Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Общая эпизоотология. Учебное пособие
.pdf
из пробки флакона не вынимают до использования всего содержимого. После того, как наполненный препаратом шприц отделяют от
иглы флакона, отверстие иглы прикрывают ватным тампоном, смоченным дезинфицирующим раствором.
Оформление акта на иммунизацию животных
Акт – документ, составленный несколькими лицами для подтверждения установленного факта, события, действия. Поводы для
составления актов могут быть различными, поэтому существует
большое количество разновидностей актов. Для стандартных ситуаций разработаны бланки актов. Если нет установленной нормативным документом формы, то независимо от его разновидности акт
составляют по единой схеме согласно ГОСТу: указывают дату и место составления, наименование документа (акт), заголовок текста,
документа (допускается), состав комиссии с указанием должности,
фамилии, имени, отчества членов комиссии, текст документа подписи лиц, составляющих акт.
Вопросы и задания для контроля знаний
1. Какие биопрепараты применяют для создания активного
иммунитета?
2. Какие биопрепараты применяют для создания пассивного
иммунитета?
3. На какие группы условно подразделяются все биопрепараты?
4. Какие поводы имеются для составления актов?
5. Какие требования предъявляют к хранению биопрепаратов?
6. Что необходимо сделать перед применением биопрепарата?
7. Какие биопрепараты относят к лечебно-профилактическим?
11
3. Организация взятия крови у животных
для серологического исследования
На ферме преподаватель с ветеринарным врачом готовит рабочее место (стол, стул, ведро с теплой водой и т.д.). За тем преподаватель показывает студентам фиксацию животного, подготовку места
взятия крови, наложение жгута, взятие крови из яремной вены (подхвостовой вены). Учебную группу делят на 3–4 подгруппы, между
обучающимися подгруппы обязанности распределяются в следующем порядке: два студента обеспечивают фиксацию животного,
третий выстригает волосяной покров и дезинфицирует место взятия
крови, четвертый накладывает жгут, пятый берет кровь, шестой записывает в тетради порядковый номер проб крови и инвентарный
номер животного.
Взятие крови у крупного рогатого скота
для серологического исследования
Кровь у крупного рогатого скота берут из яремной вены утром
до кормления животных, волосы на месте взятия крови выстригают,
протирают спиртовыми тампонами (70 %), для каждого животного
берут стерильную иглу и пробирку (при возможности используют
вакуумные), вену пережимают с помощью жгута. Нужно следить,
чтобы кровь стекала по стенке пробирки и не каплями. Кровь, взятая
каплями и вспененная скоро гемолизируется и для исследования не
пригодна.
У мелкого рогатого скота берут следующим образом: овец прогоняют через раскол, рядом с которым выкапывают траншею глубиной около 1 метра. Ветеринарный специалист (обучающийся) находится в этой траншее и к нему по очереди подводят овец. Иногда
вместо траншеи оборудуют специальный длинный стол высотой
60–90 см. Кровь у овец берут из яремной вены. Вена у овец легко
пережимается пальцем.
Вопросы для контроля знаний
1. Как правильно фиксировать крупный рогатый скот при взя-
тии крови?
12
2. Как правильно фиксировать мелкий рогатый скот при взятии
крови?
3. Почему кровь следует брать выше наложенного жгута?
4. Какие инструменты берут для взятия крови?
5. Как происходит стерилизация инструментов для взятия
крови?
6. Какое количество крови у крупного рогатого скота берется
для серологического исследования?
7. Как происходит подготовка места взятия крови?
13
4. Техника проведения аллергической диагностики
туберкулеза крупного рогатого скота
Аллергическое исследование крупного рогатого скота на туберкулез проводится внутрикожной пробой. В качестве аллергена
используется стандартный раствор туберкулина. Необходимо проверить качество туберкулина, обращая внимание на дату изготовления,
срок годности, герметичность флакона. Далее крупному рогатому
скоту аллерген вводят в среднюю часть шеи, перед введением туберкулина волосы необходимо выстричь в виде двух расположенным
перпендикулярно друг к другу полос шириной 2 см. Препарат вводят
в центр полос, перед введением туберкулина кожу дезинфицируют
спиртовым тампоном. Животным с двухмесячного возраста туберкулин вводят внутрикожно в дозе 0,2 мл. Показателем правильного
введения аллергена служит появление плотного бугорка величиной
с горошину.
Вопросы для контроля знаний
1. Как проверяется правильность внутрикожного введения ту-
беркулина крупному рогатому скоту?
2. Почему место введения туберкулина следует выстричь и де-
зинфицировать спиртовым тампоном?
3. В какой дозе вводят туберкулин крупному рогатому скоту?
4. Как проверяется пригодность туберкулина к применению?
5. С какого возраста проводится диагностика крупного рога-
того скота?
6. Что из себя представляет диагностический препарат тубер-
кулин?
7. С какой целью проводят аллергическое исследование круп-
ного рогатого скота на туберкулез?
14
5. Освоение техники введения биопрепаратов для
активной иммунизации крупного рогатого скота
В животноводческом помещении готовят рабочее место (стол
и др.).
До начала иммунизации необходимо провести клинический ос-
мотр животных, следует вакцинировать только здоровых животных.
Обучающиеся знакомятся с наставлением по применению вак-
цины.
Определяют качество биопрепарата, обращая внимание на
цвет, консистенцию, наличие хлопьев, осадка, герметичность флакона (ампулы) которые должны соответствовать данным, изложенным в наставлении.
Все флаконы с повреждениями, без этикеток немедленно выбраковываются. Преподаватель акцентирует, что перед использованием вакцины пробку флакона (ампулы) снаружи протирают спиртовым тампоном, и только затем прокалывает стерильной иглой
и содержимое флакона набирает в шприц. Разведенную вакцину
предохраняют от прямых солнечных лучей. В процессе занятия преподаватель постоянно контролирует работу обучающихся, за привитыми животными наблюдают в течение 10–14 дней, оберегая их от
переохлаждения и перегревания.
Вопросы для контроля знаний
1. Как проверяется пригодность вакцины к применению?
2. В каких случаях вакцины не может быть использована для
иммунизации животных?
3. Как правильно набирать вакцину из флакона в шприц?
4. Почему нужно наблюдать за привитыми животными в тече-
ние 10–14 дней?
5. Как поступить с оставшейся неиспользованной вакциной?
6. С какой целью после вакцинации животных нужно обере-
гать от переохлаждений и перегреваний?
7. Как подготовить рабочее место для проведения иммуниза-
ции животных?
15
6. Правила взятия патологического материала
и порядок его отправки в лабораторию
для исследования. Личная профилактика.
Оформление сопроводительного документа
Патологический материал брать стерильными инструментами
в стерильную посуду, как можно раньше после смерти животного,
особенно в теплое время года (в летний период не позже 4–5 часов,
зимний – не позже 15–16 часов).
Соблюдать меры личной профилактики. При вскрытии трупа
ветеринарный врач должен быть в спецодежде: в халате, сапогах, очках, марлевой повязке, перчатках.
Перчатки можно надевать по две пары в зависимости от опасности болезни, например, при подозрении на бешенство.
Во время вскрытия нельзя пить, курить, принимать пищу.
В случае травмы, пореза рук необходимо как можно раньше дезинфицировать место пореза. При попадании брызг или другого материала на кожу это место также необходимо продезинфицировать.
Предупреждать возможное распространение возбудителя болезни
и исключать обсеменение взятого материала посторонней микрофлорой. Патологический материал отправляют в лабораторию в неконсервированном виде в течение 24–30 часов, при невозможности
отправить в указанные сроки – его консервируют.
Для бактериологического исследования взятый материал
консервируют 30,0 %-м водным раствором химически чистого
глицерина.
Воду предварительно стерилизуют кипячением или автоклавированием в течение 30 минут. Можно консервировать в стерильном
вазелиновом масле. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве, в 4–5 раз превышающем его объем. Материал,
направляемый для вирусологических исследований, консервируют
30–50 %-м раствором глицерина на физиологическом растворе поваренной соли, который предварительно стерилизуют в автоклаве при
120 °С в течение 20 минут.
Сопроводительный документ информирует адресата о направлении к нему прилагаемых документов, предметов. Сопроводитель-
16
ные письма составляются в случаях отправки проб сыворотки крови,
патматериала и т.п. в лабораторию для исследования. В ветеринарии
сопроводительные документы имеют определенную форму, регламентированную ветеринарным законодательством.
Вопросы и задания для контроля знаний
1. Расскажите, какие меры личной профилактики следуют со-
блюдать при работе с заразным материалом?
2. Перечислите формы упаковки различных видов патологиче-
ского материала для отправления в лабораторию.
3. Почему пробы патматериала для установления отравления
нельзя консервировать?
4. Почему пробы патматериала для гистологического исследо-
вания должны быть не большими (0,5×0,5 см)?
5. Почему пробы патматериала для бактериологического ис-
следования берут от не подвергшихся лечению животных?
6. Почему пробы патматериала для вирусологического исследования необходимо консервировать раствором глицерина на физиологическом растворе?
7. Почему патологический материал необходимо брать как
можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время
года?
17
7. Меры снижения рисков распространения
инфекционных болезней
При разработке оздоровительных мероприятий в эпизоотическом очаге необходимо применять широкий комплекс мероприятий,
воздействующих на все звенья эпизоотической цепи. Данный комплекс включает меры: 1) в отношении источника возбудителя инфекции; 2) механизма и путей передачи возбудителя и 3) по созданию
или повышению общей и специфической устойчивости животных
к инфекционным болезням. Знание эпизоотической обстановки позволяет выявить наиболее слабые элементы эпизоотической цепи,
что обеспечивает высокую эффективность проводимых мероприятий в конкретных природно-географических и социально-экономических (хозяйственных) условиях.
Эта группа мер направлена на решение двух задач: выявление
и обеззараживание источника возбудителя инфекции. Эпизоотологические данные и результаты диагностических исследований, как
правило, дают возможность точно поставить диагноз и максимально
выявить источники возбудителя инфекции.
Методы диагностики инфекционных болезней. Быстрое установление правильного нозологического диагноза имеет ведущее значение в эпизоотологической работе, т. к. обеспечивает своевременность и эффективность проведения оздоровительных мероприятий.
Как вы уже хорошо знаете, диагностика любой инфекционной
болезни, возникшей в первичном эпизоотическом очаге, должна
быть комплексной, включающей в себя: эпизоотологическое обследование (эпизоотологическая диагностика), клиническое (клиническая диагностика), гематологическое исследование, патологоанатомическое (патологоанатомическая диагностика), микробиологическое и вирусологическое, аллергическое и серологическое исследования (диагностика), гистологическое, биологическое исследование
(искусственное заражение здоровых восприимчивых животных или
лабораторных животных).
Широкое применение клинико-эпизоотологического метода
в комплексе с микробиологическими, серологическими и аллергическими исследованиями позволяет максимально выявить поражен-
18
ных животных в неблагополучном стаде. Последующая изоляция
указанных животных и обеззараживание их полностью решают задачу по ликвидации первой движущей силы эпизоотического процесса – источника возбудителя инфекции.
На основании массового исследования животных неблагополучного хозяйства делят на три группы: 1) явно больные; 2) подозрительные по заболеванию; 3) подозреваемые в заражении.
Явно больные – это животные, в отношении которых диагноз
считается несомненным, подлежат изоляции. Для их обслуживания
выделяют специальный персонал. Больных животных лечат или
убивают, если лечение экономически невыгодно.
Подозрительные по заболеванию – это животные, имеющие
неясные клинические признаки болезни или гипертермию, или сомнительные диагностические реакции. Их тоже изолируют, но в отдельном месте и дополнительно исследуют с целью установления
диагноза. В зависимости от результатов исследования определяют
характер их дальнейшего использования в хозяйстве.
Подозреваемые в заражении (условно здоровые) – осталь-
ные животные, содержащиеся вместе с больными или имевшими
прямой или косвенный контакт с больными животными. Поголовье
этой группы должно находиться под усиленным ветеринарным наблюдением и подвергаться систематическим диагностическим исследованиям до полного прекращения выявления зараженных животных. Одновременно, в зависимости от особенностей инфекционной болезни, их либо иммунизируют (активно или пассивно), либо
обрабатывают лечебно-профилактическими средствами (премиксы),
а также применяют другие меры общей профилактики.
Мероприятия, направленные на механизм передачи
возбудителя инфекции
Эта группа оздоровительных мероприятий направлена на пресечение или недопущение передачи возбудителя от больных животных здоровым.
Поскольку механизм передачи возбудителя, свойственный каждой инфекционной болезни, специфичен, противоэпизоотические
меры по отношению к нему должны носить специальный характер. Так, при респираторных болезнях проводят рассредоточение
19
животных и улучшают условия их содержания; при алиментарных
инфекциях – заменяют корма или обезвреживают их, вводят индивидуальное кормление и водопой, запрещают пастьбу на зараженных
пастбищах; при трансмиссивных болезнях – уничтожают возбудителей болезней, проводят защиту животных от них и т. д.
В этой группе специальных мероприятий обеззараживание
факторов передачи возбудителей занимает одно из основных мест.
Поэтому дезинфекция, дезинсекция, дератизация, направленные на
тотальную санацию внешней среды эпизоотического очага от конкретного возбудителя болезни, являются обязательными.
В неблагополучном хозяйстве мероприятия в отношении пресечения механизма и путей передачи возбудителя инфекции занимают
важное место в системе оздоровительной работы.
В неблагополучном по инфекционной болезни хозяйстве в отношении поголовья, находящегося под угрозой заражения, прежде
всего проводят мероприятия, направленные на разобщение его
с явно больными и подозреваемыми по заболеванию животными. Для
этого своевременно удаляют инфицированных животных из стад и помещений и содержат их изолированно от здорового поголовья.
В целях повышения естественной резистентности устраняют
нарушения в кормлении и содержании животных, не допускают
длительных и утомительных перегонов (перевозок) их, принимают
меры по профилактике травматизма животных, не допускают поения
некачественной и холодной водой, при необходимости в рацион вводят антистрессовые премиксы.
При наличии специфических средств защиты подозреваемых
в заражении или находящихся под угрозой заражения животных иммунизируют по схеме вынужденных прививок. При некоторых инфекционных болезнях (колибактериоз, сальмонеллез, респираторные
инфекции молодняка) вначале проводят экстренную профилактику
в виде лечебно-профилактических обработок животных антимикробными средствами (премиксы), а затем их вакцинируют. Эффективность вакцинации значительно повышается при одновременном улучшении кормления, размещения и эксплуатации животных.
Применение вакцин имеет важное значение в системе оздоровительных мероприятий при многих инфекционных болезнях. В то
же время в неблагополучных и угрожаемых крупных хозяйствах про-
20
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]