Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Современные проблемы и подходы к переработке плодово-ягодного сырья и производству ликероводочных изделий. Монография
.pdf
экстрагента – 1 : 10; температура процесса – 95–98 ºС; значение рН
среды – 1,8–2,0; продолжительность процесса гидролизаэкстрагирования – 1 ч. Остальные технологические операции
осуществляются аналогично существующим схемам получения
пектина из выжимок яблок культурных сортов [49].
Таким образом, все существующие на сегодняшний день
технологии получения пектина можно представить одной
принципиальной схемой включающей экстракцию измельченного
сырья горячей водой, растворами органических и неорганических
кислот, фильтрацию, вакуумное упаривание экстракта, осаждение
пектина и сушку.
Определяющим этапом переработки пектинсодержащего
сырья является экстракция пектиновых веществ, она реализуется
двумя отдельными процессами – гидролизом и диффузией.
Экстрагирование пектина из растительного сырья – одна и самых
сложных задач. Вероятно, невозможно полностью экстрагировать
пектин без разложения [96]. Но, даже с деградирующими агентами,
нельзя получить 100 % степень извлечения пектина при экстракции.
Основными факторами, определяющими экстракционный процесс
являются:
– вид используемого сырья;
– применяемый экстрагент;
– технологические параметры ведения процесса гидролиза –
экстракции пектина (рН реакционной среды, температура и время
обработки, гидромодуль и др.).
Для производства пектина используется растительное сырье с
высоким содержанием пектина. Несмотря на широкое
распространение пектиновых веществ в растительном мире, число
растений, которые могут быть использованы для промышленного
производства пектина, весьма ограниченно. Традиционным сырьем в
основном являются яблоки, цитрусовые и сахарная свекла.
Содержание пектина в яблочных выжимках колеблется от 5 до
15 %. Стоимость яблочных выжимок занимает 33 % в себестоимости
пектина. Содержание пектина в свежей корочке цитрусовых
колеблется от 4 до 6 %, в сухой – 9-30 %. Однако данные культуры
произрастают только в отдельных южных районах (Италии, Испании,
Средней Азии и некоторых других) [96].
Свекловичный жом является доступным сырьем для получения
пектина (20-25 %). Преимуществом свекловичного жома по
91

сравнению с вышеперечисленными сырьем является районирование
данной культуры и возможность механизированной заготовки сырья.
Однако, районирование сахарной свеклы сильно зависит от структуры
и состава почвы, климатических условий и требует использование
больших посевных площадей.
Поиск новых не менее доступных источников сырья для
получения пектина до сих пор является актуальным.
92

3. ТЕХНОЛОГИЯ КОМПЛЕКСНОЙ ПЕРЕРАБОТКИ
ПЛОДОВО-ЯГОДНОГО СЫРЬЯ
3.1. Возможность получения пектина на основе линии по
производству сладких настоек
Анализ литературных источников показал, что в настоящее
время актуальной задачей является создание принципиально нового
подхода к процессу настаивания морсов с целью максимального
использования плодово-ягодного сырья, получения продуктов с
повышенным содержанием минеральных и органических веществ, к
разработке ресурсосберегающих технологий производства
алкогольных продуктов с повышенной биологической ценностью из
плодово-ягодного и растительного сырья.
Одним из способов интенсификации процесса настаивания
может быть использование новых типов ротационного
оборудования [27].
В настоящее время в ряду актуальных проблем стоит
рациональное использование первичных сырьевых ресурсов, а также
комплексная переработка и безопасная утилизация вторичных
сырьевых ресурсов. Для ее решения требуется наращивание
производственной базы перерабатывающей отрасли
агропромышленного комплекса, улучшение использования сырья
посредством разработки и создания новых прогрессивных,
энергосберегающих технологий комплексной переработки ценных
вторичных сырьевых ресурсов на основе последних достижений науки
и техники.
Проблема увеличения производства высококачественных
пектиновых веществ и расширения их ассортимента является частью
решения этой проблемы [35, 49].
Одним из важнейших направлений увеличения объемов
производства пектинсодержащих пищевых изделий является
расширение сырьевой базы пектинсодержащего сырья за счет
нетрадиционных источников и разработка новых способов получения
пектинопродуктов из традиционного и нетрадиционного
промышленного сырья, поэтому актуальными являются исследования
по разработке технологий получения пектина и пектинопродуктов из
плодовой оболочки (створки) хлопчатника, виноградных, айвовых
выжимок, кормового арбуза, тыквы, коры хвойных деревьев. Способы
93

получения пектина из различного растительного сырья можно
представить в виде схемы (рис. 3.1).
94

Ранее проводимые исследования [129–140] и нормативные
данные по получению спиртованных морсов (ТР 10-04-03-09-88),
представленные в табл. 3.1 показывают, что введение янтарной
кислоты повышает выход экстрактивных веществ и осаждение
пектина, но, тем не менее, переход органических веществ
недостаточен.
Таблица 3.1. Физико-химические характеристики экстрактов
Показатели
Содержание
экстрактивных
веществ г/100 см
Содержание
сахаров, г/100 см
Содержание
растворенных
пектиновых
веществ, г/100 см
Количество
выделенных
пектиновых
веществ, г/100 см3
Содержание
титруемых
кислот, г/100 см
Содержание
белковых
веществ, г/100 см
3
3
По типовой
технологии
3
3
3
Спиртованный морс
клюквы
Двукратное
настаивание в
присутствии
ЯК
3,2
1,3
0,210
-
1,0
0,328
5,46
2,2
0,004
0,455
1,04
0,016
Спиртованный морс
красной рябины
По
типовой
техно-
логии
9,7
2,3
0,386
-
1,5
0,81
Двукратное
настаивание в
присутствии
ЯК
11,4
3,71
0,001
0,536
1,65
0,025
Использование ультразвуковых колебаний в качестве фактора,
ускоряющего диффузионный процесс, является весьма
перспективным. Нелинейное распространение ультразвуковых
колебаний и связанное с ними большое ускорение частиц является
одним из факторов интенсификации диффузионных процессов.
Ультразвук высоких, кавитационных интенсивностей способен
95

разрушать макромолекулы в растворе и клетки в суспензии, тогда как
при низких интенсивностях, сопровождающихся лишь
микротечениями в жидких средах, приводит лишь к ускорению
биологических процессов.
В последнее время благодаря развитию электроники были
разработаны более компактные и менее дорогие установки, что
способствовало их более широкому внедрению.
Проводимые исследования по комплексной переработке
плодово-ягодного сырья с использованием промышленной установки
роторно-пульсационного типа «S-эмульгатор» позволили провести
процесс гидролиз-экстракции свежих ягод клюквы и рябины при
температуре в пределах от 29,0 оС до 30,6 оС. В таблице 3.2
представлены технологические параметры обработки сырья в РПА.
Таблица 3.2. Технологические параметры обработки сырья в РПА
Наименование
показателей
Температура
начальная, оС
Температура
конечная, оС
Гидромодуль 1:3 1:3 1:3 1:3
V S, об./мин 3700 3300-3400 4000-5000 4000-4100
T, мин 10 10 7 7
Для экспериментальных исследований были приготовлены
следующие образцы:
1. Контроль (клюкву экстрагировали водой при гидромодуле 1:3).
2. Опыт 1 (клюкву экстрагировали водой при гидромодуле 1:3 в
присутствии гидролизующего агента – янтарной кислоты).
3. Контроль (рябину экстрагировали водой при гидромодуле 1:5).
4. Опыт 2 (рябину экстрагировали водой при гидромодуле 1:5 в
присутствии гидролизующего агента – янтарной кислоты).
Гидромодуль и концентрация гидролизующего агента выбраны на
основании проводимых ранее исследований [138].
клюквы и рябины представлены в табл. 3.3.
Физико-химические показатели водного гидролизата ягод
Контроль 1
(клюква)
12
30
Опыт 1
(клюква)
11
29
Контроль 2
(рябина)
18
30
Опыт 2
(рябина)
18,5
28
96

Таблица 3.3. Физико-химические показатели водного гидролизата ягод
Содержание
г/100 см
Содержание определяемых веществ,
3
опытов
Наименование
с.в., г/100см
вещества
Белковые
сахара
Общие
Общее содержание
Контроль 1 6,42 0,3129 0,161 0,1431 2,319 3,789 1,13 2,43
Опыт 1 9,25 0,3300 0,163 0,843 3,801 5,449 1,19 2,35
Контроль 2 6,5 0,64 0,03 0,105 2,57 3,93 2,15 3,52
Опыт 2 8,214 0,89 0,12 0,254 2,883 5,331 4,52 3,36
г/см
3
3
рН
вещества
ВМС
Пектиновые
НМС
титруемых кислот,
Проведение гидролиз-экстракции в ультразвуковой установке
позволяет значительно увеличить переход экстрактивных веществ в
раствор, как высокомолекулярных, так и низкомолекулярных.
Использование дополнительного гидролизующего агента
(янтарной кислоты) к природным кислотам повышает переход в
растворенное состояние условно растворимых веществ, что
значительно повысило выход общих экстрактивных веществ. Влияние
гидролизующего агента на содержание сухих веществ в экстрактах
представлено на рисунке 3.2.
3
10
9
8
7
6
5
4
3
2
1
Содержание сухих веществ, г/100 см
0
контроль опыт
клюква рябина
Рис.3.2. Влияние гидролизующего агента на содержание сухих веществ в
экстрактах
97

Как свидетельствуют представленные на рис. 3.2 данные, в
Содержание
г/100 см
опытных образцах общее содержание сухих веществ увеличивается.
Отделение выпавших в осадок нерастворимых и
труднорастворимых органических веществ из гидролизата
исследуемого сырья проводилось на лабораторной центрифуге.
Полученные данные по выходу гидролизата по массе и объему
и после центрифугирования гидролизата и мезги приведены в табл. 3.4
Таблица 3.4. Выход гидролизатов после обработки в РПА и
центрифугирования
Наименование
опытов
Контроль 1 4,583 4,571 4,340 0,402
Опыт 1 4,520 4,482 4,220 0,384
Контроль 2 2,030 2,056 1,837 0,403
Опыт 2 2,190 2,231 1,985 0,403
Количество
гидролизатов
л кг
Общее количество
водного фильтрата
после
центрифугирования,
л
Общее количество
осадка после
центрифугирования,
кг
Результаты анализов содержания определяемых веществ в
фильтрованных гидролизатах и осадков органических веществ после
центрифугирования представлены в таблицах 3.5 и 3.6 соответственно.
Таблица 3.5. Содержание определяемых веществ в фильтрованных
водных гидролизатах
3
3
3
3
3
г/100 см
растворимых С.В,
Наименование опытов
Контроль 1 2,14 0,0061 0,0013 0,264 0,623 285 2,49
Опыт 1 2,646 0,0042 0,0013 0,201 0,406 286 2,54
Контроль 2 7,448 0,0209 0,0015 0,105 0,525 170 3,23
Опыт 2 8,075 0,0080 0,0015 0,254 0,301 177 3,24
Общее содержание
Сахара, г/100 см
г/100 см
Растворимые белки,
г/100 см
титруемых кислот,
Пектиновые вещества,
ОВП, mV
рН, ед. рН
98

Таблица 3.6. Содержание определяемых веществ в мезге после
Общий вес
веществ, г
центрифугирования
Содержание определяемых веществ в
выделенном осадке
Влага Зола Сухие
опытов
выделенных
Наименование
Контроль 1 402 75,2 302,3 0,19 0,764 24,8 99,696 24,62 98,972
Опыт 1 384 78,4 301,1 0,17 0,654 21,6 82,944 21,43 82,291
Контроль 2 403 68,7 276,7 0,40 1,602 31,3 126,140 30,90 124,53
Опыт 2 403 67,5 272,0 0,39 1,572 32,5 130,975 32,11 129,41
% г % г % г % г
вещества
Содержание
растворимых
сухих
веществ
Выделенный из водного гидролизата осадок органических
веществ (мезга) был проанализирован на содержание сахаров,
белковых и пектиновых веществ. Результаты представлены в табл. 3.7.
Таблица 3.7. Содержание сахаров, белковых и пектиновых веществ в
мезге
Наименование
опытов
Контроль 1 2,1753 2,1596 0,0047 следы 1,456
Опыт 1 1,8350 1,8200 0,0046 следы 1,010
Контроль 2 6,2140 6,1340 0,0062 следы 1,884
Опыт 2 5,9810 5,9090 0,0060 следы 0,962
Содержание сухих
веществ
общие,
г/100
см
растворимые,
3
г/100 см3
Содержание определяемых
органических веществ
сахара,
г/100
см
3
белковые
вещества,
г/100 см3
пектиновые
вещества,
г/100 см3
Согласно полученным экспериментальным данным
растворимых белков в гидролизате после центрифугирования очень
мало, а в осадке обнаружены только их следы во всех экспериментах.
Содержание сахаров также незначительно. Полученные
экспериментальные данные позволяют сделать предположение, что в
процессе обработки в РПА произошло сахарокислотное
гелеобразование и другие взаимодействия в том числе с белковыми
веществами.
99

Полученные первичные результаты требуют более
развернутых исследований, но в то же время эти результаты
подтверждают данные других авторов [11, 86] по применению
ультразвукового воздействия (диспергирования).
Осаждение органических веществ из водного гидролизата
проводили этиловым спиртом до крепости: 35 % об.; 50 % об. и
70 % об.
Полученные экспериментальные данные по выходу
осажденных органических веществ представлены в таблице 3.8.
Таблица 3.8. Комплекс биополимеров преимущественно
полисахаридной природы
Наименование
опытов
Контроль 1 3,0004 3,4104 4,1299
Опыт 1 3,1504 4,8207 5,0299
Контроль 2 3,4402 3,5801 3,2499
Опыт 2 3,6003 3,6097 3,4204
Осаждение органических веществ спиртом проводили из
гидролизата объемом 500 мл во всех экспериментах.
Как показывают данные, представленные в таблицах 3.9, 3.10,
использование более высокой концентрации спирта позволяет
наиболее полно осаждать органические вещества из полученных
водных гидролизатов ягодного сырья, что в дальнейшем будет
способствовать получению стойких к помутнениям спиртованных
морсов и соков, а в дальнейшем – настоек изготовленных на их
основе,.
Кроме того, более полное удаление нерастворимых и
малорастворимых в спирте и водоспиртовой среде органических
веществ исключает в дальнейшем такие операции, как оклейка,
обработка холодом, ферментативная обработка, и повышает сроки
хранения готовой продукции.
Вес осажденных органических веществ,
г/100 см3
Содержание спирта, % об.
35 50 70
100
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]
