- •СОДЕРЖАНИЕ
- •1. Асептика и антисептика.
- •1.1. Определение понятия. История вопроса.
- •1.2. Пути распространения инфекции.
- •1.3. Профилактика контактной и имплантационной инфекции. Стерилизация и дезинфекция.
- •Автоклавирование проводится при давлении пара 1,1+0,1 кгс/см2
- •Рис. 19. Камера для новой стерилизации пароформалиновой стерилизации
- •1.3.1. Стерилизация инструментов
- •Стерилизация перевязочного материала и операционного белья
- •Стерилизация перчаток
- •Стерилизация шовного материала
- •1.3.2. Дезинфекция
- •Хирургическая дезинфекция рук
- •Надевание операционной одежды
- •Рис. 25. Надевание хирургических перчаток
- •Рис. 26. Схема надевания хирургического халата
- •Дезинфекция операционного поля
- •1.4. Виды антисептики
- •1.4.1. Механическая антисептика
- •1.4.2. Физическая антисептика
- •1.4.3. Химическая антисептика
- •1.4.4. Биологическая антисептика
- •2. Десмургия.
- •2.1. Общие вопросы десмургии.
- •2.2. Повязки на различные области тела.
- •3. Раны, раневой процесс. Виды заживления ран.
- •3.1. Определение понятия. Классификация.
- •3.1.1. Классификация ран
- •3.2. Виды заживления ран.
- •3.3. Доврачебная помощь при ранениях.
- •4. Кровотечения и кровопотеря.
- •4.1. Классификация кровотечений.
- •I. Классификация кровотечений по источнику
- •П. Классификация по клиническим проявлениям
- •III. Классификация по времени возникновения
- •IV. Классификация по скорости развития
- •Выделяют молниеносные, острые и хронические кровопотери.
- •4.2. Доврачебная помощь при кровотечениях. Общие принципы терапии наружной острой кровопотери
- •5.1. Ушибы. Растяжения. Вывихи.
- •5.2. Клиническая картина переломов.
- •5.3. Первая помощь при переломах. Транспотрная иммобилизация.
- •6. Повреждения грудной клетки.
- •6.3. Пневмоторакс
- •6.1. Классификация
- •1) Закрытые травмы. Выделяют сотрясение грудной клетки, ушиб и сдавление.
- •2) Открытые повреждения грудной клетки подразделяются на непроникающие и проникающие, сквозные и слепые.
- •6.2. Переломы ребер
- •6.3. Пневмоторакс
- •Схема открытого пневмоторакса
- •7. Ожоги. Отморожения.
- •7.1. Ожоги.
- •7.1.1. Классификация ожогов
- •7.1.2. Определение глубины поражения
- •7.1. Ожоги.
- •7.1.1. Классификация ожогов
- •7.1.2. Определение глубины поражения
- •Ожоги I степени
- •Ожоги II степени
- •Ожоги III степени
- •Ожоги III б степени
- •Ожоги IV степени
- •Диагностические пробы
- •7.1.3. Определение плошади ожога
- •7.1.4. Определение тяжести ожоговой травмы
- •7.1.5. Доврачебная помощь при ожогах
- •7.2. Отморожения.
- •7.2.1. Причины отморожений и их классификация
- •Классификация
- •7.2.2. Помощь при отморожениях
- •8. Политравма. Массовые поражения.
- •8.1. Политравма, принцип взаимоотягощения. Комбинированные поражения: определения понятия и классификация
- •ТЕРМИЧЕСКИЕ: высокие температуры; низкие температуры;
- •8.2. Организация помощи при массовых поражениях. Виды медицинской помощи
- •8.2.1. Первая медицинская помощь
- •8.2.2. Доврачебная медицинская помощь
- •8.2.3. Медицинская сортировка на догоспитальном этапе
- •8.2.4. Организация оказания первой медицинской и доврачебной медицинской помощи в ЧС
- •ИВЛ с помощью ручных аппаратов искусственного дыхания.
- •8.2.5. Организация первой медицинской помощи в очагах массового поражения. Организация первой медицинской помощи в очаге ядерного поражения:
- •8.2.6. Особенности организации первой медицинской помощи в очаге химического поражения
- •8.2.7. Особенности работы в очаге бактериологического (биологического) поражения
- •8.2.8. Особенности организации медицинской помощи в очаге комбинированного поражения
- •9.1. Острый аппендицит.
- •9.2. Острый холецистит.
- •Этиология и патогенез
- •Классификация
- •Клиническая симптоматика и диагностика
- •9.3. Острый панкреатит.
- •Основные причины острого панкреатита
- •Симптомы и диагностика острого панкреатита
- •Осложнения
- •Помощь
- •9.4. Прободная язва желудка и двенадцатиперстной кишки.
- •Симптомы.
- •9.5. Острая кишечная непроходимость.
- •Симптомы болезни
- •Помощь
- •9.6. Грыжи ущемленные.
- •Симптомы.
- •Неотложная помощь и госпитализация.
- •Симптомы.
- •10.1. Фурункул.
- •10.2. Карбункул.
- •Лечение карбункула
- •10.3. Рожа.
- •Лечение рожи
- •10.4. Абсцесс.
- •Лечение абсцесса
- •10.5. Флегмона.
- •10.6. Панариций.
- •Симптомы панариция
- •Виды панариция
- •Осложнения при панариции
- •Лечение панариция
- •11.1. Стенокардия
- •11.2. Инфаркт миокарда
- •11.4. Гипертонический криз
- •11.1. Стенокардия
- •Неотложная помощь при стенокардии
- •11.2. Инфаркт миокарда
- •Принципы оказания первой помощи
- •11.3. Коллапс
- •11.4. Гипертонический криз
- •Классификация
- •Клиника гипертонических кризов
- •Варианты осложнений гипертонических кризов.
- •Неотложная помощь
- •Криз I типа
- •Криз II типа
- •12. Острая дыхательная недостаточность
- •12.1. Приступ бронхиальной астмы
- •Клиника.
- •Лечение.
- •Профилактика.
- •12.2. Нарушение проходимости верхних дыхательных путей
- •12.2.1. Ларингоспазм
- •12.2.2. Утопление
- •13. Диабетические комы.
- •13.1. Гипергликемическая кома
- •13.2. Кетоацидотическая кома
- •Неотложная помощь
- •13.3. Гиперосмолярная кома
- •13.4. Гипогликемическое состояние
- •14. Острые отравления.
- •14.1. Диагностика острых отравлений
- •14.2. Общие принципы лечения острых отравлений
- •14.3. Наиболее часто встречаемые отравления и доврачебная помощь при них
- •14.3.1. Отравления барбитуратами
- •14.3.2. Отравления транквилизаторами (производные бензодиазепина)
- •14.3.3. Отравления фосфорорганическими соединениями
- •14.3.4. Отравления угарным газом
- •14.3.5. Отравления уксусной кислотой (эссенцией)
- •Неотложная помощь
- •14.3.6. Отравления щелочами
- •14.3.7. Отравления алкоголем (этиловым спиртом) и его производными
- •14.3.8. Отравления метиловым спиртом
- •14.3.9. Отравления ядовитыми грибами
- •14.3.10. Отравления мухомором
- •14.3.11. Отравления бледной поганкой
- •15. Нарушения сознания
- •15.1. Общие вопросы
- •15.2. Терминология и патогенез
- •15.2.1. Обморок
- •15.2.2. Кома
- •15.3. НЕОТЛОЖНАЯ ПОМОЩЬ ПРИ ПОТЕРЕ СОЗНАНИЯ
- •Неспецифическое симптоматическое лечение
- •16.1. Классификация критических состояний
- •16.1.1. Преагония
- •16.1.2. Агония
- •16.1.3. Биологическая смерть
- •16.2. Сердечно-легочная реанимация
- •17. Анафилактический шок
- 10 -
облучением и если эффект стерилизации подтвержден индикатором стерильности. Контроль работы воздушных и паровых стерилизаторов проводят с применением химических тест-индикаторов и с помощью максимальных термометров.
Показателями качества работы стерилизаторов являются:
изменение исходного состояния (цвет, агрегатное состояние) химических тестиндикаторов и отклонение температуры в различных точках камеры парового стерилизатора от номинального значения в пределах Т±2°С.
Контроль работы воздушных стерилизаторов осуществляется цветным термоиндикатором ТИК № 6 и гидрохиноном. Нанесенная на бумагу термоиндикаторная краска марки ТИК № 6 светло-салатового цвета при температуре 175—180°С становится темно-коричневой. Гидрохинон в количестве 0,3 г помещается в стеклянный флакон. При температуре 170—175°С серокоричневый порошок гидрохинона превращается в расплавленную массу черного цвета.
Работу парового стерилизатора ежедневно контролируют тест-индикатором мочевины или бензойной кислоты с фуксином. При режиме стерилизации 132 °С и давлении в 2 ат белый порошок мочевины плавится, превращаясь в аморфную массу того же цвета (в биксы помещается флакончик с мочевиной в количестве 0,3 г). При режиме стерилизации 120 °С и давлении в 1,1 ат в качестве индикатора применяют бензойную кислоту с фуксином, фуксин выполняет роль красителя. При температуре, близкой к пару (120 °С), бензойная кислота с кислым фуксином расплавляются, превращаясь в аморфную массу красного цвета, а с основным фуксином — синего цвета. Применение серы для контроля эффективности стерилизации не рекомендуется.
Контроль за качеством стерилизации окисью этилена проводят с использованием индикоторов в виде раствора глицерола с этиленом (раствор I) и бромида лития, бромкрезолового пурпурного с этанолом (раствор II).
Помимо обязательного ежедневного контроля эффективности стерилизации в стерилизаторе пробой на достижение точки плавления раз в неделю (выборочно) или через 10 дней проводят бактериологический контроль материала. Бактериологический контроль является самым надежным методом контроля стерильности. Его недостатком является продолжительный период и трудоемкость исследования. В связи с этим в клинической практике широко используются перечисленные экспресс-методы.
1.3.1. Стерилизация инструментов
Использованные инструменты подвергают предстерилизационной очистке. Режим очистки складывается из промывания их горячей водой в течение 30 сек с последующим замачиванием в специальной емкости в моющем растворе
- 11 -
(температура моющего раствора 50°С, экспозиция 15 мин). После этого инструменты моют ершом или ватно-марлевым тампоном в моющем растворе в течение 30 сек, споласкивают проточной водой, кипятят в течение 5 мин в дистиллированной воде и сушат горячим воздухом при температуре 85°С. Качество предстерилизационной очистка инструментов оценивают путем постановки ампдопириновой, бензидиповой (реже орто-толуидиновой) и фенолфталеиновой проб на наличие остаточных компонентов моющего препарата и крови. При положительной пробе на кровь или моющие средства вся группа контролируемых изделий подлежит повторной обработке до получения отрицательного результата.
Изделия медицинского назначения, используемые при проведении гнойных операций или манипуляций у инфицированных больных, перед предстернлнзационной очисткой проходят дезинфекцию. Изделия из коррозионнонестойких материалов обеззараживают преимущественно кипячением в 2% растворе гидрокарбоната натрия в течение 30 мин, при наличии анаэробной инфекции продолжительность кипячения составляет 90 мин. Дезинфекцию изделий медицинского назначения осуществляют погружением в 1% раствор хлорамина на 30 мин, 3% перекиси водорода с 0,5% моющих средств на 80 мин, 0,1% дезоксоп-1 (по надуксусной кислоте) на 15 мин.
В воздушных стерилизаторах стерилизацию производят при температуре 180°С в течение 60 мни. При стерилизации воздушным методом режущие инструменты (иглы, лезвия, скальпели) не тупятся. Наборы инструментов также стерилизуют в автоклаве при 1,1 ат в течение 45 мин или 20 мин при 2 ат. Срок сохранения стерильности инструментов 3 сут.
Хирургические инструменты из коррозионно-стойких металлов и изделия из пластмасс (резины) можно стерилизовать в 6% растворе перекиси водорода при температуре 18°С в течение 360 мин или I80 мин при 50°С. Изделия из резины, пластических масс и корозионно-стойких металлов стерилизуют также в 1% растворе дезоксона-1 (по надуксусной кислоте), время обработки 45±5 мин. Дезинфекцию инструментов можно производить тройным раствором (2% формалин, 0,3% фенол, 1,5% двууглекислая сода) в течение 45 мин, 0,1% раствором сульфохлорантина и 1% дихлором-1 в течение 30 мин.
Шприцы стерилизуют в разобранном виде: в связи с различным коэффициентом расширения стекла (цилиндра) и металла (поршень) при стерилизации в собранном виде цилиндры часто трескаются. Стерилизацию осуществляют в централизованных стерилизационных в воздушных стерилизаторах при температуре 180°С в течение 60 мин. Шприцы хранят в стерильной упаковке. Желательно пользоваться шприцами одноразового пользования, прошедшими стерилизацию гамма-излучением или окисью этилена. В амбулаторной практике возможна стерилизация шприцев кипячением в течение 45 мин.
В последние годы находят применение дезинфекция или стерилизация эндоскопов, пластмассовых катетеров, преобразователей и других изделий с помощью 2% растворов глутарового диальдегида (активатор) и гипохлорида натрия
- 12 -
(ингибитор коррозии), входящего в состав препарата сайдекс; срок обработки 45— 180 мин. Применяется также 0,1% раствор тергицида в течение 30—60 мин.
Мочеточниковые катетеры и эндоскопы можно стерилизовать и одним из ранее предложенных способов:
1.Помещение в специальные герметические закрывающиеся стерилизаторы, на дно которых кладут таблетки формальдегида. Стерилизация обеспечивается парами формалина при экспозиции 48 ч.
2.Опускание на 10 мин в этанол, затем на 5 мин в раствор цианида ртути (1 : 1000); перед употреблением протереть этанолом.
Отдельные узлы аппаратов искусственного кровообращения, искусственной почки, респираторов и других приборов стерилизуют кипячением, в воздушном стерилизаторе, в катионно-анионных растворах или окисью этилена. При пользовании окисью этилена продолжительность стерилизации составляет 6—16 ч. Перед употреблением узлы аппаратов промывают дистилированной водой.
Стерилизация перевязочного материала и операционного белья
Перевязочный материал и белье, используемые во время операций и при перевязках, должны быть стерильны. В качестве перевязочного материала применяют марлю, вату и лигнин, основными свойствами которых являются хорошее впитывание жидкостей (гигроскопичность), мягкая поверхность и эластичность. Они должны хорошо переносить воздействие высокой температуры во время стерилизации. Чаще всего применяется марля.
Марля — хлопчатобумажная ткань, которая после особой обработки делается мягкой, белой, обезжиренной и гигроскопичной. Нити этой ткани не прилегают друг к другу, а расположены в виде мелкой сетки. Из марли делают бинты различной ширины, салфетки, тампоны, шарики и др. Более плотная марля менее гигроскопична. Складывая салфетки, шарики, тампоны и т. п., необходимо завернуть края марли внутрь, чтобы обрывки нитей не попадали в рану и не препятствовали ее заживлению.
Вату как белую (гигроскопическая), так и серую (негигроскопическая) делают из хлопка. Ограниченно применяется и вата из искусственных волокон. Большим преимуществом белой ваты является ее гигроскопичность, однако при перевязках вату всегда укладывают над марлей из-за ее свойства прилипать к поверхности и краям раны.
Лигнин изготавливают из древесины, он на редкость гигроскопичен, однако в присутствии раневого оделяемого разлагается, что препятствует его широкому применению.
В качестве операционного белья используют большие и малые простыни, салфетки, полотенца, пеленки, халаты для медицинского персонала, нарукавники, маски, шапочки и т. д.
- 13 -
Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в автоклаве при высокой температуре под давлением пара 1,1 ат в течение 45 мин (температура 120 °С) или 2 ат в течение 20 мин (132°С). Наиболее удобны для стерилизации и хранения материала стерилиза-ционные коробки с фильтром и металлические барабаны или биксы Шиммельбуша — металлические коробки различной величины и формы с крышкой и отверстиями по бокам (рис. 21, 22). Эти отверстия открывают во время стерилизации, передвигая вокруг бикса металлический ободок. Перевязочный материал или операционное белье укладывают в металлических биксах (иногда в брезентовых мешках) так, что каждый предмет занимает определенный сектор.
После завершения стерилизации металлический ободок бикса тут же закрывают. Биксы хранят в закрытом помещении, ключ от которого находится у старшей операционной сестры. Срок сохранения стерильности перевязочного материала или операционного белья в биксах составляет 3 сут. Стерилизация перевязочного материала и операционного белья в воздушных стерилизаторах при температуре 180 °С не пригодна, так как материал портится.
Стерилизация перчаток
Для стерилизации резиновых перчаток пользуются следующими методами:
1.Пересыпают их пудрой или тальком, завертывают в марлевую салфетку, укладывают в биксы Шиммельбуша и стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 120 °С под давлением 1,1 ат 45 мин.
2.Перчатки кипятят в воде 45 мин.
3.Перчатки погружают в раствор детергентов на 60 мин.
4.Стерилизуют перчатки в портативных газовых стерилизаторах окисью
этилена.
Резиновые перчатки после использования моют под проточной водой с мылом, дезинфицируют в 1% растворе хлорамина 30 мин, прополаскивают в проточной воде и сушат. При возможности лучше пользоваться перчатками одноразового пользования, их стерилизация осуществляется гамма-лучами.
Стерилизация шовного материала
Хирургический шовный материал должен быть стерильным, прочным на разрыв и хорошо переноситься тканями, а после выполнения своей фиксирующей функции по возможности рассасываться. Стерилизация шовного материала достигается разными способами: термическим, химическим, гамма-облучением. Нити хранятся в стерильном виде в пластиковых упаковках или упаковках из алюминиевой фольги. Выпуск и стерилизация шовного материала в упаковке для многократного применения нежелательны.
- 14 -
По строению нити могут быть монофиламентными (монолитные), кручеными или плетеными. Более целесообразно использовать монофи-ламентные синтетические нити, которые из-за отсутствия фитильного эффекта препятствуют распространению инфекции. В атравматических иглах (не имеют ушка) конец нити заделывается в полый тупой конец иглы.
Шелковые нити являются естественным продуктом; в настоящее время выпускают также синтетический шелк. Они изготавливаются плетеными либо кручеными и имеют выраженный фитильный эффект, т. е. способность переносить жидкость и содержащиеся в ней бактерии; их преимущество — большая прочность. Шелк не рассасывается. Толщина шелковых нитей различна, от 00 до 16 (чем больше номер, тем толще нить).
В настоящее время медицинской промышленностью в отдельных случаях еще выпускается шелк в мотках для многократного применения, Стерилизацию шелка в подобных случаях производят следующим образом.
1.Мотки шелка моют в теплой воде с мылом, затем высушивают. Намотанный на катушку шелк опускают в эфир на 12—24 ч для обезжиривания. После извлечения стерильным инструментом из эфира шелк погружают на тот же срок в 70% этанол, после чего шелк кипятят 10 мин. Хранят стерильный шелк в герметически закрытых банках с 95% этиловым спиртом (метод Кохера). Перед употреблением подготовленный по данной методике шелк повторно кипятят 2 мин.
2.Мотки шелка раскручивают и моют два раза в мыльной пене, после чего несколько раз прополаскивают в теплой воде, сушат и наматывают на стерильные катушки. Обезжиривают в эфире в течение 12— 24 ч, после чего кипятят в дистиллированной воде 45 мин. С помощью стерильных инструментов шелк погружают в герметически закрытые банки с 95% спиртом на 6—12 ч, после чего он пригоден к применению. В герметических банках спирт меняют через каждые 7 дней.
Капроновые и лавсановые нити многократного применения стерилизуют в паровом автоклаве, как операционное белье, или кипячением, как инструменты в течение 45 мин.
Нерастворимые атравматические нити из искусственных синтетических волокон изготавливают из полиамидных (найлон, капрон, перлон,
супрамид) или полиэфирных (дакрон, мерсилен, тефлон) волокон. Они превосходят естественные нити по прочности и отсутствию реакции тканей, стерилизуются гамма-облучением или окисью этилена.
Кетгут является материалом органического происхождения. Изготовляют кетгут из подслизистого слоя тонких кишок крупного рогатого скота или свиней. Как гетерогенный белок, он может вызывать сильную реакцию тканей. Преимуществом кетгута является то, что через 6—12 дней он резорбируется в