Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Промышленная микробиология. Лабораторный практикум

.pdf
Скачиваний:
1
Добавлен:
07.09.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
присутствие в цитозоле АДФ, то есть при избытке в клетке АТФ (и недостатке АДФ) её скорость снижается. Поскольку АТФ, не под- вергающийся метаболизму, в клетке не депонируется, а просто разру­шается, то эта реакция является важным регулятором гликолиза [3].
8. Изомеризация 3-фосфоглицерата в 2-фосфоглицерат
Данная реакция сопровождается внутримолекулярным переносом оставшейся фосфатной группы, и 3-фосфоглицериновая кислота пре­вращается в 2-фосфоглицериновую кислоту (2-фосфоглицерат):
Реакция обратима, протекает в присутствии ионов Mg2+. Кофак­тором фермента является 2,3-бифосфоглицериновая кислота, анало­гично тому, как в фосфоглюкомутазной реакции роль кофактора вы­полняет глюкозо-1,6-дифосфат [3].
9. Дегидратация 2-фосфоглицерата с образованием фосфо-
енолпирувата
Эта реакция катализируется енолазой, при этом 2-фосфоглицерат в результате отщепления молекулы воды переходит в фосфоенолпи­руват (ФЕП), а фосфатная связь в положении 2 становится высокоэр­гической:
Енолаза активируется двухвалентными катионами Mg2+ или Mn2+ и ингибируется фторид-ионом [3].
31
10. Перенос фосфатной группы с фосфоенолпирувата на АДФ
Десятая реакция характеризуется разрывом высокоэргической свя­зи и переносом фосфатного остатка от ФЕП на АДФ (субстратное фос­форилирование). Реакция катализируется ферментом пируваткиназой:
Для действия пируваткиназы необходимы ионы Mg2+, а также одновалентные катионы щелочных металлов (K+ или др.). Внутри клетки реакция является практически необратимой.
Рассмотрев более детально несколько типов брожения, можно убе­диться в том, что соблюдается эквивалентность между количеством молекул НАДН, образованных в ходе гликолиза, и числом молекул НАД+, сформировавшихся в ходе собственно брожения (при условии, что в метаболизме не принимает участие молекулярный кислород). Та­ким образом, в анаэробных условиях использующие бродильный тип метаболизма клетки вынуждены тратить существенную часть двух-, трехуглеродных органических веществ для акцептирования водорода, выводя их затем из клетки. Этот крайне непроизводительный процесс приводит к тому, что в анаэробных условиях клетки перерабатывают огромные количества субстрата, чтобы извлечь нужное для жизне­деятельности количество энергии. Неслучайно у многих факультатив­но анаэробных микроорганизмов выработался механизм подавления процессов брожения в аэробных условиях с переключением на дыха­тельный метаболизм. При дыхании из одной молекулы глюкозы клетка может извлечь максимально 38 молекул АТФ, а при брожении – только 4 (в большинстве случаев всего 2) [3].
32
Спиртовое брожение
Преобладающим продуктом спиртового брожения является эта­нол. Этот тип брожения характерен для определенных видов дрож­жей, бактерий, а также мицелиальных грибов. Известно 3 основных способа спиртового брожения, которые отличаются друг от друга тем, какой из трех катаболических путей расщепления глюкозы (и некоторых других углеводов) реализуется: гликолиз, пентозофос­фатные пути или 2-кето-3-дезокси-6-фосфоглюконатный (КДФГ) путь (путь Энтнера – Дудорова). Наиболее часто, как отмечалось вы­ше, клетки используют гликолиз и его конечный продукт – пируват чаще других служит субстратом спиртового брожения [3].
На рис. 10 представлены схемы двух способов спиртового бро­жения.
Первый способ предполагает катаболизм глюкозы по гликолити­ческому пути (характерен для дрожжей и бактерий Sarcina ventriculi), а второй – по пентозофосфатному (гетероферментативные молочно­кислые бактерии). Соответственно различаются участвующие в этих процессах ферменты и спектр продуктов. Третий способ спиртового брожения, который используют бактерии Zymomonas mobilis, отлича­ется тем, что глюкоза катаболизируется по пути Энтнера – Дудорова. Образующийся пируват подвергается декарбоксилированию, как и в первом случае, и ступенчато восстанавливается в этанол. Часть пирувата восстанавливается в молочную кислоту.
На рис. 10 продемонстрировано, что количество затраченных в ходе гликолиза и пентозофосфатного пути молекул НАД+ (НАДФ+) строго соответствует количеству регенерированных в процессе спир­тового брожения молекул НАД+ (НАДФ+). При этом реакции суб­стратного фосфорилирования, приводящие к синтезу АТФ, имеют место только в катаболических путях до образования пирувата. В ре­акциях собственно спиртового брожения, связанных с преобразова­нием пирувата в этанол или лактат, запасание энергии не происходит.
33
O
OH
OH
OH
OH
CH2OH
CH
3
OH
O
O
CH
3
H
O
CH
3
OH
Глюкоза
2 ATF
2 ADF
Пируват
4 ATF
4 ADF
2
2
2
2 СO
2
2 NAD
+
2 NADH
H OH
O
H
O P
O
OH
OH
O
OH
OH
OH
OH
CH2OH
CH2OH
O
OH
OH
O P
O
OH
OH
CH
3
O
O
P
O
OH
OH
CH
3
H
O
OHCH
3
CO
2
CH
3
OH
O
OH
CH
3
OH
O
O
Глицеральдегид­ 3-фосфат
Ксилулозо­5-фосфат
Ацетилфосфат
Ацетальдегид
Этанол
NADP
+
NADP
+
NADPH
NADPH
2 ATF
2 ADF
Лактат
Пируват
NAD
+
NAD
+
NADH
NADH
2 ATF
2 ADF
ционируют клетки. Кроме того, у некоторых микроорганизмов суще­ствуют отдельные отклонения от приведенных выше классических схем спиртового брожения. В результате спектр продуктов брожения может сильно различаться и включать, кроме этанола и лактата, при-
Рис. 10. Схемы двух путей спиртового брожения с расщеплением
глюкозы по гликолитическому (через пируват) пути
и по пентозофосфатному (через ксилулозо-5-фосфат) пути
Ход брожения очень сильно зависит от условий, в которых функ-
34
меси: глицерин, ацетальдегид, другие альдегиды, эфиры, кетоны, спирты, в том числе высшие органические кислоты и др. [3].
Вопросы к коллоквиуму
1. Дать характеристику процесса брожения. Его роль в энергетическом
катаболизме?
2. Какие виды брожения известны? Дать их краткую характеристику.
3. Описать процесс гликолиза глюкозы. Дать характеристику отдельных
стадий гликолиза.
4. По каким еще процессам может происходить катаболизм глюкозы?
5. Описать заключительные стадии спиртового брожения.
35
Лабораторная работа № 2
БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКОЕ ПОЛУЧЕНИЕ
РАСТВОРИТЕЛЕЙ.
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ СИНТЕЗ ЭТАНОЛА
Цель: познакомиться с микробиологическим процессом получе-
ния этанола из зернового сырья.
ПРАКТИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ
Материалы и оборудование: лабораторная мельница; сито диа-
метром 1 мм; стакан для замеса; весы; воронка Бюхнера; колба Бун­зена; матерчатый фильтр; колба объемом 500 мл; гидрозатвор; набор спиртометров; перегонная установка (испарительная колба на 500 мл, насадка, термометр, нисходящий холодильник, алонж, приемный ци­линдр); раствор гидроксида натрия концентрацией 1 моль/л; индика­торная бумага.
Ход работы
1. Приготовление осахаренного сусла
1.1. Приготовление помола зерна
Для приготовления помола зерна необходимой степени измель­чения проводится неоднократное измельчение зерна с последующим рассевом на ситах разного диаметра. Помол зерна производят на ла­бораторной мельнице так, чтобы все размолотое зерно (помол) при просеивании прошло через сито с отверстиями диаметром 1 мм.
1.2. Приготовление замеса
Приготовление замеса заключается в смешивании измельченного сырья с водой в определенном соотношении, которое называется гид­ромодуль замеса. В данной лабораторной работе готовится высоко-
36
концентрированный замес с гидромодулем 1:2,5. В 250 мл воды тем­пературой 45–50 °С вносится 20 г размолотого ячменного солода и 80 г помола зерна. Замес тщательно перемешивается в течение 30 мин при температуре 45–52 °С – для расщепления крахмала; 30 мин при температуре 62–63 °С – для образования мальтозы; 30 мин при температуре 70–72 °С – для осахаривания крахмала; 30 мин при тем­пературе 76–78 °С – для доосахаривания крахмала. Полученный затор фильтруют через матерчатый фильтр на воронке Бюхнера и промы­вают водой до общего объема 250 мл.
1.3. Приготовление дрожжевой разводки
Для сбраживания осахаренного сусла используют чистую куль­туру дрожжей, сухие спиртовые дрожжи или прессованные хлебопе­карные. Используемые дрожжи должны обладать высокой бродиль­ной способностью, содержать не более 3 % мертвых клеток и не да­вать нарастания кислотности.
Прессованные хлебопекарные дрожжи необходимо развести в 30 мл осахаренного сусла температурой 30 °С из расчета 2–2,5 г дрожжей на 250 мл сусла. Через 20 мин дрожжевую суспензию вне­сти в осахаренное сусло.
Сухие спиртовые дрожжи необходимо реактивировать следую­щим образом (в расчете на 1000 мл осахаренного сусла). Следует взять: 20 мл воды температурой 30 °С; 1 г сахара; 0,5 г сухих дрож­жей. Приготовленный раствор поставить на качалку на 30 мин и выдержать при температуре 30 °С в течение 1 часа. Приготовлен­ную дрожжевую разводку внести в осахаренное сусло.
2. Брожение
Сусло с внесенной дрожжевой разводкой переливается в колбу на 500 мл, закрывают гидрозатвором и ставят в термостат. Брожение проводится при температуре 30 °С в течение 48–72 ч.
37
2.1. Определение концентрации спирта
Полученную после окончания брожения бражку фильтруют через матерчатый фильтр, помещают в колбу и нейтрализуют раствором гидроксида натрия до рН 7 (по индикаторной бумаге). Нейтрализо­ванную бражку заливают в испарительную колбу, собирают установ­ку для перегонки. Приемную колбу помещают в баню со смесью льда и воды. Перегонку ведут до температуры 99–100 °С. Собранный от­гон переливают в мерный цилиндр, опускают спиртометр (ареометр, проградуированный в % об.) и по шкале в % об. устанавливают кре­пость полученного отгона. Этиловый спирт, полученный в результате перегонки бражки, вместе с сопутствующими летучими примесями (эфирами, альдегидами, кислотами и высшими спиртами) называется спирт-сырец. В результате очистки этилового спирта-сырца от сопут­ствующих летучих примесей с помощью ректификации получают спирт этиловый ректификованный.
38
ТЕОРЕТИЧЕСКИЙ МАТЕРИАЛ
Выделение эргостерина и убихинона
Получение технологической смазки
Выделение жирных кислот
Выделение фосфолипидов
Биошрот
Биошрот
Получение белковых гидролизатов, концентратов и изоля тов
Культивирование микроорганизмов
Отделение биомассы от культуральной жидкости
Экстракция биожира
Получение фракции ДНК и РНК
Гидролиз микробных ДНК и РНК
Выделение рибонуклуозидов
Получение гуанозина, гуанина и D-рибозы
Панкреатический гидролизат РНК
Получение уридина
Получение аденозина, аденина и инозина
Получение цитидина
Получение аденозинфосфатов
К КОЛЛОКВИУМУ № 3
Рис. 11. Схема комплексной переработки биомассы микроорганизмов
39
Приведенная схема комплексной переработки биомассы промыш­ленных микроорганизмов (рис. 11) в равной мере применимы как в от­ношении дрожжей, так и бактерий. Однако клетки бактерий, в отличие от дрожжей, содержат то же количество нуклеиновых кислот – 7–12 %.
Если из них удалить нуклеиновые кислоты, то представляется возможным сократить число технологических операций, связанных с выделением белковых веществ, и получать в процессе комплексной переработки указанную гамму продуктов на основе микробных липи­дов и нуклеиновых кислот и белковый концентрат с содержанием белковых веществ не ниже 80 %. Кроме того, бактерии отличаются от дрожжей и соотношением внутриклеточных РНК и ДНК. Это по­зволяет наряду с полирибонуклеотидами получать и полидезоксири­бонуклеотиды, а из них, в первую очередь, тимидин как полупродукт для синтеза противовирусных лекарственных средств. Следует иметь в виду, что ДНК бактерий, как правило, связана в комплекс не только с белками, но и с липидами. Поэтому схема комплексной переработки биомассы бактерий должна предусматривать первоначальное обез­жиривание клеток, что в дальнейшем облегчает извлечение из них полидезокси-рибонуклеотидов [5].
Комплексная переработка биомассы микроорганизмов с получе­нием различной природы и назначения препаратов в совместном про­изводстве кормового биошрота не отличается высокой рента­бельностью. Производить липидные препараты необходимо в от­дельном специально оборудованном пожаро- и взрывобезопасном помещении (цехе) при наличии соответствующего оборудования и подготовленного персонала, так как процесс выделения липидов связан с использованием легкокипящих растворителей.
Иной подход предусматривает переработку биомассы промыш­ленных микроорганизмов с выделением водорастворимых компонен­тов микробных клеток, каковыми являются белки и нуклеиновые ки­слоты. При этом вариант комплексной переработки микробного сы­рья предполагает не только выделение и очистку данных соединений, но и получение на их основе более дорогостоящих продуктов хими-
40
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]