Добавил:
Sekretar
kiopkiopkiop18@yandex.ru
t.me/Prokururor I Вовсе не секретарь, но почту проверяю
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Ординатура / Хирургия / Библиотека им академика М.И. Перельмана / Книга_1449_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана
.pdf
341
324. Wu, Y. Laser speckle contrast imaging for measurement of hepatic
microcirculation during the sepsis: a novel tool for early detection of
microcirculation dysfunction [Text] / Y. Wu, J. Ren, B. Zhou, C. Ding, J. Chen, G.
Wang, G. Gu, S. Liu, J. Li // Microvascular research. – 2015. – Vol. 97. – P. 137-
146.
325. Ding, C. Laser speckle contrast imaging for assessment of abdominal
visceral microcirculation in acute peritonitis: does sequential impairments exist?
[Text] / C. Ding, J. Ren, B. Zhou, Y. Wu, X. Shao, G. Wang, J. Fang, J. Li //
Microvascular Research. – 2014. – Vol. 95. – P. 26-30.
326. Milstein, D.M.J. Laser speckle contrast imaging identifies ischemic
areas on gastric tube reconstructions following esophagectomy [Text] / D.M.J.
Milstein, C. Ince, S.S. Gisbertz, K.B. Boateng, B.F. Geerts, M.W. Hollmann, M.I.
van Berge Henegouwen, D.P. Veelo // Medicine. – 2016. – Vol. 95. – № 25. – P.
e3875.
327. Ambrus, R. A reduced gastric corpus microvascular blood flow during
Ivor-Lewis esophagectomy detected by laser speckle contrast imaging technique
[Text] / R. Ambrus, L.B. Svendsen, N.H. Secher, K. Rünitz, H.J. Frederiksen,
M.B.S. Svendsen, M. Siemsen, S.C. Kofoed, M.P. Achiam // Scandinavian Journal
of Gastroenterology. – 2017. – Vol. 52. – № 4. – P. 455-461.
328. Jansen, S.M. Effect of ephedrine on gastric conduit perfusion measured
by laser speckle contrast imaging after esophagectomy: a prospective in vivo cohort
study [Text] / S.M. Jansen, D.M. de Bruin, M.I. van Berge Henegouwen, P.R.
Bloemen, S.D. Strackee, D.P. Veelo, T.G. van Leeuwen, S.S. Gisbertz // Diseases
of the Esophagus. – 2018. – Vol. 31. – № 10. – P. doy031.
329. Kojima, S. Laser speckle contrast imaging for intraoperative
quantitative assessment of intestinal blood perfusion during colorectal surgery: a
prospective pilot study [Text] / S. Kojima, T. Sakamoto, Y. Nagai, Y. Matsui, K.
Nambu, K. Masamune // Surgical innovation. – 2019. – Vol. 26. – № 3. – P. 293-
301.
342
330. Knudsen, K. Laser speckle contrast imaging to evaluate bowel lesions
in neonates with NEC [Text] / K. Knudsen, J. Thorup, R. Strandby, R. Ambrus, L.
Ring, I. Ifaoui // European journal of pediatric surgery reports. – 2017. – Vol. 5. –
№ 1. – P. e43-e46.
331. Патент № 2200472С2 Российская федерация, МПК А61В 8/06.
Способ определения жизнеспособности кишки и оптимальных границ
резекции при странгуляционной кишечной непроходимости [Текст] / Ю.С.
Винник, Д.В. Черданцев, О.В. Первова; патентообладатель Красноярская
государственная медицинская академия. – № 2000111024/14 заявл. 03.05.2000;
опубл. 20.03.2003.
332. Виленский, М.А. Возможности мониторинга кровотока в тканях
поджелудочной железы методом лазерной спекл-визуализации в норме и при
реперфузии [Текст] / М.А. Виленский, Д.А. Александров, П.А. Тимошина,
В.В. Тучин, А.А. Скороход, А.С. Яровой // Медицина экстремальных
ситуаций. – 2013. – Т. 44. – № 2. – С. 28-32.
333. Timoshina, P.A. Study of blood microcirculation of pancreas in rats
with alloxan diabetes by laser speckle contrast imaging [Text] / P.A. Timoshina,
A.B. Bucharskaya, D.A. Alexandrov, V. V Tuchin // Journal of Biomedical
Photonics & Engineering. – 2017. – Vol. 3. – № 2. – P. 020301.
334. Noël, J. Laser speckle contrast imaging compared with indocyanine
green in renal perfusion of a porcine model [Text] / J. Noël, A. Mascarenhas, C.A.
Nwaiwu, Y. Liu, M. Moschovas, V.E. Buharin, J. Oberlin, S. Mehrotra, A.F.
Dechert, P.C.W. Kim // Current Urology. – 2023. – Vol. 17. – № 2. – P. 141-145.
335. Nwaiwu, C.A. Feasibility and comparison of laparoscopic laser speckle
contrast imaging to near-infrared display of indocyanine green in intraoperative
tissue blood flow/tissue perfusion and extrahepatic bile ducts in preclinical porcine
models [Text] / C.A. Nwaiwu, V.E. Buharin, A. Mach, R. Grandl, A.F. Dechert, L.J.
O’Shea, S.D. Schwaitzberg, P.C.W. Kim // Journal of the American College of
Surgeons. – 2021. – Vol. 233. – № 5. – P. S78-S79.
343
336. Heeman, W. Application of laser speckle contrast imaging in
laparoscopic surgery [Text] / W. Heeman, K. Dijkstra, C. Hoff, S. Koopal, J.P.
Pierie, H. Bouma, E.C. Boerma // Biomedical optics express. – 2019. – Vol. 10. –
№ 4. – P. 2010-2019.
337. Kumar, R. Simultaneous white light and laser speckle contrast imaging
for in-vivo blood flow imaging during laparoscopic surgery: an alternative to
fluorescence-based endoscopy [Text] / R. Kumar, R.J. Gush, C.E. Murdoch, N.
Krstajić // Endoscopic Microscopy XVII. – SPIE, 2022. – Vol. 11937. – P. 1193702.
338. Ponticorvo, A. Laser speckle contrast imaging of blood flow in rat
retinas using an endoscope [Text] / A. Ponticorvo, D. Cardenas, A.K. Dunn, D. Ts’o,
T.Q. Duong // Journal of biomedical optics. – 2013. – Vol. 18. – № 9. – P. 090501.
339. Kong, T.H. Monitoring blood-flow in the mouse cochlea using an
endoscopic laser speckle contrast imaging system [Text] / T.H. Kong, S. Yu, B.
Jung, J.S. Choi, Y.J. Seo // PloS one. – 2018. – Vol. 13. – № 2. – P. e0191978.
340. Zheng, C. Dual-display laparoscopic laser speckle contrast imaging for
real-time surgical assistance [Text] / C. Zheng, L.W. Lau, J. Cha // Biomedical
Optics Express. – 2018. – Vol. 9. – № 12. – P. 5962-5981.
341. Heeman, W. Dye-free visualisation of intestinal perfusion using laser
speckle contrast imaging in laparoscopic surgery: a prospective, observational multi-
centre study [Text] / W. Heeman, J. Calon, A. van der Bilt, J.P.E.N. Pierie, I.
Pereboom, G.M. van Dam, E.C. Boerma // Surgical Endoscopy. – 2023. – Vol. 37.
– № 12. – P. 9139-9146.
342. Heeman, W. Experimental evaluation of laparoscopic laser speckle
contrast imaging to visualize perfusion deficits during intestinal surgery [Text] / W.
Heeman, A.C.L. Wildeboer, M. Al-Taher, J.E.M. Calon, L.P.S. Stassen, M. Diana,
J.P.M. Derikx, G.M. van Dam, E.C. Boerma, N.D. Bouvy // Surgical endoscopy. –
2023. – Vol. 37. – № 2. – P. 950-957.
343. Дунаев, А.В. Принципы построения технических средств
мультипараметрической оптической диагностики для оценки
функционального состояния микроциркуляторно-тканевых систем [Текст] /
344
А.В. Дунаев // Фундаментальные и прикладные проблемы техники и
технологии. – 2020. – Т. 344. – № 6. – C. 131-140.
344. Dunaev, A. Multiparameter optical methods and instruments for the
diagnostics of human body microcirculatory-tissue systems [Text] / A. Dunaev //
Saratov Fall Meeting 2020: Optical and Nanotechnologies for Biology and
Medicine. – SPIE, 2021. – Vol. 11845. – P. 20-25.
345. Jonasson, H. Oxygen saturation, red blood cell tissue fraction and speed
resolved perfusion – a new optical method for microcirculatory assessment [Text] /
H. Jonasson, I. Fredriksson, A. Pettersson, M. Larsson, T. Strömberg //
Microvascular research. – 2015. – Vol. 102. – P. 70-77.
346. Palmer, G.M. Comparison of multiexcitation fluorescence and diffuse
reflectance spectroscopy for the diagnosis of breast cancer [Text] / G.M. Palmer, C.
Zhu, T.M. Breslin, F. Xu, K.W. Gilchrist, N. Ramanujam // IEEE Transactions on
Biomedical engineering. – 2003. – Vol. 50. – № 11. – P. 1233-1242.
347. Langhout, G.C. Differentiation of healthy and malignant tissue in colon
cancer patients using optical spectroscopy: A tool for image‐guided surgery [Text] /
G.C. Langhout, J.W. Spliethoff, S.J. Schmitz, A.G.J. Aalbers, M. van Velthuysen,
B.H.W. Hendriks, T.J.M. Ruers, K.F.D. Kuhlmann // Lasers in surgery and
medicine. – 2015. – Vol. 47. – № 7. – P. 559-565.
348. Braun, F. A customized multispectral needle probe combined with a
virtual photometric setup for in vivo detection of Lewis lung carcinoma in an animal
model [Text] / F. Braun, R. Schalk, M. Nachtmann, A. Hien, R. Frank, T.
Beuermann, F.J. Methner, B. Kränzlin, M. Rädle, N. Gretz // Measurement Science
and Technology. – 2019. – Vol. 30. – № 10. – P. 104001.
349. Harris, K. Optical imaging of tissue obtained by transbronchial biopsies
of peripheral lung lesions [Text] / K. Harris, D.J. Rohrbach, K. Attwood, J. Qiu, U.
Sunar // Journal of Thoracic Disease. – 2017. – Vol. 9. – № 5. – P. 1386.
350. Volynskaya, Z. Diagnosing breast cancer using diffuse reflectance
spectroscopy and intrinsic fluorescence spectroscopy [Text] / Z. Volynskaya, A.S.
345
Haka, K.L. Bechtel, M. Fitzmaurice, R. Shenk, N. Wang, J. Nazemi, R.R. Dasari,
M.S. Feld // Journal of biomedical optics. – 2008. – Vol. 13. – № 2. – P. 024012.
351. Keller, M.D. Autofluorescence and diffuse reflectance spectroscopy
and spectral imaging for breast surgical margin analysis [Text] / M.D. Keller, S.K.
Majumder, M.C. Kelley, I.M. Meszoely, F.I. Boulos, G.M. Olivares, A. Mahadevan‐
Jansen // Lasers in Surgery and Medicine: The Official Journal of the American
Society for Laser Medicine and Surgery. – 2010. – Vol. 42. – № 1. – P. 15-23.
352. Zhu, C. Diagnosis of breast cancer using fluorescence and diffuse
reflectance spectroscopy: a Monte-Carlo-model-based approach [Text] / C. Zhu,
G.M. Palmer, T.M. Breslin, J. Harter, N. Ramanujam // Journal of biomedical optics.
– 2008. – Vol. 13. – № 3. – P. 034015.
353. Sharma, V. Auto-fluorescence lifetime and light reflectance
spectroscopy for breast cancer diagnosis: potential tools for intraoperative margin
detection [Text] / V. Sharma, S. Shivalingaiah, Y. Peng, D. Euhus, Z. Gryczynski,
H. Liu // Biomedical optics express. – 2012. – Vol. 3. – № 8. – P. 1825-1840.
354. Shalaby, N. Time‐resolved fluorescence (TRF) and diffuse reflectance
spectroscopy (DRS) for margin analysis in breast cancer [Text] / N. Shalaby, A. Al‐
Ebraheem, D. Le, S. Cornacchi, Q. Fang, T. Farrell, P. Lovrics, G. Gohla, S. Reid,
N. Hodgson // Lasers in Surgery and Medicine. – 2018. – Vol. 50. – № 3. – P. 236-
245.
355. Spliethoff, J.W. Monitoring of tumor response to cisplatin using optical
spectroscopy [Text] / J.W. Spliethoff, D.J. Evers, J.E. Jaspers, B.H.W. Hendriks, S.
Rottenberg, T.J.M. Ruers // Translational oncology. – 2014. – Vol. 7. – № 2. – P.
230-239.
356. Toms, S.A. Intraoperative optical spectroscopy identifies infiltrating
glioma margins with high sensitivity [Text] / S.A. Toms, W.C. Lin, R.J. Weil, M.D.
Johnson, E.D. Jansen, A. Mahadevan-Jansen // Neurosurgery. – 2007. – Vol. 61. –
№ 1. – P. 336.
357. Nie, Z. Integrated time-resolved fluorescence and diffuse reflectance
spectroscopy instrument for intraoperative detection of brain tumor margin [Text] /
346
Z. Nie, V.N. Du Le, D. Cappon, J. Provias, N. Murty, J.E. Hayward, T.J. Farrell,
M.S. Patterson, W. McMillan, Q. Fang // IEEE Journal of Selected Topics in
Quantum Electronics. – 2015. – Vol. 22. – № 3. – P. 49-57.
358. Du Le, V.N. Dual-modality optical biopsy of glioblastomas multiforme
with diffuse reflectance and fluorescence: ex vivo retrieval of optical properties
[Text] / V.N. Du Le, J. Provias, N. Murty, M.S. Patterson, Z. Nie, J.E. Hayward, T.J.
Farrell, W. McMillan, W. Zhang, Q. Fang // Journal of biomedical optics. – 2017. –
Vol. 22. – № 2. – P. 027002.
359. Fabila, D.A. Optical spectroscopy for differentiation of liver tissue
under distinct stages of fibrosis: an ex vivo study [Text] / D.A. Fabila, L.F.
Hernández, J.M. De La Rosa-Vazquez, S. Stolik-Isakina, U.D. Arroyo-Camarena,
M.D. López-Vancell, G. Escobedo // 8th Iberoamerican Optics Meeting and 11th
Latin American Meeting on Optics, Lasers, and Applications. – SPIE, 2013. – Vol.
8785. – P. 1790-1795.
360. Fabila, D. In vivo assessment of liver fibrosis using diffuse reflectance
and fluorescence spectroscopy: a proof of concept [Text] / D. Fabila, J.M. de la Rosa,
S. Stolik, E. Moreno, K. Suárez-Álvarez, G. López-Navarrete, C. Guzmán, J.
Aguirre-García, C. Acevedo-García, D. Kershenobich // Photodiagnosis and
Photodynamic Therapy. – 2012. – Vol. 9. – № 4. – P. 376-382.
361. Tanis, E. In vivo tumor identification of colorectal liver metastases with
diffuse reflectance and fluorescence spectroscopy [Text] / E. Tanis, D.J. Evers, J.W.
Spliethoff, V. V Pully, K. Kuhlmann, F. van Coevorden, B.H.W. Hendriks, J.
Sanders, W. Prevoo, T.J.M. Ruers // Lasers in surgery and medicine. – 2016. – Vol.
48. – № 9. – P. 820-827.
362. Lloyd, W.R. In vivo optical spectroscopy for improved detection of
pancreatic adenocarcinoma: a feasibility study [Text] / W.R. Lloyd, R.H. Wilson,
S.Y. Lee, M. Chandra, B. McKenna, D. Simeone, J. Scheiman, M.A. Mycek //
Biomedical Optics Express. – 2013. – Vol. 5. – № 1. – P. 9-15.
347
363. Bartolomé, F. Measurement of mitochondrial NADH and FAD
autofluorescence in live cells [Text] / F. Bartolomé, A.Y. Abramov // Mitochondrial
Medicine: Volume I, Probing Mitochondrial Function. – 2015. – P. 263-270.
364. Potapova, E. Endofluorescence Imaging of Murine Hepatocellular
Carcinoma Cell Culture by Fluorescence Lifetime Microscopy with Modulated
CMOS Camera [Text] / E. Potapova, E. Zherebtsov, K. Kandurova, A. Palalov, V.
Dremin, A. Dunaev // Journal of Biomedical Photonics & Engineering. – 2022. –
Vol. 8. – № 1. – P. 010303.
365. Zhao, H. Superoxide reacts with hydroethidine but forms a fluorescent
product that is distinctly different from ethidium: potential implications in
intracellular fluorescence detection of superoxide [Text] / H. Zhao, S. Kalivendi, H.
Zhang, J. Joseph, K. Nithipatikom, J. Vásquez-Vivar, B. Kalyanaraman // Free
Radical Biology and Medicine. – 2003. – Vol. 34. – № 11. – P. 1359-1368.
366. Патент № 2820882C1 Российская федерация, МПК G01В 21/00.
Устройство флуоресцентной микроскопии для изучения срезов тканей и
органов [Текст] / В.В. Шуплецов, Л.В. Ератова, И.Н. Маковик;
патентообладатель Федеральное государственное бюджетное образовательное
учреждение высшего образования «Орловский государственный университет
имени И.С. Тургенева» (ОГУ им. И.С. Тургенева). – № 2023134331 заявл.
20.12.2023; опубл. 11.06.2024. Бюл. № 17.
367. Потапова, Е.В. Оценка микроциркуляторных нарушений у
пациентов ревматологического профиля с использованием метода
спектроскопии диффузного отражения [Текст] / Е.В. Потапова, В.В. Дрёмин,
Е.А. Жеребцов, И.Н. Маковик, А.И. Жеребцова, А.В. Дунаев, К.В.
Подмастерьев, В.В. Сидоров, А.И. Крупаткин, Л.С. Хахичева, В.Ф. Мурадян //
Физиология человека. – 2017. – Т. 43. – № 2. – С. 116-124.
368. Spott, T. Application of optical diffusion theory to transcutaneous
bilirubinometry [Text] / T. Spott, L.O. Svaasand, R.E. Anderson, P.F. Schmedling
// Laser-Tissue Interaction, Tissue Optics, and Laser Welding III. – SPIE, 1998. –
Vol. 3195. – P. 234-245.
348
369. Feather, J.W. A portable scanning reflectance spectrophotometer using
visible wavelengths for the rapid measurement of skin pigments [Text] / J.W.
Feather, M. Hajizadeh-Saffar, G. Leslie, J.B. Dawson // Physics in Medicine &
Biology. – 1989. – Vol. 34. – № 7. – P. 807-820.
370. Дрёмин, В.В. Возможности применения сочетанных методов
оптической неинвазивной диагностики при исследовании жизнеспособности
тканей нижних конечностей пациентов с сахарным диабетом [Текст] / В.В.
Дрёмин, Е.В. Дрёмина, Е.В. Жарких, Е.В. Потапова, Е.А. Алимичева, Г.И.
Масалыгина, А.В. Дунаев // Фундаментальные и прикладные проблемы
техники и технологии. – 2016. – Т. 315. – № 1. – С. 136-142.
371. Dunaev, A.V. Individual variability analysis of fluorescence parameters
measured in skin with different levels of nutritive blood flow [Text] / A.V. Dunaev,
V.V. Dremin, E.A. Zherebtsov, I.E. Rafailov, K.S. Litvinova, S.G. Palmer, N.A.
Stewart, S.G. Sokolovski, E.U. Rafailov // Medical engineering & physics. – 2015.
– Vol. 37. – № 6. – P. 574-583.
372. Greenman, R.L. Early changes in the skin microcirculation and muscle
metabolism of the diabetic foot [Text] / R.L. Greenman, S. Panasyuk, X. Wang, T.E.
Lyons, T. Dinh, L. Longoria, J.M. Giurini, J. Freeman, L. Khaodhiar, A. Veves //
The Lancet. – 2005. – Vol. 366. – № 9498. – P. 1711-1717.
373. Моррисон, В.В. Кислотно-основное состояние. Типовые
нарушения кислотно-основного состояния (лекция 2) [Текст] / В.В. Моррисон,
Н.П. Чеснокова, М.Н. Бизенкова // Международный журнал прикладных и
фундаментальных исследований. – 2015. – № 3-2. – С. 273-278.
374. Kanter, Y. Red cell 2, 3-diphosphoglycerate levels among diabetic
patients with and without vascular complications [Text] / Y. Kanter, S.P. Bessman,
A. Bessman // Diabetes. – 1975. – Vol. 24. – № 8. – P. 724-729.
375. Потапова, Е.В. Особенности локальной микроциркуляции крови у
пациентов с псориазом [Текст] / Е.В. Потапова, М.А. Филина, И.О. Козлов,
Е.В. Жарких, В.В. Дрёмин, Н.С. Малая, И.А. Снимщикова, А.В. Дунаев, В.В.
349
Сидоров, А.И. Крупаткин // Регионарное кровообращение и
микроциркуляция. – 2018. – Т. 17. – № 3. – С. 58-64.
376. Braverman, I.M. Role of the microcirculation in the treatment and
pathogenesis of psoriasis [Text] / I.M. Braverman, J. Sibley // Journal of
Investigative Dermatology. – 1982. – Vol. 78. – № 1. – P. 12-17.
377. Hern, S. Blood flow in psoriatic plaques before and after selective
treatment of the superficial capillaries [Text] / S. Hern, A.W.B. Stanton, R.H.
Mellor, C.C. Harland, J.R. Levick, P.S. Mortimer // British Journal of Dermatology.
– 2005. – Vol. 152. – № 1. – P. 60-65.
378. Потапова, Е.В. Особенности локальной микроциркуляции крови у
пациентов с псориазом [Текст] / Е.В. Потапова, М.А. Филина, И.О. Козлов,
Е.В. Жарких, В.В. Дрёмин, Н.С. Малая, И.А. Снимщикова, А.В. Дунаев, В.В.
Сидоров, А.И. Крупаткин // Регионарное кровообращение и
микроциркуляция. – 2018. – Т. 17. – № 3. – С. 58-64.
379. Tankanag, A. Application of the adaptive wavelet transform for
analysis of blood flow oscillations in the human skin [Text] / A. Tankanag, N.
Chemeris // Physics in Medicine & Biology. – 2008. – Vol. 53. – № 21. – P. 5967-
5976.
380. Адырхаева, Д.А. Особенности показателей лазерной
допплеровской флоуметрии при псориазе [Текст] / Д.А. Адырхаева, Э.В.
Натарова, Н.А. Рюмкина // Вестник новых медицинских технологий. – 2007. –
Т. 14. – № 1. – С. 120-122.
381. Hendriks, A.G.M. Whole field laser Doppler imaging of the
microcirculation in psoriasis and clinically unaffected skin [Text] / A.G.M.
Hendriks, W. Steenbergen, E. Hondebrink, J.C.G. Van Hespen, P.C.M. Van De
Kerkhof, M.M.B. Seyger // Journal of dermatological treatment. – 2014. – Vol. 25.
– № 1. – P. 18-21.
382. Козлов, В.И. Метод лазерной допплеровской флоуметрии [Текст]:
пособие для врачей / В.И. Козлов, Э.С. Мач, Ф.Б. Литвин, О.А. Терман. – М.:
2001. – 22 с.
350
383. Дремин, В.В. Мультипараметрический подход к оценке кожной
микроциркуляции у пациентов дерматологического профиля (на примере
псориаза) [Текст] / В.В. Дремин, А.В. Дунаев, Н.Ю. Якушкина, А.И.
Крупаткин, Н.Б. Маргарянц // Физиология человека. – 2021. – Т. 47. – № 6. –
С. 33-42.
384. Rosina, P. Videocapillaroscopy in the differential diagnosis between
psoriasis and seborrheic dermatitis of the scalp [Text] / P. Rosina, M.R. Zamperetti,
A. Giovannini, G. Girolomoni // Dermatology. – 2006. – Vol. 214. – № 1. – P. 21-
24.
385. Rosina, P. Microcirculatory modifications of psoriatic lesions during
topical therapy [Text] / P. Rosina, A. Giovannini, P. Gisondi, G. Girolomoni // Skin
Research and Technology. – 2009. – Vol. 15. – № 2. – P. 135-138.
386. Hern, S. In vivo quantification of microvessels in clinically uninvolved
psoriatic skin and in normal skin [Text] / S. Hern, P.S. Mortimer // British Journal
of Dermatology. – 2007. – Vol. 156. – № 6. – P. 1224-1229.
387. Dremin, V.V. Peculiarities of local blood microcirculation in patients
with psoriasis [Text] / V.V. Dremin, M.A. Filina, E.V. Zharkikh, I.O. Kozlov, E.A.
Zherebtsov, E.V. Potapova, N.S. Malaya, N.Y. Yakushkina, I.A. Snimshchikova,
A.V. Dunaev // Biophotonics: Photonic Solutions for Better Health Care VI. – SPIE,
2018. – Vol. 10685. – P. 1068532.
388. Ахутин, В.М. Теория и проектирование диагностической
электронно-медицинской аппаратуры [Текст] / В.М. Ахутин, О.Б. Лурье, А.П.
Немирко, Е.П. Попечителев. – Ленинград: Изд-во ЛГУ, 1980. – 148 с.
389. Попечителев, Е.П. Методы медико-биологических исследований.
Системные аспекты: учебное пособие [Текст] / Е.П. Попечителев. – Житомир:
ЖИТИ, 1997. – 187 с.
390. Ахутин, В.М. Биотехнические системы: теория и проектирование
[Текст] / В.М. Ахутин, А.П. Немирко, Н.Н. Першин, А.В. Пожаров, Е.П.
Попечителев, С.В. Романов. – Ленинград: Изд-во ЛГУ, 1981. – 220 с.
Соседние файлы в папке Библиотека им академика М.И. Перельмана