28.Субстраты и продуценты для получения кормового белка.

В СССР было организовано производство БВК(белково-витаминные концентраты) на парафинах. Содержащие 50% белков, витамины группы В, микроэлементы и АК. 1 тонна такого концентрата заменяла 5 тонн зерна, но здесь не были разработаны системы очищения воздействующие от загрязнений при данном произв-ве. Кормовые дрожжи (КД) - в нашей стране использ отходы полевых культур, стержни початки кукурузы на гидролизных заводах. Субстраты дляполучения кормового белка (КБ) – парафины нефти богатые углеродом и достаточно дешевые субстраты, выход биомассы 100% от массы субстрата. Исп дрожжи р.Кандида. Метиловый спирт можно получить микробным синтезом на древесине, городских отходах. На метаноле могут расти 25 видов дрож, наилучшим продуцентом явл бактерии р.метиломонес. При росте на метаноле бактерии дают больше биомассы, чем дрожжи. Возможно соединение технолог-х преимуществ дрож с эффективностью роста бактерий. Если перенести ген, отвечающий за синтез ферм убактреий метанол дегидрогеназа вдрожжи. В Японии, Канаде, США разработаны процессы получения белка из природного газа, выход 66% от массы субстрата. В Великобритании использ смешанная культура метиломонес, псеудомонадес, гипомикробиум, кот усваивает метанол и 2 вида неметилотрофных бактерий. Культура характеризуется высокой скоростью роста и продуктивностью. Бакт, кот растут на метане хорошо переносят кислую среду, высокую темп-ру и устойчив к информациям. Главным достоинством метана, как основного компонента прир газа – доступность, низкая стоимость, высокая эфект-ть преобразования в биомассу изначительное содержание в биомассе белка сбаланс-ого по АК-ому составу. Субстратом может также явл углекисл газ, используют микроводоросли. Важно использовать в качестве сырья древесных отходов. Гидролиз древесины осущ только в присутствии катализатора при высоких темпер-х. В качестве продуцентов исп штаммы р.кандида.

29. Требования к продуцентам белка.

1) Минимальное время генерации;2)Способность накапливать белок до 40-70%;3) Максимально усваивать питательные вещества среды;4)быть непотогенным и не выделять в среду токсические вещества, метаболиты;5)иметь высокую устойчивость и выживаемость при не стерильных условиях выращивания;6)легко отделятся от жидкой фазы при сепарировании и флотировании; БОО( белки одноклеточных организмов)- исп-ся в качестве белкового обогатителя для кормов животных; для человека служит белковым наполнителем; заменяет животные белки в рационе питания.

30.Использование метода тонкослойной хромотографии для разделения липидов.

В зависимости от природной неподвижной фазы тонкослойной хромотографии, хромотография может быть адсорбционной, распределительной, Молекулярно-ситовой и осадочной. Адсорбционная тонкослойная хромотография основана на различии в сродстве компонентов смеси к неподвижной фазе (сорбент) осуществляющего в результате перемещения подвижной фазы (элюента) под действием капиллярных сил по слою сорбента толщиной 0,1-0,5мм нанесенного на пластину. Хромотог проводит в закрытой камере, чтобы избежать испарение элюента. В зависимости от направления перемещения элюента по пластинке различают нисходящую, горизонтальную и восходящую. Используют готовые пластины типа сорбифол, силюфол. Для проведения анализа используют 1% испытуемые в-ва или смеси в-в в легколетучем растворителе. Хромотогр пластинку размельчают. На линию старта наносят 0,05мл испытуемого в-ва или смеси в-в. Если наносят несколько в-в, то расстояние между пробами должно составлять 1см. Пластинку с нанесенными пробами помещают в камеру с элюентом, с момента погружения возникает фронт смачивания, кот перемещается вверх по слою сорбента. При этом перемещаются исслед-ые в-ва, со скоростью зависящей от их коэффициента адсорбции. Когда фронт смачивания достигнет верхней границы хромотограф разделение заканчивается. В-ва, имеющие окраску обнаруживаются в виде отдельных пятен на хромотограмме. Если хромотография бесцветного в-ва, то их обнаруживают после спец-ой обработки. Положения пятна характеризуются Rf. Rf=расстояние пройденное в-вом от линии старта/расстояние пройденное элюентом от линии старта. Значение Rf зависит: 1)от степени родства, хромотографируемого органического соединения к сорбенту, 2)свойствами самого сорбента, 3)природой элюента. Идентификация нейтральных липидов: 1)элюент – петролейный эфир – этиловый эфир, укс-ая к-та, соотношение 80:20:1, 2) в качестве маркеров использ стеариновая к-та (15 капель) и оливковое масло (2 кап), 3)пластинку подсушиваем при комнатной темпер несколько минут и затем проносим через 20% р-р сульфата аммония. Далее помещаем в сушильный шкаф при темпер 160-180 на 5-15мин. Липиды образуют темные пятна. Далее определяют Rf и по таблице проводим идентификацию липидов. Идентификация фосфо и глико липидов (полярные липиды): 1)элюент – хлороформ, этанол, вода, 65:25:4, 2)маркер – лецитин 2 кап, 3)пластинку подсушиваем при комнатной темпер несколько минут, затем помещаем в камеру с парами йода, липиды образуют темные пятна на желтом фоне. Посчитываем Rf и проводим идентификацию.