книги из ГПНТБ / Ченцов, Ю. С. Ультраструктура клеточного ядра
.pdfI. Структура хромосом |
31 |
отдавать предпочтение |
альдегидной фиксации, а не фиксации |
0s04.
Значительные изменения структуры элементарных хромосом ных фибрилл происходят при действии заведомо хелатных соеди нений, таких как ЭДТА или цианиды, как это впервые показано Рисом (Ris, Chandler, 1963).
Действительно, при добавлении к растворам ДНП ЭДТА в концентрации 1 -10 —2 М можно видеть, что большую часть препа рата составляют тонкие фибриллы (100 А), которые кажутся не только вдвое тоньше исходных, но и гораздо прямее их (табл. 3). Иногда видно, что отдельные фибриллы толщиной 100 А идут на некоторых расстояниях параллельно друг другу, иногда они располагаются попарно. Однако большей частью фибриллы лежат независимо, переплетаясь в различных направлениях. Мы не смо гли наблюдать расщепление одной фибриллы толщиной 250 А на две спирально скрученные субъединицы, как указывал Рис. Пар ное расположение фибрилл толщиной 100 А, на наш взгляд, яв ляется случайным и поэтому не может служить доказательством многонитчатости основной фибриллы, имеющей толщину около
200 А.
Подобное же изменение толщины фибрилл можно вызвать другим агентом, связывающим двувалентные катионы и давно используемым для разрыхления ядерных структур и хромосом,— цианистым калием. Добавление к растворам ДНП KCN в концент рации 0,02—0,002 М приводит к уменьшению диаметра фибрилл хроматина до 100 А. Те же картины можно получить и в целых клетках корешков растений при инкубации их в растворах с хе латными агентами (ЭДТА или KCN).
Таким образом, два различных вещества, ЭДТА и KCN, обла дающие свойством связывать двувалентные катионы, вызывают сходные морфологические изменения в ультраструктуре элемен тарных хромосомных фибрилл! Это может служить подтвержде нием очень важной роли двувалентных катионов в поддержании общей структуры хроматина (Steffensen, 1960) и одновременно должно настораживать при анализе тех работ, где ЭДТА исполь зуется при выделении ДНП.
Резкие структурные изменения происходят с фибриллами ДНП при повышении ионной силы растворов.
Известно, что обработка ядер или хроматина высокими кон центрациями NaCl (1—2 М) приводит к растворению хроматина в результате его диссоциации на белок и ДНК (Pollister, Mirsky, 1946). Постепенное повышение концентрации соли в растворе приводит к последовательной диссоциации нуклеогистонового комплекса, что в свою очередь вызывает уменьшение толщины ис ходных фибрилл ДНП (Георгиев и др., 1967) и увеличение мат ричной активности хроматина (Боннер, 1967).
32 |
Интерфазное ядро |
Как свидетельствуют данные |
электронномикроскопического |
изучения препаратов ДНП, нри постепенном повышении концен трации NaCl в растворе первые изменения в толщине и конфигура ции фибрилл начинают обнаруживаться в растворах 0,4 М NaCl и особенно отчетливо в 0,6 М растворах. При этом фибриллы ДНП утоньшаются, их диаметр колеблется от 100 до 40—50 А. Меняет ся их пространственная композиция. Если в исходных раство рах с низкой ионной силой фибриллы ДНП имели извитой харак тер, то теперь они выглядят сильно вытянутыми, идущими непре рывно на большом расстоянии (табл. 3). Иногда на их поверхно сти видны мелкие гранулы, придающие фибриллам четковидный характер.
Дальнейшее повышение концентрации соли в растворах NaCl (0,8—1,5 М) приводит к преобладанию в препаратах нитей тол щиной 30—40 А, также располагающихся главным образом пря молинейно.
Очевидно, в данном случае наблюдается структурный переход от плотных сильно изогнутых и перевитых фибрилл с толщиной 200 А к фибриллам меньшего диаметра, вытянутым и более рас прямленным. Этот переход связан с потерей белка.
Было замечено (Сенченков, Манамшьян, 1970), что при соле вой экстракции фибрилл ДНП, нанесенных на подложку, их дис социация происходит не полностью. Под электронным микроско пом видно, что в таком препарате, обработанном 2 М раствором NaCl, содержатся участки практически не измененных фибрилл толщиной около 200 А одновременно с тонкими фибриллами. Это наводило на мысль, что при обработке солевыми растворами не весь препарат подвергается диссоциации, а только, по-видимому, та часть, которая не прикреплена к формваровой подложке и до ступна для воздействия NaCl. В таких случаях видны практиче ски все переходы от фибрилл толщиной 200 А до тонких фибрилл толщиной 20—40 А.
Короткая экстракция солевыми растворами путем быстрого прикасания препарата ДНП к поверхности 2 М раствора NaCl с последующей быстрой фиксацией в формалине дала новые инте ресные результаты при использовании негативного контрастиро вания препаратов водными растворами уранилацетата или фос форновольфрамовой кислоты.
На некоторых препаратах видно разворачивание толстых (200 А) фибрилл (табл. 4). При этом в их составе обнаруживается одна фибрилла толщиной около 100 А, уложенная в виде крутой спирали.
В экспериментах по воздействию растворами высокой ионной силы на ДНП особенно видно изменение толщины фибрилл в про цессе экстракции и изменение их общей формы. Действительно, если в исходных растворах фибриллы имели изогнутый, извитой
I. Структура хромосом |
33 |
вид, то после экстракции они сильно вытянуты и большей частью прямые. Можно предположить, что при удалении части белка из нуклеогистона увеличивается общая длина фибрилл.
Чтобы проверить это предположение, был поставлен следую щий опыт (Сенченков и др., 1970; Сенченков, Кадыков, 1970). Полученный из тимуса препарат ДНП подвергали дополнитель ной гомогенизации в измельчителе ткани для того, чтобы полу чить короткие отрезки фибрилл. Затем этот же препарат подвер гали воздействию солевых растворов необходимой концентрации путем замещения исходной среды на требуемую при диализе. Сравнение отрезков фибрилл в обоих случаях могло дать ответ на вопрос, изменяется ли их длина, т. е. происходит ли разворачива ние первоначально компактно уложенного тяжа нуклеогистона. Таким образом были получены препараты для электронной микро скопии одного и того же образца ДНП в низкой ионной силе, в 0,6 М растворе NaCl и в 2,0 М растворе NaCl. Препараты оттеня лись палладием (см. рис. 4). В электронном микроскопе проводи лась съемка не менее двухсот фрагментов фибрилл в каждом слу чае. Необходимо отметить, что в исходных препаратах ДНП в растворах низкой ионной силы измерить длину фибрилл в сгуст ках или комках хроматина не представляется возможным из-за большой вероятной ошибки, связанной с перекрыванием фибрилл. Поэтому во всех трех препаратах сравнивались только наиболее мелкие отрезки.
Полученные цифровые значения длины фрагментов использо вались для построения гистограмм частоты встречаемости отрез ков с различной длиной. На рис. 1 приведены кривые, основанные на трех повторностях аналогичных опытов, которые показывают увеличение числа длинных отрезков при экстракции гистонов растворами NaCl. На кривых вцдно, что в исходном гомогенизи рованном препарате Днп встречается большое количество отрезков длиной около 500—600 А. После экстракции гистонов в 0,6 М или 2,0 М растворе NaCl средняя длина отрезков фибрилл из того же источника составляет 3000 А, т. е. наблюдается увели чение длины фибрилл приблизительно в 5—6 раз. Параллельно этому, как показано выше, происходит также уменьшение диа метра фибрилл, т. е. они становятся тоньше. Приходится полагать, что этот порядок увеличения длины отображает лишь общее яв ление, а именно деспирализацию и вытягивание фибрилл. Гово рить о точном порядке укладки или спирализации фибрилл в единицы толщиной 200 А пока что не приходится, потому что в данных опытах использовали для анализа лишь самые короткие фрагменты.
Все эти наблюдения приводят к выводу о структурной пластич ности фибрилл ДНП, способных к динамическим переходам в за висимости от физико-химических условий среды. Снижение ион-2
2 Ю. С. Ч ен ц ов , В. Ю. П о л як о в
34 |
Интерфазное ядро |
ной силы растворов, не меняя конформации нуклеогистоновых фибрилл, ведет к их расталкиванию, видимо, за счет одноименных отрицательных зарядов на их поверхности, что позволяет обо собляться отдельным фрагментам или частицам ДНП в составе выделенных препаратов. Это приводит к получению «растворов» ДНП в деионизированной воде. Повышение концентрации одно валентных катионов до 0,05—0,15 М вызывает агрегацию отдель ных фибрилл за счет экранировки отрицательных зарядов гисто нов и выпадение ДНП в осадок. К такой же агрегации приводит и добавление низких концентраций двувалентных катионов
Р и с . |
1. И зм ен ен и е дли н ы |
о т |
резков |
ф ибрилл Д Н П п ри уда |
|
лен и и |
белков растворам и |
N aC l |
|
(Сенченков |
|
и |
д р ., |
1970) |
|
|
1 — к о н тр о л ь , |
Д Н П |
в р аств о р е |
|||
|
н и зк о й |
и он н ой си лы ; |
||||
|
2 — Д Н П |
в |
|
0,6 М |
раств оре |
|
О I ?. 3 « 5. 6 7 |
N aC l; |
|
|
|
|
|
3 — Д Н П |
в |
2 М р аств о р е N aCl |
||||
|
Длина ДНП11 ■tO3'А
Mg2+ и Са2+ (0,01 М), которые могут благодаря сшивкам отдель ных групп гистонов также вызывать структуризацию хроматина
и выпадение его в осадок.
Определенный вклад в процесс структуризации хроматиновых фибрилл могут вносить слабые взаимодействия типа водородных связей и гидрофобные взаимодействия между белковыми компо нентами ДНП как на поверхности одной, так и между разными макромолекулами. Так, по данным Георгиева и др. (1970), до бавление к препаратам ДНП мочевины, разрушающей водород ные связи и влияющей на гидрофобные взаимодействия, вызы вает растворение препаратов ДНП без потери белка. Это растворе ние, по-видимому, связано со структурными изменениями внутри исходных фибрилл ДНП, которые переходят в тонкие фибриллы диаметром около 40 А. С другой стороны, удаление из препаратов ДНП двувалентных катионов приводит также к уменьшению ди аметра фибрилл и облегчает процесс перехода ДНП в растворимое состояние. При этом удаление Mg 2+ и Са2+- может приводить к разрыву сшивок между отдельными молекулами или между от дельными участками одной и той же молекулы. Даже частичная
I. Структура хромосом |
35 |
диссоциация белка, главным образом лизиновых гистонов, при водит к солюбилизации препаратов ДНП, сопровождающейся уменьшением диаметра фибрилл. Дальнейшее удаление гистонов приводит к все большему уменьшению толщины хроматиновых фибрилл, вплоть до 25 А (толщина молекул ДНК) при полном удалении гистонов. Схематически такое поведение элементарных хроматиновых элементов, входящих в состав нуклеогистонов, представлено на схеме (рис. 2).
Все эти представления закономерно подводят нас к вопросу о способах укладки ДНК в составе хроматиновых фибрилл. Как уже показано, по этому вопросу существует большая литература, базирующаяся, главным образом, на рассуждениях и теоретиче ских расчетах. Тем не менее мысль о сверхскручивании ДНК в составе хроматиновых фибрилл появилась давно (Bopp-Hassen- kamp, 1959). По-видимому, идея о нескольких порядках сверхспирализации, сверхскручивания в укладке ДНК в структуре фиб риллы ДНП правильна. На самом деле увеличение длины отрез ков ДНП после удаления из них гистонов трудно объяснить иначе, как результатом распрямления изогнутых при спирализации структур, содержащих ДНК. В пользу этого говорят и рас четы длины молекул ДНК по сравнению с длиной хромосом. Кро ме того, с помощью электронной микроскопии показано существо вание нескольких уровней организации элементарных фибрилл, что выражается в существовании нескольких классов толщины фибрилл ДНП. Это нативные фибриллы в составе хромосом и ядер толщиной около 200—250 А; это фибриллы толщиной около 100 А, возникающие при действии хелатов или солей, экстрагиру ющих часть гистонов. При частичной экстракции гистонов в рас кручивающихся фибриллах ДНП толщиной 200 А видна спираль ная укладка более тонких фибрилл.
Второй порядок сверхскручивания или укладки в составе фи брилл толщиной 100 А также может быть определен электронномикроскопически. Так, Рис (Ris, 1967), обрабатывая такие фи бриллы, полученные из ядерных эритроцитов в присутствии хела та (цитрат натрия), проназой после полного удаления белков видел нить ДНК, которая образовывала многочисленные зигзаго подобные изгибы и короткие петли. По мнению этого автора, такая изогнутая молекула ДНК в сочетании с белком дает фибриллу со средней толщиной 100 А.
Брам и Рис (Bram, Ris, 1971) на основе электронной микро скопии и изучения ДНП методом рассеивания рентгеновских лу чей под малыми углами приходят к заключению, что фибрилла ДНП (в препарате, полученном в присутствии ЭДТА) содержит одну нативную молекулу ДНК, которая нерегулярно сверхспирализована или изогнута со средним шагом в 45 А, образуя более тол стую фибриллу.
2*
36 |
Интерфазное ядро |
Р и с . |
2 . С труктурны е |
переходы |
ф ибрилл Д |
Н П |
в |
разли чн ы х услови ях |
среды |
|
а — Н 20 ; |
6 — 0,05— 0,3 |
М N aC l; |
в — ЭДТА , |
K C N ; |
0,5 М N aC l, OsO,; |
г — 0,8— 1,5 М |
||
N aC l; |
3 — 2 М N aC l |
|
|
|
|
|
|
|
Р и с . |
3. |
С уперспираль |
Д Н П (R ish a rd s , P a rd o n , |
1970) |
|
В пользу представления о сверхслирализации ДНК в составе фибрилл ДНП, выделенных по Зюби и Доти, говорят данные рентгеноструктурного анализа (Pardon, Wilkins, 1972; Pardon, 1970), показавшего, что шаг вторичной спирали имеет размер в 120 А и диаметр около 100 А (рис. 3).
Удаление значительной части белка, по-видимому, приводит к полному разворачиванию хроматиновой фибриллы, толщина кото рой может колебаться от 40 до 60 А.
Таким образом, в составе фибрилл ДНП можно предполагать существование двух уровней сверхскручивания молекулы ДНК. Степень естественного раскручивания фибрилл ДНП может ото бражать способность их к участию в синтезе РНК. Следовательно, в метаболически активных ядрах должны быть видны фибриллы с промежуточной степенью структуризации, которые можно было
I. Структура хромосом |
37 |
бы считать активными. Так, Голл (Gall, 1966) высказал предполо жение, что более тонкие фибриллы, встречающиеся в интерфазных ядрах, могут представлять собой функционирующие участки хро мосом. Дю Про (Du Praw, 1968) также считает, что тонкие фиб риллы типа А (толщиной 35—60 А) представляют собой первый порядок сверхскручивания ДНК в активных участках хроматина, а фибриллы типа В (200 А) — второй порядок сверхскручивания (.спиральная спираль) в гетерохроматине. Гриффит (Griffit, 1970) полагает, что фибриллы толщиной около 30 А могут быть актив ными участками генома. К сожалению, прямых доказательств этих возможностей в настоящее время нет.
Не вызывает сомнений, что ДНК, находясь в сверхскрученном состоянии в составе фибрилл ДНП, может претерпевать дополни тельную укладку уже в составе хромосомы. Интересно, что и в этой дополнительной сверхструктуризации большую роль играют также гистоны, богатые лизином. Так, удаление лизинового ги стона приводит к диссоциации конденсированного хроматина в ядрах тимуса (Littau et al., 1965), добавление лизинового гистона к депротеинизированным хромосомам восстанавливает их общую морфологию (Mirsky et al., 1968).
Организация хроматина в интерфазном ядре
В предыдущих разделах, давая характеристику хроматина, мы рас сматривали только общие свойства хроматина, его общую хими ческую и структурную организацию, как бы отвлекаясь от одного из важных вопросов — как же хроматин организован в интактном пнтерфазном ядре. Другими словами, мы избегали говорить о том, есть ли какая-либо специфика в пространственном расположении хроматина, в его структуре, в его изменениях в жизненном цикле клетки, т. е. существуют ли какие-то структурные принципы в ор ганизации хроматина в ядре. Более коротко эти вопросы можно свести к одному: как организована хромосома во время ее фун кционирования. При постановке этого основного вопроса на па мять приходит огромное число исследований, посвященных политенным хромосомам. Мы не будем здесь касаться этой темы и отсылаем читателей к прекрасной монографии И. И. Кикнадзе «Функциональная организация хромосом» (1972), где рассматри ваются все известные на сегодня свойства политенных хромосом, которые можно принять за модель интерфазной хромосомы. Ни в коем случае не умаляя значения структуры и функции политен ных хромосом, более того, используя данные об их свойствах, мы все же интересуемся вопросом о том, как организована функцио нирующая хромосома в обычных соматических ядрах. К сожале нию, сведений об организации хромосом в интерфазных ядрах очень мало и они неоднозначны.
38 |
Интерфазное ядро |
Хромосомы сохраняют свою индивидуальность в интерфазе
К. Белар (1934), формулируя теорию индивидуальности хромосом, одним из основателей которой был Бовери (Boveri, 1909), считал, что хромосомы, вошедшие в состав дочернего ядра в телофазе, сохраняются в нем хотя бы в значительно измененном виде в ка честве самостоятельных индивидуумов и во время интерфазы, и выяляются снова как морфологические единицы в следующей профазе. Таким образом, хромосомы сохраняют свою структурную и генетическую индивидуальность в течение всего жизненного цикла. В пользу структурного постоянства хромосомных элемен тов в интерфазных ядрах говорит целый ряд прямых наблюдений.
Так, Бовери (Boveri, 1909) показал, что во время дробления бластомеров аскариды при переходе от телофазы к интерфазе на месте длинного плеча хромосомы появляются лопасти ядра, в ко торых в последующей профазе вновь возникает то же плечо хро мосомы. Эти наблюдения в дальнейшем были подкреплены мно гочисленными наблюдениями соответствия в расположении хро мосом, скрывающихся от наблюдателя при переходе от телофазы к интерфазе и появляющихся вновь в том же ядре в ближайшей профазе (Белар, 1934). При этом повторяется общий порядок (поляризапия) в расположении хромосом: теломерные участки хромосом располагаются на одном полюсе ядра, центромерные — на ттпугом, как в телофазе.
После деконденсации хромосом в интерфазе в ядре обычно уже не удается выявить хромосомы как структурные индивиду альности. Но за последние годы найдены объекты и приемы, по зволяющие следить за хромосомами или их специфическими участ ками и в интерфазе.
Морфологическая сохранность хромосом в интерфазном ядре хорошо прослеживается на примере половых хромосом. Б первую очеретть это относится к Х-хромосоме некоторых млекопитающих, сохраняющейся у самок в течение всей интерфазы в конденсиро ванном состоянии (тельце Барра) (Вагг, 1966) (см. табл. 5). В интерфазном ядре можно наблюдать с помощью флюоресцент ных методов гетерохроматизированную Y-хромосому (Pearson et al., 1970). Положение половых хромосом в интерфазном ядре изучалось также методом авторадиографии. В ряде случаев ДНК половых хромосом синтезируется в конце S-периода клеточного цикла. С использованием меченого предшественника ДНК в тот момент, когда его включение идет только в Y-хромосому, показано, что в спепматогониях кузнечика (Taylor, 1964) и крысы (Bianchi. Bianchi, 1969) метка располагается над ядром только локаль но па всех стадиях развития сперматогоний. Радноаутографическй
Структура хромосом |
39 |
можно выявить гетерохроматические |
участки акроцентрических |
хромосом человека, участвующих в образовании ядрышка (Ohno et al., 1961).
Все эти данные говорят о том, что в интерфазном ядре хромо сомы сохраняют свою морфологическую индивидуальность хотя бы потому, что они занимают определенные зоны и объем интер фазного ядра.
В пользу этого также говорят наблюдения Онищенко и др. (1972), показавших, что если клетки культуры ткани китайского хомячка или корешков проростков Vicia faba предварительно ин тенсивно пометить Н3-тимидином, а потом дать клеткам много кратно разделиться в среде, не содержащей радиоактивного пред шественника, то параллельно с общим падением радиоактивности ядер за счет синтеза немеченой ДНК изменялась локализация метки в ядре. Если сразу после контакта с Н3-тимидином метка равномерно заполняла все ядро, то после нескольких последующих делений зерна серебра располагаются над ядром в виде локаль ных групп, число которых тем меньше, чем больше прошло кле точных делений (см.табл. 5).
Наряду с такого рода наблюдениями существует масса косвен ных данных, говорящих не только о том. что в интерфазном ядре отдельные хромосомы сохраняются как отдельные единицы, хотя и в сильно деконденсированном состоянии, но и о том, что в интерфазном ядре расположение хромосом не хаотично, а строго упо рядоченно. Так, М. С. Навашин (1947) показал повторение поряд ка в расположении хромосом в метафазных пластинках в ряду клеточных делений у Crepis capillaris. Существует много наблюде ний о неслучайном расположении хромосом в метафазных плас тинках (см. обзор Будякова и Золотарева, 1971), о неслучайном образовании дицентрических хромосом при облучении интерфазпых ядер (Бочков и др., 1970) и т. п.
Нам представляется, что даже это краткое перечисление основ ных фактов позволяет прийти к общему выводу о том, что интер фазное ядро представляет собой строго организованную сложную структуру, а не просто бесструктурный гомогенный пузырек, как его можно видеть при наблюдениях in vivo.
Данные классической цитологии о сходстве общего характера в расположении хромосом в телофазном и профазном ядрах дают основание предположить, что и в интерфазе, несмотря на почти пол ную деконденсацпю хромосом, несмотря на их «растворение», сле дует в ядре ожидать порядка в их ориентации, сходного с тело фазным расположением хромосом. Действительно, в ряде случаев Удается в интерфазном ядре наблюдать отдельные специфические участки хромосом, располагающиеся довольно закономерно. Так Данжар (Dangeard, 1937), классифицируя разные типы ядер рас тительных клеток, описал так называемые «ядра с колпачками».
40 Йнтерфазное ядро
Для этих ядер характерно, что отдельные участки конденсирован ного хроматина, хромоцентры, собраны на одном из полюсов на периферии ядра. Данжар, исходя из совпадения числа хромосом и хромоцентров, высказал предположение о центромерном проис хождении последних. Фокс (Fox, 1966) показал, что при включе нии Н3-тимидина в центромерные участки хромосом у Schistoсегса grearia метка над интерфазным ядром занимает небольшую ограниченную площадь. Интересны наблюдения Фассел (Fussell, 1972), которая с помощью радиоавтографии показала, что у кле ток проростков корешков А. сера одна из зон интерфазного ядра занята, по всей вероятности, хромоцентрами центромерного проис хождения, тогда как на противоположной части ядра расположе ны многочисленные (12—14) теломерные участки хромосом. Эти данные также говорят о неслучайном расположении хромосом в интерфазном ядре, порядок расположения которых повторяет те лофазную ориентацию хромосом после деления ядра. Не лише но интереса предположение А. Н. Мосолова (1972) об универ сальности центромерного закрепления хромосом в интерфазных ядрах.
Полярность в расположении хромоцентров характерна для тело мерных районов у некоторых объектов. Так, Павулсоне и Иордан ский (1971) показали ауторадиографически, что все хромоцентры интерфазных ядер клеток меристемы Allium fistulosum представ ляют собой не что иное, как теломерные участки. Подробный ана лиз этих структур с помощью электронного микроскона на сериях ультратонких срезов (Онищенко, Ченцов, 1971) показал, что все такие теломерные хромоцентры (кроме одного, связанного с ядрыш ком) располагаются на периферии интерфазных ядер в тесном кон такте с ядерной оболочкой. Такой характер расположения теломер ных хромоцентров остается неизменным, начиная от телофазы и кончая профазой (табл. 6). Однако их локализация при этом не сколько меняется. В поздней телофазе все периферические хромо центры сосредоточены на теломерном полюсе ядра, и эта зона занимает около половины поверхности ядра. В двух дочерних яд рах на этой стадии обнаруживается зеркальное расположение хро моцентров. В клетках на стадии G2 также сохраняется такая по лярность в расположении теломерных хромоцентров, хотя свободная от них зона становится значительно меньше. Можно предполагать, что эти свободные от хромоцентров зоны должны представлять со бой области интерфазного ядра, занятые центромерными участка ми. Необходимо отметить, что в зоне теломер, помимо четко выра женных хромоцентров, всегда встречается большое количество хроматинового материала, связанного с ядерной оболочкой, так же как и в зоне, свободной от хромоцентров.
Если пространственная локализация хромосомных элементов в интерфазном ядре уж достаточно доказана, то пока совершенно