Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Диагностика туберкулеза животных

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
07.09.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
Наиболее чувствительным из вышеперечисленных ме­тодов является биологический, позволяющий обнаружить туберкулез у исследуемого животного, даже если во взятом материале (1 мл) имеются лишь единичные экземпляры ми­кобактерий. Однако бывают случаи, когда из-за снижения вирулентности микобактерий туберкулеза для лаборатор­ных животных под влиянием химиопрепаратов посев из патологического материала может дать положительный ре­зультат при отрицательном исходе биопробы.
Из сказанного можно заключить, что ни один из пере­численных методов не обеспечивает в настоящее время по­лучения достоверного ответа, и только комплексное их при­менение позволяет поставить правильный диагноз.
Бактериоскопический метод. С целью обнаружения в исследуемом материале кислото-, спиртоустойчивых мико­бактерий применяют бактериоскопический метод. Матери­алом для такого исследования являются пораженные ткани, мокрота, молоко, фекалии, гной, моча и сперма животных, а также объекты внешней среды. Патологический материал для исследования в лабораторию доставляют в свежем виде в стерильной посуде. В летнее время его можно отправлять в термосе со льдом. Допускается также консервация проб 30%-м стерильным водным раствором химически чистого глицерина. Пробы молока берут из всех четвертей вымени в количестве 150-200 мл. Перед взятием их вымя обмывают теплой водой с мылом, дезинфицируют 50 %-м этиловым спиртом, протирают стерильной ватой или свежепрогла­женным полотенцем. Первые струи молока выдаивают в от­дельную посуду, а последующие – в стерильную бутылку. Для взятия мокроты полость рта коровы освобождают от остатков корма, принудительно выпаивая ей бутылку воды. Затем для вызывания кашля нос и рот животного обматы­вают куском полотна, сжимая при этом носовые отверстия, и надавливают на гортань. После кашля на полотне остает­ся немного мокроты, которую собирают в стерильную про­бирку и закрывают стерильной резиновой пробкой. Кроме
21
указанного метода, имеются еще и другие способы отбора мокроты, но они более трудоемки.
Микобактерии обнаруживают в виде тонких прямых или изогнутых красных палочек. При обнаружении в пре­паратах-мазках кислотоустойчивых палочек их принадлеж­ность к микобактериям туберкулеза следует подтвердить с помощью культурального и биологического методов. Поло­жительный результат бактериоскопического исследования при световой микроскопии не дает возможности достоверно установить диагноз на туберкулез, поскольку, кроме мико­бактерий туберкулеза, в препаратах-мазках, окрашенных по Цилю-Нильсену, в красный цвет окрашиваются атипичные микобактерии и возбудитель паратуберкулеза. Особенно ча­сто в них встречаются атипичные микобактерии. Последние отличаются от микобактерий туберкулеза морфологически­ми и тинкториальными особенностями. Это более толстые, грубые, короткие (или длинные) незернистые палочки. Од­нако морфологические признаки микобактерий нестабиль­ные, они изменяются в зависимости от многих факторов. Поэтому чрезвычайно трудно бактериоскопически диффе­ренцировать атипичные микобактерии от возбудителей ту­беркулеза. Иногда важно знать, находятся ли в препарате живые микобактерии или погибшие. Решить такой вопрос невозможно путем окраски их по Цилю-Нильсену. Для этой цели предложен цитохимический метод определения жиз­неспособности микобактерий. Он заключается в различной окрашиваемости нативной и деполимеризованной ДНК ми­кробной клетки.
Культуральный метод. В основе этого метода лежит
способность микобактерий к размножению in vitro на пита­тельных средах. В результате размножения отдельных ми­кобактерий на питательной среде образуются видимые про­стым глазом колонии.
Цель культурального исследования – выделение из па­тологического материала культуры микобактерий и опреде­ление ее вида. Открытие возбудителя туберкулеза Р. Кохом
22
в 1882 г. оказалось возможным в результате разработки пи­тательных сред для выращивания культуры микобактерий туберкулеза и их окраски. Однако продолжительное время выделение чистых культур микобактерий из патологическо­го материала удавалось с большим трудом из-за загрязнения питательных сред быстрорастущей посторонней микро­флорой. Лишь после открытия Левенштейном и Сумиоши (1924 г.) возможности использования небольших концентра­ций кислот и щелочей для уничтожения побочной микро­флоры без ущерба для находящихся в патологическом ма­териале микобактерий появилась возможность выделения чистых культур. При культуральном исследовании большое значение имеет предпосевная обработка исследуемого ма­териала. Известно, что при обработке патологического ма­териала для уничтожения побочной микрофлоры часть ми­кобактерий погибает. Поэтому следует использовать такие вещества и в таких концентрациях, которые оказывали бы минимальное губительное действие на микобактерии и мак­симальное – на побочную микрофлору. В настоящее время для обработки патологического материала перед посевом на питательные среды используют следующие методы: Гона, Левенштейна, Сумиоши и др.
Особенности роста культур микобактерий тубер­кулеза на различных средах. Появление первичного роста
микобактерий туберкулеза на различных питательных сре­дах во многом зависит от количества и жизнеспособности микобактерий, находящихся в исследуемом материале. Для нормального роста культур микобактерий большое значе­ние имеют наличие достаточной влажности среды, а также соответствие и постоянство температуры и рН среды. М. bo- vis в первой генерации растет на плотных яичных средах скудно. Рост появляется обычно на 30-60-е сутки в виде мелких круглых, влажных, почти прозрачных колоний цвета слоновой кости (R-форма). Оптимальная температура роста 37 - 38°С. Глицерин задерживает рост культуры, поэтому на плотных яичных средах, содержащих глицерин, она растет
23
очень плохо или вообще не растет. На мясопептонном ага­ре и бульоне, а также на яичных средах при комнатной (18­22°С) и повышенной (45°С) температуре культура не растет. Поскольку М. bovis является микроаэрофилом, то на среде Сотона с сывороткой и агаром колонии микобактерий ра­стут на глубине 9 - 20 мм от поверхности среды. На жидких питательных средах они образуют нежную пленку. При пас­саже культура растет быстрее (на 15-30-е сутки инкубации).
М. tuberculosis растет в первой генерации медленно. На плотных яичных средах рост появляется на 20-30-е сут­ки в виде сухих, неправильной формы колоний, напоминаю­щих бородавки или миниатюрные кочаны цветной капусты (R-форма). В редких случаях колонии могут быть гладкими (S-форма). Оптимальная температура роста 37-38°С. Глице­рин содействует росту культур. На безглицериновой плот­ной яичной среде растет скудно или вообще не растет. На мясопептонном агаре и бульоне, а также при комнатной и повышенной (45°С) температуре не растет.
М. tuberculosis – аэроб, на среде Сотона с сывороткой и агаром растет на поверхности или в верхних слоях среды. На жидких питательных средах рост микобактерий появля­ется к 15-30-м суткам инкубации в виде мелких крупинок на дне пробирки в прозрачной среде или в виде пленки на поверхности жидкости, которая затем утолщается и при­обретает морщинистый вид. Достигнув стенки пробирки, пленка поднимается по стеклу. На картофельной среде Пав­ловского М. tuberculosis дает плотный рост – толстые склад- чатые слои, а на глицериновой воде – в виде пленки.
Как M. bovis, так и М. tuberculosis при выращивании в кровяной или полусинтетической средах на предметных сте­клах начиная с 7-х суток инкубации образуют характерные микроколонии в виде кос или жгутов, которые в дальней­шем заметно увеличиваются, образуя сплетения жгутов или кос. Образование жгутов и кос обусловлено корд-фактором, способствующим склеиванию микобактерий, и наблюдает­ся почти без исключения только у штаммов М. bovis и М. tu- berculosis.
24
М. avium растет на плотных яичных средах в первой генерации начиная с 20-х суток инкубации в виде гладких, влажных, блестящих колоний (S-форма) цвета слоновой ко­сти. У культур старше 1,5-2 мес появляются кольцеобраз­ные колонии с валикообразными краями. М. аvium растет как при 37-38°С, так и при 45°С и очень часто – при ком­натной температуре (18-22°С). При длительном хранении, в частности на свету и при комнатной температуре, куль­туры могут окрашиваться в желтый цвет. Примерно поло­вина штаммов М. avium растет на мясопептонном агаре и бульоне. В жидких питательных средах штаммы М. avium на дне пробирки образуют микроколонии в виде ватообраз­ного осадка. При микроскопировании микроколоний в пре­паратах-мазках обнаруживают звездчатые или отдельные округлые кучки с беспорядочно расположенными палочка­ми. При пассаже рост культуры появляется на 10-14-е сутки инкубации в виде влажного налета цвета слоновой кости.
Характерными особенностями наиболее часто встре­чающихся атипичных микобактерий являются скорость ро­ста и температурный режим. Большинство атипичных мико­бактерий растут при 25-45°С и первичный рост наблюдает­ся на 2-10-й день после посева.
В заключение следует отметить, что результат бакте­риологического исследования на туберкулез зависит от мно­гих факторов. Так, большое значение имеет правильность и своевременность отбора патологического материала. Для лабораторного исследования следует отбирать заглоточные, подчелюстные, средостенные, портальные, брыжеечные, в том числе находящиеся в области илеоцекального соедине­ния и подвздошной кишки, надвыменные, предлопаточные и коленной складки лимфатические узлы, а также кусочки органов с подозреваемыми на туберкулез изменениями.
На высеваемость микобактерий оказывает влияние также качество питательных сред. Поэтому для получения более достоверного результата при исследовании патоло­гического материала желательно использовать две разные среды.
25
Следует также подчеркнуть, что от одного животного иногда удается одновременно выделить две разные культу­ры микобактерий. Поэтому при выделении из исследуемого материала культуры быстрорастущих микобактерий бакте­риологическое исследование необходимо продолжать до 3 мес, чтобы не пропустить роста медленнорастущих мико­бактерий, в том числе и микобактерий туберкулеза.
4. БИОЛОГИЧЕСКИЙ МЕТОД ИССЛЕДОВАНИЯ
Биологический метод является наиболее чувствитель­ным при выявлении микобактерий туберкулеза. Диагности­ку туберкулеза проводят на морских свинках и кроликах, а при дифференциации возбудителя туберкулеза птиц – на курах. Морские свинки высокочувствительны к возбудите­лю туберкулеза крупного рогатого скота и человека даже тогда, когда в инъецируемом материале находятся лишь единичные микобактерии. Наиболее часто в лабораторной практике применяют подкожное заражение морских сви­нок, внутривенное – кроликов и кур. Характер процесса, развивающегося в организме лабораторных животных, за­висит не только от вирулентности возбудителя, дозы за­ражения и путей введения возбудителя, но и от резистент­ности макроорганизма. Поэтому для исключения ошибки каждым материалом необходимо заражать не менее двух животных. Для обнаружения в патологическом материале микобактерий туберкулеза используют морских свинок. С этой целью к оставшемуся от посева обработанному пато­логическому материалу (осадку) добавляют 1-2 мл физио­логического раствора, хорошо перемешивают и 1 мл взве­си вводят морским свинкам подкожно в паховую область. После введения морским свинкам материала, содержащего микобактерии бычьего вида, примерно через месяц после заражения на месте введения прощупываются увеличенные лимфатические узлы и иногда образуется язва, не заживаю­щая до конца жизни животного. Морские свинки теряют в
26
массе. Если они не погибают раньше, то находятся в опыте на протяжении 3 мес, после чего их убивают и вскрывают. При развитии специфического процесса в органах морских свинок наблюдают генерализованный туберкулез. В обла­сти паха обнаруживают увеличенные лимфатические узлы с казеозными изменениями различной степени. Селезенка увеличена, плотная, с сероватыми очагами. Печень увели­чена, с туберкулезными очагами. Легкие также увеличены в объеме, в них наблюдаются сероватые прозрачные очажки.
Такое же течение туберкулезного процесса наблюдают у морских свинок и при подкожном заражении их микобак­териями туберкулеза человеческого вида.
Для подтверждения диагноза из пораженных лимфати­ческих узлов делают мазки-отпечатки, которые окрашивают по Цилю-Нильсену. Если на вскрытии в органах морских свинок не обнаруживают характерных для туберкулеза из­менений, материал подвергают культуральному исследова­нию.
Дифференциация различных видов микобактерий с по­мощью лабораторных животных. При дифференциации
микобактерий туберкулеза бычьего и человеческого видов используют морских свинок и кроликов. Двум морским свинкам вводят подкожно в паховую область взвесь изуча­емой культуры в дозе 1 мг/мл физиологического раствора. Двух кроликов заражают в краевую вену уха той же взвесью в дозе 0,1 и 0,01 мг/мл физиологического раствора. У мор­ских свинок возбудители туберкулеза бычьего и человече­ского видов обусловливают развитие тяжелого туберкулез­ного процесса. Большинство животных погибает через 20­90 дней после заражения. У кроликов возбудитель туберку­леза бычьего вида вызывает генерализованный туберкулез, проявляющийся наличием в легких множественных очагов, часто с появлением некроза. Нередко поражаются почки. Печень и селезенка обычно увеличены, но поражения в них встречаются в виде отдельных небольших очагов или вовсе отсутствуют. Кролики гибнут через 2-3 мес после зараже-
27
ния. В отличие от возбудителя туберкулеза бычьего вида, возбудитель туберкулеза человеческого вида при заражении кроликов указанной дозой не вызывает у них прогрессиру­ющего процесса. Наблюдают лишь единичные туберкулез­ные очаги в легких и почках, но они могут и отсутствовать. Через 3 мес всех животных (как кроликов, так и морских свинок), оставшихся в живых, убивают. На основании их вскрытия делают заключение о видовой принадлежности изучаемой культуры микобактерий.
Для дифференциации М. bovis и М. tuberculosis от М. аvium кроме морских свинок используют кроликов и кур. Возбудители туберкулеза бычьего и человеческо­го видов при заражении кур в подкрыльцевую вену в дозе 1 мг/мл физиологического раствора не вызывают заболева­ния. Эти виды возбудителей туберкулеза для них не пато­генны. М. avium при подкожном заражении морских свинок в дозе 1 мг/мл вызывает у них лишь увеличение на месте заражения регионарных лимфатических узлов и быстро за­живающий абсцесс в месте введения культуры. У кроликов и кур, зараженных внутривенно взвесью М. avium в д о з е 1 и 0,01 мг/мл, развивается генерализованный септический процесс, который в большинстве случаев, начиная с третьей недели после заражения, ведет к их гибели. На вскрытии макроскопически видимые специфические для туберкулеза поражения в органах отсутствуют, однако наблюдают уве­личение размеров печени и селезенки. При бактериоскопии мазков, приготовленных из органов, обнаруживают большое количество микобактерий. У кур часть штаммов М. avium обусловливает диссеминированный туберкулезный процесс и гибель птицы в более поздние сроки.
Лабораторные исследования на туберкулез должны быть проведены, как правило, в срок до 3 мес.
Лабораторный диагноз на туберкулез у животных счи­тают установленным, если из исследуемого материала от млекопитающих выделена культура микобактерий тубер­кулеза бычьего и человеческого видов с культуральными и
28
биологическими свойствами, характерными для этих воз­будителей болезни, или получен положительный результат биопробы на туберкулез.
Лабораторный диагноз на туберкулез у птиц считают установленным, если из исследуемого материала выделена культура микобактерий птичьего вида (от попугаев – чело­веческого или птичьего вида) или получен положительный результат биопробы, а также при обнаружении микобакте­рий в мазках из патологического материала при микроско­пическом исследовании.
29
ЧАСТЬ 2. КУЛЬТУРАЛЬНО-
МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ, БИОХИМИЧЕСКИЕ
И БИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ
ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ И ИДЕНТИФИКАЦИИ
МИКОБАКТЕРИЙ ТУБЕРКУЛЁЗА
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Общие сведения о микобактериях, их виды и
классификация
Микобактерии являются группой микроорганизмов, важной как с медицинской, так и с ветеринарной точки зре­ния. Их положение в систематике рода, представляющего переходную ступень между бактериями и актиномицетами, особая устойчивость к кислотам, щелочам и спиртам – факт принадлежности к патогенным видам, среди которых на­ходятся возбудители туберкулеза людей, животных и птиц, усугубляют значение этих микроорганизмов.
По морфологическим, культуральным и биологиче­ским свойствам возбудитель туберкулеза отнесен к порядку
Actinomycetales, семейству Mycobacteriaceae, к роду Myco- bacterium (Bergey, 1974).
Клетки микобактерий – палочковидные, прямые или слегка искривленные, иногда булавовидные. Чаще всего микобактерий не ветвятся, хотя у некоторых представите­лей рода формируются длинные ветвящиеся гифы или даже первичный мицелий (Красильников, 1949; Bergey, 1974; Вейсфейлер, 1975; Portaels et al., 1981). Длина микобакте­рий колеблется от 0,8 до 3-6 мкм, ширина – от 0,2 до 0,5 мкм. Микобактерии имеют аэробный тип дыхания, непод­вижны, не образуют спор, по Граму окрашиваются положи­тельно и часто содержат одно или несколько кислотоустой­чивых зерен.
Важнейшей особенностью этих микроорганизмов яв­ляется высокое содержание в их клетках разнообразных и
30
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]