Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Metody_obschey_bakteriologii.doc
Скачиваний:
1052
Добавлен:
14.02.2015
Размер:
1.5 Mб
Скачать

Внутримышечный способ заражения

Выбирают участок тела с наиболее развитым мышечным слоем. У кроликов, морских свинок, крыс и мышей таким местом является на­ружная верхняя треть бедра задней лапы. Захватывают I и II пальцами левой руки толстую мышечную складку и вводят иглу почти под прямым углом в глубь мышц. Объем жидкости, допустимый для внутримышечного введения, со­ставляет для кроликов 8 мл, для морских свинок—5 мл, для крыс — 3 мл, для мышей — 0,5 мл.

Внутрибрюшинный способ заражения

Помощник держит животное вниз головой. В этом положении кишечник смеща­ется в сторону диафрагмы, что в значительной мере умень­шает возможность его повреждения в момент прокола. У жи­вотных (за исключением мышей) в нижней трети живота, не­сколько отступя от средней линии, делают скальпелем или остроконечными ножницами надсечку кожи длиной 2—3 мм и через нее вводят притупленную иглу, держа шприц перпендикулярно к брюшной стенке. Преодолевая сопротивление, очень осторожно, буравящими движениями иглу продвигают вглубь. Чувство «провала», исчезновение ощущения сопротивления на пути говорят о проникновении иглы в брюшную по­лость. После этого иглу переводят в вертикальное положение и вводят содержащийся в шприце материал в полость брю­шины. Внутрибрюшинно можно вводить до 30 мл жидкости кроликам, до 10 мл—морским свинкам, до 5 мл—крысам, до 2 мл— мышам.

Внутривенное заражение кроликов

Кроликов заражают в краевую вену уха. Вдоль наружного края уха выщипывают шерсть, затем это место слегка пощелкивают кончиками пальцев, чтобы вызвать гиперемию сосудов, и протирают ва­той, смоченной в 70% спирте или ксилолом. Но многократное применение ксилола не рекомендуется ввиду сильного раздражения кожи. После обработки кожи ксилолом его необходимо снять с поверхности. После явного набухания вены под ухо подводят II палец левой руки. Прокол вены следует делать ближе к верхушке уха, так как при частых уколах возможна облитерация сосуда в этом месте, но проксимальный участок вены остается неповрежденным. Чтобы удостове­риться, правильно ли введена игла, вводят сначала неболь­шое количество материала. При нахождении иглы в полости вены материал вводится свободно, в противном же случае жидкость из шприца вытекает с трудом, а на ухе в месте введения образуется вздутие. Если игла не попала в вену, ее вынимают и вводят повторно в другое место, ближе к осно­ванию уха. По окончании введения нижний участок вены слегка придавливают, а к месту укола прикладывают кусо­чек стерильной ваты, смоченной спиртом или спиртовым рас­твором йода, после чего из вены извлекают иглу. Внутривен­но кроликам можно вводить до 20 мл жидкости.

Внутривенное заражение крыс и мышей

Крыс и мышей заражают в боковую вену хвоста. Непосредственно перед введением материала хвост животного, чтобы вызвать гипе­ремию сосудов, погружают в сосуд с водой, подогретой до 50°С, смазывают ксилолом или толуолом. После того как со­суды заметно набухают, корень хвоста сдавливают пальцами. Для введения материала лучше всего пользоваться туберку­линовыми иглами, очень тонкими и короткими, с косым сре­зом. При введении иглы в вену шприц держат под острым углом, почти параллельно оси хвоста. Иглу повертывают от­верстием наружу. Корень хвоста освобождают от сдавливания. Как и в предыдущем случае, нахождение иглы в вене определяют по легкости введения материала и отсутствию заметного уплотнения в месте, где находится игла. Взрослым белым крысам допускается вводить до 6 мл жидкости, мы­шам—до 0,5 мл.

Соседние файлы в предмете Микробиология