochem. (Tokyo), 55, 576 (1964).

164.Miyake T., Kanda M., Murachi T., Seikagaku, 37, 535 (1965).

165.Murachi T., Miyake T., Mizuno M., Abstracts 7th Intern. Congr. Biochem. Tokyo, 1967, 765.

166.Ellman G.L, Arch. Biochem. Biophys., 82, 70 (1959).

167. Jansen E. F., Nutting M. D. F., Jang R., Balls A. K., J. Biol. Chem., 179,

189(1949).

168.Jansen E. F., Nutting M. D. F., Jang R., Balls A. K-, J. Biol. Chem., 179, 201 (1949).

169. Jansen E. F., Jang R., Balls A. K-, J. Biol. Chem., 196, 247 (1952).

170.Dixon G. H., Neurath H., Biochim. Biophys. Acta, 20, 572 (1956).

171.Dixon G. H., Dreyer W. J., Neurath H., J. Am. Chem. Soc., 78, 4810 (1956).

172.Murachi T., Biochim. Biophys Acta, 71, 239 (1963).

173.Murachi T., Yasui M., Biochemistry, 4, 2275 (1965).

174.Taylor E. L., Meriwether В. P., Park J. H., J. Biol. Chem., 238, 734 (1963).

175. Harris J. /., Structure and Activity of Enzymes, Ed. by T. W. Goodwin,

J. I. Harris and B. S. Hartley, Academic Press, New York, 1965, p. 97.

176.Fahrney D. E., Gold A. M., J. Am. Chem. Soc, 85, 907 (1963).

177.Gold A. M., Biochemistry, 4, 897 (1965).

178.Rizok D., Kallos J., Biochem. Biophys. Res. Commun., 18, 478 (1965).

179.Erlanger B. F., Cohen W., J. Am. Chem. Soc., 85, 348 (1963). •

180.Erlanger B. F., Cooper A. G., Cohen W., Biochemistry, 6, 190 (1966).

181.Erlanger B. F., Vratsanos S. M., Wasserman N., Cooper A. G., Biochem. Biophys. Res. Commun., 23, 243 (1966).

182.Kaufman H., Erlanger B. F., Biochemistry, 6, 1579 (1967).

183. Oosterbaan R. A., van Androchem M. E., Biochim. Biophys. Acta, 27, 423

г.

baan R. A., Kunst P., van Rotterdam J., Cohen J. A., Biochem, Biophys. Acta, 27, 556 (1958).

384

ГЛАВА 9

185.Cohen J. A., Oosterbaan R. A., Jansz H. S., Berends F., J. Cellular Comp. Physiol., 54, Suppl. No. 1, 231 (1959).

186.Singh A., Thornton E. R., Westheimer F. H,, J. Biol. Chem., 237, PC 3006

(1962).

187.Shafer J., Baronowsky P., Laursen R., Finn F., Westheimer F. H., J. Biol. Chem., 241, 421 (1966).

188.Jagannathan V., Luck J. M., J. Biol. Chem., 179, 569 (1949).

189.Koshland D. E., Erwin M. J., J. Am. Chem. Soc., 79, 2657 (1957).

190.Milsiein C., Sanger F., Biochem. J., 79, 456 (1961).

191.Harshman S., Najjar V. A., Biochemistry, 4, 2526 (1965).

192.Pizer L. /., J. Am. Chem. Soc., 80, 4431 (1958).

193.Fischer E. H., Structure and Activity of Enzymes, Ed. by T. W. Goodwin, J. I. Harris and Hartley B. S., Academic Press, New York, 1965, p. 111.

194.Fischer E. H., Kent A. B., Snyder E. R., Krebs E. G., J. Am. Chem. Soc.,

80, 2906 (1958).

195. Horecker B. L., Pontremoli S., Ricci C., Cheng T., Proc. Nat. Acad. Sci.

U.S„ 47, 1949 (1961).

196.Grazi E., Cheng T„ Horecker B. L., Biochem. Biophys. Res. Commun., 7, 250 (1962).

197.Grazi E., Rowley P. T., Cheng T., Tchola O., Horecker B. L., Biochem. Biophys. Res. Commun., 9, 38 (1962).

198.Grazi E., Meloche E., Martinez G., Wood W. A., Horecker B. L„ Biochem. Biophys. Res. Commun., 10, 4 (1963).

199.Friaovich /., Westheimer F. H., J. Am. Chem. Soc., 84, 3208 (1962).

200.Warren S., Zerner B., Westheimer F. H., Biochemistry, 5, 817 (1966).

201.Rajagopalan T. G., Stein W. H., Moore S., J. Biol. Chem., 241, 4295 (1966).

202.Hamilton G. A., Spona J., Crowell L. D., Biochem. Biophys. Res. Commun., 26, 193 (1957).

203.Plummer T. H., Jr., Lawson IF. B., J. Biol. Chem., 241, 1648 (1966).

204.Imamura K., Kanazawa T., Tada M., Tonomura Y., J. Biochem. (Tokyo), 57, 627 (1965).

205.Tonomura Y., Kanazawa T., J. Biol. Chem., 240, PC 4110 (1965).

206.Kanazawa T., Tonomura Y., J. Biochem. (Tokyo), 57, 604 (1965).

207.Kubo S., Kinoshita N., Tonomura Y., J. Biochem. (Tokyo), 60, 476 (1966).

208.Schoellmann G., Shaw E., Biochem. Biophys. Res. Commun., 7, 36 (1962).

209.Schoellmann G., Shaw E., Biochemistry, 2, 252 (1963).

210.Shaw E., Mares-Guia M., Cohen W., Biochemistry, 4, 2219 (1965).

211. Petra P. H., Cohen W., Shaw E., Biochem. Biophys. Res. Commun., 21,

612(1965).

212.Meloun B., Pospisilova D., Biochim. Biophys. Acta, 92, 152 (1964).

213.Smillie L. £., Hartley B. S., Abstract Federation Eur. Biochem. Soc., 1964, A-30.

214.Smillie L. B., Hartley B. S., Biochem. J., 101, 232 (1966).

215.Ong E. B., Shaw E., Schoellmann G., J. Biol. Chem., 240, 694 (1965).

216.Tomasek V., Severin E. S., Sorm F., Biochem. Biophys. Res. Commun., 20,

545(1965).

217.Shaw E., Springhorn S., Biochem. Biophys. Res. Commun., 27, 391 (1967).

218.Schramm H. J., Lawson W. B., Z. Physiol. Chem., 332, 97 (1963).

219.Lawson W. B., Schramm H. J., Biochemistry, 4, 377 (1965).

220.Hartley B. S., Structure and Activity of Enzymes, Ed. by T. W. Goodwin, J. I. Harris and B. S. Hartley, Academic Press, New York, 1965, p. 47.

221.Gundlach G., Turba F., Biochem. Z., 335, 573 (1962).

222.Kallos J., Rizok D„ J. Mol. Biol., 7, 599 (1963).

223.Brown J. R., Hartley B. S., Abstract Federation Eur. Biochem. Soc., 1964, A-29.

224.Inagami T., J. Biol. Chem., 239, 787 (1964),

ДОСТУПНОСТЬ ДЛЯ РЕАГЕНТОВ АМИНОКИСЛОТНЫХ ОСТАТКОВ

385

225.Inagami Т., J. Biol. Chem., 240, PC 3453 (1965).

226.Cohen J. A., Warringa M. G. P. J., Biochim. Biophys. Acta, 11, 52 (1953).

227.Koshland M. E., Englberger F. M., Koshland D. E., Jr., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S„ 45, 1470 (1959).

228.Vallee B. L., Coombs T. L.. Hoch F. L., J. Biol. Chem., 235, PC 45 (1960).

229.Vallee B. L., Riordan J. F., Coleman J. E., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S.,

49, 109 (1963).

230.Coombs T. L., Omote У., Federation Proc., 21, 234 (1962).

231.Coombs T. L., Omote Y., Vallee B. L., Biochemistry, 3, 653 (1964).

232.Walsh К■A., Sampath Kumar K. S. V., Bargetzi J. P., Neurath H., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S., 48, 1443 (1962).

233.Alexander P., Fox M., Stacey /(. A., Smith L. F„ Biochem. J„ 52, 177

(1952).

234. Grubhofer N., Schleith L., Hoppe — Seylers Z. Physiol. Chem., 297, 108 (1954).

235.Bar-Eli A., Katchalski E., Nature, 188, 856 (1960).

236.Bar-Eli A., Katchalski E., J. Biol. Chem., 238, 1690 (1963).

237.Rimon A., Alexander B., Katchalski E., Biochemistry, 5, 792 (1966).

238.Zahn H., Meienhofer J., Makromol. Chem., 26, 153 (1958).

239.Zahn H., Sixth Intern. Cong. Biochem. New York, 1964.

240.Marfey P. S., Uziel M., Little /., J. Biol. Chem., 240, 3270 (1965).

241.Phillip D. C., Sci. Am., 215, No. 5, 1966, 78.

242.Fasold H., Turba F., Biochem. Z., 337, 80 (1963).

243.Fasold H., Biochem. Z., 339, 482 (1964).

244.Fasold H., Biochem. Z., 342, 288 (1965).

245.Fasold H., Biochem. Z., 342, 295 (1965).

246.Ozawa H., J. Biochem. (Tokyo), 62, 419 (1967).

247.Zahn H., Zuber H„ Ber., 86, 172 (1953).

248. Tawde S. S., Sri Ram J., Iyengar M. R., Arch. Biochem. Biophys., 100,

270(1963).

249.Wold F„ J. Biol. Chem., 236, 106 (1961).

250.Wold F., Biochim. Biophys. Acta, 54, 604 (1961).

251.Herzig D. J., Rees A. W., Day R. A., Biopolymers, 2, 349 (1964).

252.Hiremath С. B„ Day R. A., J. Am. Chem. Soc., 86, 5027 (1964).

253.Dutton A., Adams M., Singer S. A, Biochem. Biophys. Res. Commun., 23,

730(1966).

254.Edsall J. T., Maybury R. H., Simpson R. B., Straessle R., J. Am. Chem. Soc., 76, 3131 (1954).

255.Lawson W. B., Schramm H. J., J. Am. Chem. Soc., 84, 2017 (1962).

256. Wetlaufer D. B., Edsall J.

T.,

Hollingworth

B. R.,

J.

Biol.

Chem.,

233,

1421 (1958).

M.,

Jr., Scheraga

H. A.,

J.

Am.

Chem.

Soc.,

257. Donovan J. IF., Laskowski

83, 2686 (1961).

 

 

 

 

 

 

 

258.Bigelow С. C., Geschwind I. I., Compt. Rend. Trav. Lab. Carlsberg, 31, 283 (1960).

259.Bigelow С. C., Sonenberg M., Biochemistry, 1, 197 (1962).

260.Blumenfeld O. O., Perlmann G. E., J. Gen. Physiol., 42, 563 (1959).

261.Edelhoch H., J. Am. Chem. Soc., 80, 6640 (1958).

262. Herskovits T. T., Laskowski M., Jr., J. Biol. Chem., 235, PC 56 (1960).

263.Hamaguchi K-, Kurono A., J. Biochem. (Tokyo), 54, 111 (1963).

264.Hamaguchi K , Kurono A., Goto S., J. Biochem. (Tokyo), 54, 259 (1963).

265.Foss J. G., Biochim. Biophys. Acta, 47, 569 (1961).

266.Wootton J. F., Hess G. P„ Nature, 199, 726 (1960).

267.Wootton J. F., Hess G. P., J. Am. Chem. Soc., 82, 3789 (1960).

268.Wootton J. F., Hess G. P., J. Am. Chem Soc., 83, 4234 (1961).

269.Wootton J. F., Hess G. P„ J. Am. Chem. Soc., 84, 440 (1962).

270.Chervenka С. H., Biochim. Biophys. Acta, 26, 222 (1957).

13 Зак. 25

386

ГЛАВА 9

271.Chervenka С. Н., Biochlm. Biophys. Acta, 31, 85 (1959).

272.Burr M„ Koshlartd D. E„ Jr., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S., 52, 1017 (1964).

273.Kirtley M. E., Koshland D. E., Jr., Biochim. Biophys. Res. Coinmun., 23, 810 (1966).

274.Conway A., Koshland D. E., Jr., Biochim. Biophys. Acta, 133, 593 (1967).

275.Ohnishi S., McConnell H. M., J, Am. Chem. Soc., 87, 2293 (1965).

276.Stone T. J., Buckman T., Nordio P. L., McConnell H. M., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S„ 54, 1010 (1965).

277.Griffith О. H., McConnell H. M., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S„ 55, 8 (1966).

278.Boeyens J. C. A., McConnell H. M., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S., 56, 22 (1966).

279. Ohnishi S., Boeyens J. C. A., McConnell H. M., Proc. Nat. Acad. Sci.

U. S., 56, 809 (1966).

280.Ogawa S„ McConnell H. M., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S., 58, 19 (1967).

281.Berlinger L. J., McConnell H. M., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S„ 55, 708 (1966).

282.Ohnishi S., Maeda T., Itoh T., Oh-Kenshu T., Tyuma I., Abstract Symp-. Protein Structure, 1967, 85.

283.Wishnia A., Proc. Nat. Acad. Sci. U. S„ 48, 2200 (1962).

284.Wishnia A., J. Phys. Chem., 67, 2079 (1963).

285.Wishnia A., Pinder T., Biochemistry, 3, 1377 (1964).

286.Wishnia A., Pinder T. W., Jr., Biochemistry, 5, 1534 (1966).

287.Oster G., J. Polymer Sci., 16, 235 (1955).

288.Oster G., Nishijima Y„ J. Am. Chem. Soc., 78, 1581 (1956).

289.Stryer L., J. Mol. Biol., 13, 482 (1965).

290.McClure W. O., Edelman G. M., Biochemistry, 5, 1908 (1966).

291.Deranleau D. A., Neurath H., Biochemistry, 5, 1413 (1966).

292.Takenaka O., Shibata K., Abstract Symp. Protein Structure, 1967, 1.

293.Takenaka O., Nishimura Y., Tani A., Shibata K., Biochim. Biophys. Acta, 207, 1 (1970).

294. Ooyashiki T., Sekine T., Kanaoka Y., Machida M., Seikagaku, 40, 563 (1968).

295.Sekine T., Ando K-, Ooyashiki T., Kanaoka Y„ Machida M., Seikagaku, 40, 568 (1968).

1

ГЛАВА 10

. Методы исследования

четвертичной структуры белков

Г. Санд

10.1.ВВЕДЕНИЕ*

Подавляющее большинство высокомолекулярных белковых молекул состоит более чем из одной полипептидной цепи. Хотя эти белки при физиологических условиях ведут себя обычно как монодисперсные вещества с определенными молекулярными ве­ сами, фактически же они являются комплексами из нескольких полипептидных цепей, не связанных пептидными связями **. Для этого феномена Бернал [13], расширяя терминологию Линдер- штрем-Ланга [12], предложил название четвертичная структура.

10.1.1.Терминология

Для описания специфических особенностей структуры белко­ вых молекул Линдерштрем-Ланг ввел термины: первичная, вторичная и третичная структуры (рис. 1—г). Первичная структура полипептидной цепи представляется числом и после­ довательностью аминокислотных остатков, соединенных друг с другом пептидными связями. Вторичные структуры (структуры спирального типа или типа складчатого листа) образуются в результате возникновения водородных связей между СО- и NHгруппами: последовательности пептидных связей. Третичная структура — это пространственное, объемное расположение по­ липептидной цепи, возникающее в результате взаимодействия между боковыми группами.аминокислотных остатков цепи. Эта структура менее регулярна, чем вторичная, и характеризуется

' * Для

более полного ознакомления

с проблемой взаимодействия бе­

лок — белок

и его интерпретацией с теоретической точки зрения читатель

отсылается к работам [1—7].

равновесие типа ассоциация — дис­

** В некоторых случаях наблюдается

социация между мономерами и полимерами (Например, для глутаматдегидрогеназы печени быка [8—10] и а-амилазы Bacillus sublilis [11]), но в большин­ стве случае для диссоциации белка на субъединицы или полипептидные цепи необходимо применение сильных воздействий.

13*

Рис. 1. Иерархия структур белка по Берналу [13].

а —первичная

структура

полипептндной цепи согласно изображению,

предложенному

в работе [14];

б —вторичная структура (а-спираль Полинга

н Кори [14]); а —третичная

структура (миоглобин

по

Кеидрю

[15]); г —четвертичная

структура

(гемоглобин по

Перутцу [16]). Обозначения,

белые

фигуры—а-полипептидные цепи:

серые фигуры —

(5-полипептидные цепи; черные диски—гбм-группы; С- и N-концевые группы двух а-поли-

пентндных цепей,

3 9 0

ГЛАВА 10

разного рода скручиваниями и изгибами. Дальнейшее усложне­ ние структуры происходит благодаря объединению определен­ ного числа идентичных или разных полипептидных цепей, нахо­ дящихся в специфически скрученном или изогнутом состоянии, и определяется как четвертичная структура белка (рис. 1, г).

10.1.2.Номенклатура

Молекула белка, состоящая более чем из двух полипептидных цепей, может ступенчато диссоциировать на компоненты. Про­ дукт диссоциации, который содержит по крайней мере две полипептидные цепи, называется субъединицей. Сами полипептидные цепи в свою очередь состоят исключительно из аминокислотных остатков, соединенных друг с другом пептидными связями. Та­ ким образом, молекула белка, состоящая из нескольких полипеп­ тидных цепей, может диссоциировать тремя способами:

молекула белка

а полипептидные цепи

(1а)

молекула белка

b субъединицы

xb поли-

(16)

 

пептидные цепи

 

 

молекула белка у

*• с субъединицы + d

по­

 

 

липептидные цепи

 

 

с субъединицы «=► хс полипептидные цепи

(1в)

Полипептидные цепи молекулы белка могут быть идентич­ ными (гомогенный тип четвертичной структуры) или разными (гетерогенный тип четвертичной структуры).

При определенных условиях молекулы белка, субъединицы и полипептидные цепи (ср. уравнения 1а—1в) имеют характерный вес частиц, который можно измерить физикохимическими мето­ дами. Этот вес называют молекулярным весом частицы. Поня­ тие молекулярного веса удобно использовать при исследовании данной белковой молекулы в функциональном аспекте.

Для описания модели аллостерических превращений была предложена следующая терминология относительно четвертичной структуры белков [17]: а) олигомер, полимерный белок, содержа­ щий конечное, относительно небольшое число идентичных субъ­ единиц; Ь) протомер, идентичные субъединицы внутри олигомер­ ного белка; с) мономер, полностью диссоциированный протомер или любой белок, не состоящий из одинаковых субъединиц.

10.1.3.Стабилизация конформации молекулы белка

Нативная конформация молекулы белка определяется как ко­ валентными, так и нековалентными связями или нековалентными взаимодействиями. Эти связи уменьшают гибкость полипептидной цепи и обеспечивают ее пространственное расположение в

МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ЧЕТВЕРТИЧНОЙ СТРУКТУРЫ БЕЛКОВ

391

упорядоченной, компактной форме в отличие от конформации статистического клубка *.

Скручивание полипептидной цепи обусловливается специфи­ ческими связывающими свойствами составляющих ее элементов. Получено много экспериментальных данных, подтверждающих гипотезу [22—24] о том, что конформация белковой молекулы яв­ ляется просто функцией ее аминокислотной последовательности и вся «структурная информация» содержится в ее первичной структуре. Если нативному состоянию соответствует только ассо­ циированная молекула, то можно предположить, что процесс самосборки до ассоциированной молекулы (т. е. спонтанная рав­ новесная ассоциация) приводит к достижению минимума свобод­ ной энергии, а, следовательно, единичная полипептидная цепь в нативной конформации не стабильна.

Среди ковалентных связей, видимо, наиболее широко распро­ странен только один тип — дисульфидная связь, которая может соединять разные части одной полипептидной цепи, например в рибонуклеазе или лизоциме [25, 26], или разные полипептидные цепи, например в инсулине [25], у-глобулине [27] и химотрипсине [28, 29]. Инсулин, у-глобулин и химотрипсин содержат не только внутрицепочечные, но и межцепочечные дисульфидные связи **.

Еще не получено окончательного доказательства существова­ ния ковалентной пептидной связи между разными полипептидными цепями или удаленными частями одной цепи (например, между е-аминогруппой остатка лизина и у-карбоксильной груп­ пой остатка глутаминовой кислоты). Эфирные и фосфатные связи и связи с углеводами и другими компонентами, вероятно, присущи только небольшому числу белков. Такие специфические ковалентные связи обнаружены в коллагене [32—34]. Считают, что внутримолекулярные межцепочечные поперечные связи в коллагене образуются в результате альдольной конденсации двух альдегидных производных лизила (вероятно, 6-полуальде- гида а-аминоадипиновой кислоты) на соседних цепях.

К нековалентным связям относят водородную, ионную и гид­ рофобную связи (или гидрофобное взаимодействие), а также взаимодействие между белковой молекулой и растворителем.

* Детальное обсуждение проблемы сил, участвующих во взаимодей­ ствиях белок — белок, можно найти в работах [18—21].

** Химотрипсиноген превращается в химотрипсин [28, 29], а проинсулин — в инсулин [30, 31] специфическим гидролизом пептидных связей. Эти про­ цессы «активации» заключаются в превращении единичных полипептидных цепей химотрнпсиногена и проинсулина в три полипептидные цепи химотрипсина и две — инсулина соответственно. В обоих случаях некоторые внутри­ цепочечные дисульфидные связи становятся межцепочечными в процессе ак­ тивации, приводя к появлению ковалентно связанных полипептидных цепей,

Таблица 1

 

 

ЧЕТВЕРТИЧНАЯ СТРУКТУРА НЕКОТОРЫХ БЕЛКОВ

 

Белок

Молеку-

Полипептидная

цепь

Литера­

 

 

 

 

лярныЛ

 

 

 

Примечания

 

 

число

тура

 

вес

молекул,

вес

метод *

 

 

цепей

 

 

 

 

 

 

 

Гемоглобин разных ви­

65 000

15 000—16 000

4

дов млекопитающих

 

 

 

Щелочная фосфатаза

80 000

40 000

2

Е. coll

 

 

 

Фруктозо-1,6-дифосф ат-

80 000

40 000

2

альдолаза дрожжей

 

 

 

Энолаза скелетных мышц

82 000

41 000

2

кролика

 

 

 

АТФ-креатинтрансфос-

83 000

43 000

2

форилаза скелетных

 

 

 

мышц кролика

 

 

 

Апкогольдегидрогеназа

84000

42 000

2

печени быка

 

 

 

С, D/M,

Обычно молекулы гемоглобина со­

4, 16. 35

ЕА, F, S.

стоят из двух пар идентичных по-

 

X

липептидных цепей

 

D/M, F

Диссоциация на полипептидные цепи

4

 

(видимо, идентичные) обратима,

 

 

сопровождается реактивацией

 

D/M

Диссоциация на полипептидные цепи

36

 

обратима, сопровождается реак­

 

 

тивацией. Ион цинка не нужен

 

 

для стабилизации димерной струк­

 

 

туры фермента, но необходим для

 

 

ферментативной

активности

 

D/M.

Диссоциация

на

полипептидные

4

ЕА

цепи

обратима,

сопровождается

 

 

реактивацией

 

 

D/M,

Анализ пептидных карт и концевых

37

ЕА. F

групп указывает на идентичность

 

 

полипептидных цепей

 

С, D/M,

Имеется

два

типа

полипептидных

4. 38. 39

S, X

цепей: цепь Е после димеризации

 

 

активна по отношению к этанолу

 

 

и

аналогам,

неактивна со стерои­

 

 

дами; цепь S полностью активна

 

 

со

стероидами и мало активна

 

 

с этанолом.

Образуются изозимы

 

L-6-гидроксиникотин-

93000

47 000

2

оксидаза

A. oxidans

 

 

 

Дегидрогеназа дигидро-

102 000

50 000

2

липоевой

кислоты

 

 

 

сердца свиньи

 

 

 

Гемэритрин

Golfingia

107 000

13 500

8

gouldii

 

 

 

 

Лактатдегидрогеназа

140 000

35 000

4

млекопитающих

 

 

 

Алкогольдегидрогеназа

141 000

35 000

4

дрожжей

 

 

 

Глицеральдегид-З-фос-

145 000

36 000

4

фатдегидрогеназа

 

 

 

дрожжей и мышц мле­ копитающих

 

 

с Е-

и S-цепями (и

подфрак­

 

 

 

циями Е' и S').

Диссоциация на

 

 

 

полипептидные

цепи

обратима,

 

 

 

сопровождается реактивацией

 

С, D/M.

Хранение при —16 °С вызывает дис­

40

S, X

социацию на неактивные поли­

 

 

 

пептидные цепи

 

 

 

D/M,

Анализ

концевых

групп и пептид­

4

ЕА. F

ных карт свидетельствует о иден­

 

 

 

тичности полипептидных цепей

 

С, D/M

Диссоциация на полипептидные цепи

4

 

 

обратима с восстановлением спо­

 

 

 

собности связывать 0 2

 

 

С, D/M,

Обычно каждый вид животных со­

4, 41-44

F,

S, X

держит два основных типа субъ­

 

 

 

единиц: Н — сердечный и М — мы­

 

 

 

шечный тип. Разные комбинации Н

 

 

 

и М дают до 5 изозимов. Можно

 

 

 

выполнить гибридизацию между

 

 

 

ферментами из разных источни­

 

 

 

ков. Есть экспериментальные до­

 

 

 

казательства, что Н- и М-субъ-

 

 

 

единицы состоят из двух или бо­

 

 

 

лее полипептидных цепей

 

С,

D/M,

Идентичность полипептидных цепей

45, 46

F, S

установлена по данным пептидных

 

 

 

карт и анализа последовательно­

 

 

 

сти аминокислот

 

 

 

С,

D/M,

Полипептидные цепи идентичны

4, 43.

F, S

 

 

 

 

47-50

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ