16.Получение микробиологическим способом глутаминовой кислоты.

Продуценты каренобактериум глутамикум имеют все ферменты ЦТК, кроме 2 кетоглутарат дегидрогеназа, превращающая кетоглутаровую кислоту в суктинил коензим. Другой фактор – слабая активность оксидазной системы, окисляющей глутаминовую кислоту, что позволяет сохранить синтезированный продукт. Известными методами продуцирования L-глутаминовой к-ты с использованием других бактериальных штаммов являются способы ферментации, в кот используются м/о рода бациллус, стрептомицесс, пенициллиум; методы, в кот используются м/о рода псеудомонас, кандида. При получение глутаминовой к-ты с помощью растущей культуры в качестве источников углерода можно использовать глюкозу, крахмал, мелассу, гидролизованные соли аммония или мочевины. Поскольку в мелассе также присутствует биотин, предложено для усиления экстрекции глутаминовой к-ты добавлять в культуральную среду пенициллин или ненасыщенные жирные к-ты. Концентрация источников углерода 5-10% источника азота – низкая. Такое соотношение приводит к ограниченному росту биомассы и с другой стороны к накоплению предшественников глутаминовой к-ты L-кетоглутаровой к-ты. Мочевина разлагается пуреазой продуцента с выделением иммиака, вступает в реакцию с кетоглутаровой к-ой с образованием глутаминовой к-ты. Накопление наблюдается когда рост м/о закончен. При изменении условий культивирования в среде накапливается L-глутамин, который образуется из глутаминовой к-ты при участии глутамин синтеза. Слабокислые реакции, наличие невысокой концентрации биотина, высокая концентрация аммония, присутствие ионов цинка способствует превращению глутаминовой к-ты в глутамин. Процесс биосинтеза ведут при температурах 28-30град, рН7-7,2, интенсивнойаэрации в течение 48-72 часов. При оптимальных условиях культивирования достигается достаточно высокий выход продукта. L-глутаминовая к-та является важной АК, используемой в пище, лекарственных средствах и т.п.

17.Влияние условий культивирования дрожжей на синтез липидов.

Липиды – соединения растворимые в неполярных растворителях (хлороформ, спирт). Технология процесса получ липидов включает стадию выделения липидов из клеточной массы методом экстракции в неполярном растворителе – бензине или эфире, при этом получается 2 готовых продукта – микробный жир или биожир и обезжиренный белковый препарат или биошрот. Сырьем явл те же среды, что и для произ-ва формовой биомассы. В процессе культивирования м/о на различных средах получается 3 класса липидов: простые, сложные и их производные. Простые – это нейтральные жиры и воски. Нейтр жиры – это эфиры глицерина и жирных к-т, основная масса которого триацилглицериды. Воски – это эфиры жирных к-т и алифатических спиртов с длинной углеродной цепью. Воски по структуре близки к нейтральным липидам. Наибольшее кол-во нейтр липидов синтезируют дрожи и мицелиальные грибы. Применяют в качестве смазке при обработке металлов, а продуценты сложных липидов – это бактерии. Сложные липиды делятся на фосфо- и глико- липиды. Фосфолип входят в состав клет мембран. Гликолип выступают в качестве рецепторов на поверхности мембран. К производным липидам относят жирные к-ты, спирты, УВ, вит Д, Е, К. Условия культивирования: влияние оказывает аэрация, рН и температура. При недостатке аэрации липиды содержат в 4 раза < триацилглицеридов, в 2 раза > фосфоглицеридов и в 8р > жирных кислот, чем при нормальной аэрации. При интенсификации аэрации возрастает степень ненасыщенных липидов и следовательно ненасыщенных жирных к-т. Повышенный рН ведет к увеличению фосфоглицеридов и жирных к-т, при одновременном снижении триацилглицеридов. Температура роста и липидообразование клеток совпадает.