Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Диагностика туберкулеза животных
.pdf
Наиболее чувствительным из вышеперечисленных методов является биологический, позволяющий обнаружить
туберкулез у исследуемого животного, даже если во взятом
материале (1 мл) имеются лишь единичные экземпляры микобактерий. Однако бывают случаи, когда из-за снижения
вирулентности микобактерий туберкулеза для лабораторных животных под влиянием химиопрепаратов посев из
патологического материала может дать положительный результат при отрицательном исходе биопробы.
Из сказанного можно заключить, что ни один из перечисленных методов не обеспечивает в настоящее время получения достоверного ответа, и только комплексное их применение позволяет поставить правильный диагноз.
Бактериоскопический метод. С целью обнаружения в
исследуемом материале кислото-, спиртоустойчивых микобактерий применяют бактериоскопический метод. Материалом для такого исследования являются пораженные ткани,
мокрота, молоко, фекалии, гной, моча и сперма животных,
а также объекты внешней среды. Патологический материал
для исследования в лабораторию доставляют в свежем виде
в стерильной посуде. В летнее время его можно отправлять
в термосе со льдом. Допускается также консервация проб
30%-м стерильным водным раствором химически чистого
глицерина. Пробы молока берут из всех четвертей вымени
в количестве 150-200 мл. Перед взятием их вымя обмывают
теплой водой с мылом, дезинфицируют 50 %-м этиловым
спиртом, протирают стерильной ватой или свежепроглаженным полотенцем. Первые струи молока выдаивают в отдельную посуду, а последующие – в стерильную бутылку.
Для взятия мокроты полость рта коровы освобождают от
остатков корма, принудительно выпаивая ей бутылку воды.
Затем для вызывания кашля нос и рот животного обматывают куском полотна, сжимая при этом носовые отверстия,
и надавливают на гортань. После кашля на полотне остается немного мокроты, которую собирают в стерильную пробирку и закрывают стерильной резиновой пробкой. Кроме
21

указанного метода, имеются еще и другие способы отбора
мокроты, но они более трудоемки.
Микобактерии обнаруживают в виде тонких прямых
или изогнутых красных палочек. При обнаружении в препаратах-мазках кислотоустойчивых палочек их принадлежность к микобактериям туберкулеза следует подтвердить с
помощью культурального и биологического методов. Положительный результат бактериоскопического исследования
при световой микроскопии не дает возможности достоверно
установить диагноз на туберкулез, поскольку, кроме микобактерий туберкулеза, в препаратах-мазках, окрашенных по
Цилю-Нильсену, в красный цвет окрашиваются атипичные
микобактерии и возбудитель паратуберкулеза. Особенно часто в них встречаются атипичные микобактерии. Последние
отличаются от микобактерий туберкулеза морфологическими и тинкториальными особенностями. Это более толстые,
грубые, короткие (или длинные) незернистые палочки. Однако морфологические признаки микобактерий нестабильные, они изменяются в зависимости от многих факторов.
Поэтому чрезвычайно трудно бактериоскопически дифференцировать атипичные микобактерии от возбудителей туберкулеза. Иногда важно знать, находятся ли в препарате
живые микобактерии или погибшие. Решить такой вопрос
невозможно путем окраски их по Цилю-Нильсену. Для этой
цели предложен цитохимический метод определения жизнеспособности микобактерий. Он заключается в различной
окрашиваемости нативной и деполимеризованной ДНК микробной клетки.
Культуральный метод. В основе этого метода лежит
способность микобактерий к размножению in vitro на питательных средах. В результате размножения отдельных микобактерий на питательной среде образуются видимые простым глазом колонии.
Цель культурального исследования – выделение из патологического материала культуры микобактерий и определение ее вида. Открытие возбудителя туберкулеза Р. Кохом
22

в 1882 г. оказалось возможным в результате разработки питательных сред для выращивания культуры микобактерий
туберкулеза и их окраски. Однако продолжительное время
выделение чистых культур микобактерий из патологического материала удавалось с большим трудом из-за загрязнения
питательных сред быстрорастущей посторонней микрофлорой. Лишь после открытия Левенштейном и Сумиоши
(1924 г.) возможности использования небольших концентраций кислот и щелочей для уничтожения побочной микрофлоры без ущерба для находящихся в патологическом материале микобактерий появилась возможность выделения
чистых культур. При культуральном исследовании большое
значение имеет предпосевная обработка исследуемого материала. Известно, что при обработке патологического материала для уничтожения побочной микрофлоры часть микобактерий погибает. Поэтому следует использовать такие
вещества и в таких концентрациях, которые оказывали бы
минимальное губительное действие на микобактерии и максимальное – на побочную микрофлору. В настоящее время
для обработки патологического материала перед посевом на
питательные среды используют следующие методы: Гона,
Левенштейна, Сумиоши и др.
Особенности роста культур микобактерий туберкулеза на различных средах. Появление первичного роста
микобактерий туберкулеза на различных питательных средах во многом зависит от количества и жизнеспособности
микобактерий, находящихся в исследуемом материале. Для
нормального роста культур микобактерий большое значение имеют наличие достаточной влажности среды, а также
соответствие и постоянство температуры и рН среды. М. bo-
vis в первой генерации растет на плотных яичных средах
скудно. Рост появляется обычно на 30-60-е сутки в виде
мелких круглых, влажных, почти прозрачных колоний цвета
слоновой кости (R-форма). Оптимальная температура роста
37 - 38°С. Глицерин задерживает рост культуры, поэтому на
плотных яичных средах, содержащих глицерин, она растет
23

очень плохо или вообще не растет. На мясопептонном агаре и бульоне, а также на яичных средах при комнатной (1822°С) и повышенной (45°С) температуре культура не растет.
Поскольку М. bovis является микроаэрофилом, то на среде
Сотона с сывороткой и агаром колонии микобактерий растут на глубине 9 - 20 мм от поверхности среды. На жидких
питательных средах они образуют нежную пленку. При пассаже культура растет быстрее (на 15-30-е сутки инкубации).
М. tuberculosis растет в первой генерации медленно.
На плотных яичных средах рост появляется на 20-30-е сутки в виде сухих, неправильной формы колоний, напоминающих бородавки или миниатюрные кочаны цветной капусты
(R-форма). В редких случаях колонии могут быть гладкими
(S-форма). Оптимальная температура роста 37-38°С. Глицерин содействует росту культур. На безглицериновой плотной яичной среде растет скудно или вообще не растет. На
мясопептонном агаре и бульоне, а также при комнатной и
повышенной (45°С) температуре не растет.
М. tuberculosis – аэроб, на среде Сотона с сывороткой
и агаром растет на поверхности или в верхних слоях среды.
На жидких питательных средах рост микобактерий появляется к 15-30-м суткам инкубации в виде мелких крупинок
на дне пробирки в прозрачной среде или в виде пленки на
поверхности жидкости, которая затем утолщается и приобретает морщинистый вид. Достигнув стенки пробирки,
пленка поднимается по стеклу. На картофельной среде Павловского М. tuberculosis дает плотный рост – толстые склад-
чатые слои, а на глицериновой воде – в виде пленки.
Как M. bovis, так и М. tuberculosis при выращивании в
кровяной или полусинтетической средах на предметных стеклах начиная с 7-х суток инкубации образуют характерные
микроколонии в виде кос или жгутов, которые в дальнейшем заметно увеличиваются, образуя сплетения жгутов или
кос. Образование жгутов и кос обусловлено корд-фактором,
способствующим склеиванию микобактерий, и наблюдается почти без исключения только у штаммов М. bovis и М. tu-
berculosis.
24

М. avium растет на плотных яичных средах в первой
генерации начиная с 20-х суток инкубации в виде гладких,
влажных, блестящих колоний (S-форма) цвета слоновой кости. У культур старше 1,5-2 мес появляются кольцеобразные колонии с валикообразными краями. М. аvium растет
как при 37-38°С, так и при 45°С и очень часто – при комнатной температуре (18-22°С). При длительном хранении,
в частности на свету и при комнатной температуре, культуры могут окрашиваться в желтый цвет. Примерно половина штаммов М. avium растет на мясопептонном агаре и
бульоне. В жидких питательных средах штаммы М. avium
на дне пробирки образуют микроколонии в виде ватообразного осадка. При микроскопировании микроколоний в препаратах-мазках обнаруживают звездчатые или отдельные
округлые кучки с беспорядочно расположенными палочками. При пассаже рост культуры появляется на 10-14-е сутки
инкубации в виде влажного налета цвета слоновой кости.
Характерными особенностями наиболее часто встречающихся атипичных микобактерий являются скорость роста и температурный режим. Большинство атипичных микобактерий растут при 25-45°С и первичный рост наблюдается на 2-10-й день после посева.
В заключение следует отметить, что результат бактериологического исследования на туберкулез зависит от многих факторов. Так, большое значение имеет правильность
и своевременность отбора патологического материала. Для
лабораторного исследования следует отбирать заглоточные,
подчелюстные, средостенные, портальные, брыжеечные, в
том числе находящиеся в области илеоцекального соединения и подвздошной кишки, надвыменные, предлопаточные
и коленной складки лимфатические узлы, а также кусочки
органов с подозреваемыми на туберкулез изменениями.
На высеваемость микобактерий оказывает влияние
также качество питательных сред. Поэтому для получения
более достоверного результата при исследовании патологического материала желательно использовать две разные
среды.
25

Следует также подчеркнуть, что от одного животного
иногда удается одновременно выделить две разные культуры микобактерий. Поэтому при выделении из исследуемого
материала культуры быстрорастущих микобактерий бактериологическое исследование необходимо продолжать до 3
мес, чтобы не пропустить роста медленнорастущих микобактерий, в том числе и микобактерий туберкулеза.
4. БИОЛОГИЧЕСКИЙ МЕТОД ИССЛЕДОВАНИЯ
Биологический метод является наиболее чувствительным при выявлении микобактерий туберкулеза. Диагностику туберкулеза проводят на морских свинках и кроликах,
а при дифференциации возбудителя туберкулеза птиц – на
курах. Морские свинки высокочувствительны к возбудителю туберкулеза крупного рогатого скота и человека даже
тогда, когда в инъецируемом материале находятся лишь
единичные микобактерии. Наиболее часто в лабораторной
практике применяют подкожное заражение морских свинок, внутривенное – кроликов и кур. Характер процесса,
развивающегося в организме лабораторных животных, зависит не только от вирулентности возбудителя, дозы заражения и путей введения возбудителя, но и от резистентности макроорганизма. Поэтому для исключения ошибки
каждым материалом необходимо заражать не менее двух
животных. Для обнаружения в патологическом материале
микобактерий туберкулеза используют морских свинок. С
этой целью к оставшемуся от посева обработанному патологическому материалу (осадку) добавляют 1-2 мл физиологического раствора, хорошо перемешивают и 1 мл взвеси вводят морским свинкам подкожно в паховую область.
После введения морским свинкам материала, содержащего
микобактерии бычьего вида, примерно через месяц после
заражения на месте введения прощупываются увеличенные
лимфатические узлы и иногда образуется язва, не заживающая до конца жизни животного. Морские свинки теряют в
26

массе. Если они не погибают раньше, то находятся в опыте
на протяжении 3 мес, после чего их убивают и вскрывают.
При развитии специфического процесса в органах морских
свинок наблюдают генерализованный туберкулез. В области паха обнаруживают увеличенные лимфатические узлы
с казеозными изменениями различной степени. Селезенка
увеличена, плотная, с сероватыми очагами. Печень увеличена, с туберкулезными очагами. Легкие также увеличены в
объеме, в них наблюдаются сероватые прозрачные очажки.
Такое же течение туберкулезного процесса наблюдают
у морских свинок и при подкожном заражении их микобактериями туберкулеза человеческого вида.
Для подтверждения диагноза из пораженных лимфатических узлов делают мазки-отпечатки, которые окрашивают
по Цилю-Нильсену. Если на вскрытии в органах морских
свинок не обнаруживают характерных для туберкулеза изменений, материал подвергают культуральному исследованию.
Дифференциация различных видов микобактерий с помощью лабораторных животных. При дифференциации
микобактерий туберкулеза бычьего и человеческого видов
используют морских свинок и кроликов. Двум морским
свинкам вводят подкожно в паховую область взвесь изучаемой культуры в дозе 1 мг/мл физиологического раствора.
Двух кроликов заражают в краевую вену уха той же взвесью
в дозе 0,1 и 0,01 мг/мл физиологического раствора. У морских свинок возбудители туберкулеза бычьего и человеческого видов обусловливают развитие тяжелого туберкулезного процесса. Большинство животных погибает через 2090 дней после заражения. У кроликов возбудитель туберкулеза бычьего вида вызывает генерализованный туберкулез,
проявляющийся наличием в легких множественных очагов,
часто с появлением некроза. Нередко поражаются почки.
Печень и селезенка обычно увеличены, но поражения в них
встречаются в виде отдельных небольших очагов или вовсе
отсутствуют. Кролики гибнут через 2-3 мес после зараже-
27

ния. В отличие от возбудителя туберкулеза бычьего вида,
возбудитель туберкулеза человеческого вида при заражении
кроликов указанной дозой не вызывает у них прогрессирующего процесса. Наблюдают лишь единичные туберкулезные очаги в легких и почках, но они могут и отсутствовать.
Через 3 мес всех животных (как кроликов, так и морских
свинок), оставшихся в живых, убивают. На основании их
вскрытия делают заключение о видовой принадлежности
изучаемой культуры микобактерий.
Для дифференциации М. bovis и М. tuberculosis от
М. аvium кроме морских свинок используют кроликов
и кур. Возбудители туберкулеза бычьего и человеческого видов при заражении кур в подкрыльцевую вену в дозе
1 мг/мл физиологического раствора не вызывают заболевания. Эти виды возбудителей туберкулеза для них не патогенны. М. avium при подкожном заражении морских свинок
в дозе 1 мг/мл вызывает у них лишь увеличение на месте
заражения регионарных лимфатических узлов и быстро заживающий абсцесс в месте введения культуры. У кроликов
и кур, зараженных внутривенно взвесью М. avium в д о з е
1 и 0,01 мг/мл, развивается генерализованный септический
процесс, который в большинстве случаев, начиная с третьей
недели после заражения, ведет к их гибели. На вскрытии
макроскопически видимые специфические для туберкулеза
поражения в органах отсутствуют, однако наблюдают увеличение размеров печени и селезенки. При бактериоскопии
мазков, приготовленных из органов, обнаруживают большое
количество микобактерий. У кур часть штаммов М. avium
обусловливает диссеминированный туберкулезный процесс
и гибель птицы в более поздние сроки.
Лабораторные исследования на туберкулез должны
быть проведены, как правило, в срок до 3 мес.
Лабораторный диагноз на туберкулез у животных считают установленным, если из исследуемого материала от
млекопитающих выделена культура микобактерий туберкулеза бычьего и человеческого видов с культуральными и
28

биологическими свойствами, характерными для этих возбудителей болезни, или получен положительный результат
биопробы на туберкулез.
Лабораторный диагноз на туберкулез у птиц считают
установленным, если из исследуемого материала выделена
культура микобактерий птичьего вида (от попугаев – человеческого или птичьего вида) или получен положительный
результат биопробы, а также при обнаружении микобактерий в мазках из патологического материала при микроскопическом исследовании.
29

ЧАСТЬ 2. КУЛЬТУРАЛЬНО-
МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ, БИОХИМИЧЕСКИЕ
И БИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ
ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ И ИДЕНТИФИКАЦИИ
МИКОБАКТЕРИЙ ТУБЕРКУЛЁЗА
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Общие сведения о микобактериях, их виды и
классификация
Микобактерии являются группой микроорганизмов,
важной как с медицинской, так и с ветеринарной точки зрения. Их положение в систематике рода, представляющего
переходную ступень между бактериями и актиномицетами,
особая устойчивость к кислотам, щелочам и спиртам – факт
принадлежности к патогенным видам, среди которых находятся возбудители туберкулеза людей, животных и птиц,
усугубляют значение этих микроорганизмов.
По морфологическим, культуральным и биологическим свойствам возбудитель туберкулеза отнесен к порядку
Actinomycetales, семейству Mycobacteriaceae, к роду Myco-
bacterium (Bergey, 1974).
Клетки микобактерий – палочковидные, прямые или
слегка искривленные, иногда булавовидные. Чаще всего
микобактерий не ветвятся, хотя у некоторых представителей рода формируются длинные ветвящиеся гифы или даже
первичный мицелий (Красильников, 1949; Bergey, 1974;
Вейсфейлер, 1975; Portaels et al., 1981). Длина микобактерий колеблется от 0,8 до 3-6 мкм, ширина – от 0,2 до 0,5
мкм. Микобактерии имеют аэробный тип дыхания, неподвижны, не образуют спор, по Граму окрашиваются положительно и часто содержат одно или несколько кислотоустойчивых зерен.
Важнейшей особенностью этих микроорганизмов является высокое содержание в их клетках разнообразных и
30
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]
