- •7.2. Гормональная система растений
- •7.2.1. Общие принципы гормональной регуляции
- •7.2.1.1. Регуляторные молекулы растений
- •7.2.1.2. Рецепция и усиление сигнала
- •7.2.1.3. Фосфатидилинозитольная система вторичных мессенджеров
- •7.2.1.4. Взаимодействие сигналов
- •7.2.2. Ауксины — гормоны апекса побега
- •7.2.2.1. История открытия ауксинов
- •7.2.2.3. Транспорт ауксинов
- •7.2.2.2. Биосинтез и деградация ауксинов
- •7.2.2.4. Физиологические эффекты ауксинов
- •7.2.2.5. Ауксины и неоднородность внешней среды
- •7.2.2.6. Ауксин и плоды
- •7.2.2.7. Ауксин как гербицид
- •7.2.2.8. Гравитропизм
- •7.2.3. Цитокинины — гормоны корневого апекса
- •7.2.3.1. История открытия
- •7.2.3.2. Биосинтез и инактивация цитокининов
- •7.2.3.3. Эффекты цитокининов от апекса корня до апекса побега
- •7.2.4. Взаимодействие ауксинов и цитокининов
- •7.2.4.1. Физиологическое действие ауксинов и цитокининов в культуре in vitro
- •7.2.4.2. Баланс между ауксинами и цитокининами в интактном растении
- •7.2.4.3. Цитокинины и паразиты растений
- •7.2.5. Гиббереллины — гормоны листа
- •7.2.5.1. История открытия
- •7.2.5.2. Биосинтез гиббереллинов
- •7.2.5.3. Основные физиологические эффекты гиббереллинов
- •7.2.5.4. Гиббереллины и прорастание зерна
- •7.2.5.5. Гиббереллин и проявление пола у растений
- •7.2.5.6. Гиббереллин и цветение растений
- •7.2.6. Абсцизовая кислота — сигнал водного стресса
- •7.2.6.1. Открытие абсцизовой кислоты
- •7.2.6.2. Биосинтез абсцизовой кислоты
- •7.2.6.3. Передача абк-сигнала
- •7.2.6.5. Регуляция покоя семян абк
- •7.2.6.6. Синдром дефицита абк
- •7.2.6.7. Абк и форма листьев
- •7.2.7. Этилен — сигнал механического стресса
- •7.2.7.1. Открытие физиологической роли этилена
- •7.2.7.2. Биосинтез этилена
- •7.2.7.3. Рецепция и передача сигнала
- •7.2.7.4. Этилен как гормон механического стресса
- •7.2.7.5. Этилен и прикосновение
- •7.2.7.6. Этилен и заживление ран
- •7.2.7.7. Регуляция листопада в умеренных широтах
- •7.2.7.8. Формирование и созревание плодов
- •7.2.7.9. Биотический стресс
- •7.2.7.10. Этилен и цветение ананасов
- •7.2.8. Другие гормональные вещества растений
- •7.2.8.1. Брассиностероиды
- •7.2.8.2. Жасминовая кислота
- •7.2.8.3. Салициловая кислота
- •7.2.8.4. Олигосахарины
- •7.2.8.5. Короткие пептиды
7.2.8.4. Олигосахарины
В регуляции физиологических процессов у растений участвуют короткие углеводы — олигосахариды. В 1980-х гг. обнаружено, что продукты деградации клеточной стенки Phytophthora вызывают специфичную иммунную реакцию. Даже небольших перестроек углеводного скелета было достаточно, чтобы этот эффект исчез, т. е. большинство олигосахаридов не обладает активностью. Олигосахариды, вызывающие физиологический эффект, называют олигосахаринами. (Каждый олигосахарин — олигосахарид, но не каждый олигосахарид — олигосахарин!)
Они образуются как продукты расщепления полисахаридов клеточной стенки. Расщепление вызывают как собственные ферменты, так и ферменты грибов/бактерий. В состав олигосахаринов могут входить ксилоза, рамноза, галактоза и остатки уроновых кислот. Из гликолипидов, входящих в состав мембран, образуются олигосахарины, содержащие инозитол (см. подразд. 7.2.1.3). Короткие фрагменты хитина, образующиеся под действием растительных хитиназ, также относят к олигосахаринам, хотя они происходят из чужеродного объекта.
Обнаружено, что олигосахариды суспензионной культуры клена стимулируют деление клеток в культуре in vitro. Это говорит о том, что в экстрактах есть и олигосахарины.
В физиологической регуляции созревания плодов также участвуют олигосахарины. Ферменты, разрушающие гликаны клеточной стенки, высвобождают активные олигосахарины, стимулирующие дальнейшее созревание. Важную роль играют пектолитические ферменты и образующиеся фрагменты пектина. Специфические олигосахарины являются сигналами при узнавании симбионтов в системе Rhizobium—растение—хозяин. Без обмена олигосахаринами клубеньки у бобовых не образуются.
7.2.8.5. Короткие пептиды
Сигнальные короткие пептиды растений, как правило, синтезируются в виде крупных белков-предшественников, а затем в результате протеолиза происходит их «созревание». Короткие пептиды выходят в апопласт и действуют на другие клетки.
Один из первых пептидов, выделенный из томатов, отвечал за системный ответ на механическое повреждение и внедрение патогена (индукция ингибиторов протеиназ и фитоалексинов). В результате иммунный ответ наблюдается не только в месте повреждения, но и во всем растении (системная устойчивость). Этот короткий пептид, состоящий из 18 аминокислот, назван системи-ном. Предшественник системина содержит 200 аминокислотных остатков. Биосинтез системина контролирует жасмонат. У томатов найден белок-рецептор (мол. масса 160 кДа), связывающийся с системином. Системин специфичен для томатов и картофеля, но не вызывает системного ответа у табака (из табака был выделен другой системин, не похожий на томатный).
Из суспензионной культуры аспарагуса (Asparagus) был выделен еще более короткий пептид (всего 4 — 5 аминокислот), в состав которого входил сульфатированный тирозин, названный фитосульфокином. Он стимулирует деление клеток in vitro, повышает митотический индекс. Фитосульфокин обнаруживается в местах активного деления клеток, способствуя органогенезу (образованию листьев, боковых корней и т.д.).
Рис. 7.25. Контроль размера меристемы коротким пептидом CLV3 у Arabidopsis thaliana
(крестоцветные):
А — в покоящемся центре активен ген WUSHEL, что приводит к появлению сигнала, стимулирующего деления клеток; Б — делящиеся клетки центральной зоны синтезируют и выделяют в апопласт короткий пептид-продукт гена CLAVATA 3; В — в покоящемся центре короткий пептид CLAVATA 3 взаимодействует с мембранным рецептором CLAVATA 1, что приводит к инактивации экспрессии гена WUSHEL; Г — в центральную зону не поступает сигнал о делении клеток, пептида CLAVATA 3 становится меньше. Создаются условия для повышения экспрессии гена WUSHEL
По-видимому, фитосульфокин — универсальный регуляторный пептид — он вызывает деление клеток у риса и других не родственных растений.
Другие короткие пептиды регулируют специфичные функции. Так, пептид CLAVATA 3 (состоит из 78 аминокислот), синтезируется в верхних слоях центральной зоны меристемы (делящихся клетках). Он регулирует размер апикальной меристемы побега у Arabidopsis. Пептид CLAVATA 3 связывается с белком-рецептором CLAVATA 1, причем рецептор сосредоточен в покоящемся центре меристемы (рис. 7.25). Короткий пептид CLAVATA 3 служит сигналом о количестве делящихся клеток в центральной зоне меристемы: высокая концентрация «говорит» покоящемуся центру о том, что делящихся клеток много, а низкая — что их мало. Покоящийся центр посылает обратно сигнальные молекулы, стимулирующие (или ингибирующие) клеточные деления.
Интенсивное взаимодействие короткого пептида CLAVATA 3 с CLAVATA 1 означает, что число делящихся клеток чрезмерно, и из покоящегося центра направляется сигнал, уменьшающий число делящихся клеток. Концентрация CLAVATA 3 закономерно уменьшается, после чего покоящийся центр вновь стимулирует деление клеток в центральной зоне. Механизм обратной связи с участием CLAVATA 3 и его рецептора CLAVATA 1 поддерживает объем меристемы на определенном уровне. При мутации, как в гене рецептора сlv1, так и в гене короткого пептида civ3, меристема становится очень крупной (иногда в 1000 раз больше, чем у дикого типа), а стебель плоским (фасциированным).
Короткий пептид SCR (53 — 57 аминокислот) выделяется прорастающим пыльцевым зерном у капусты. Для каждой линии капусты характерен свой вариант SCR-пептида. Рецепторы к SCR-пептиду находятся в тканях рыльца, и при узнавании развитие пыльцевой трубки останавливается. Таким способом капуста избегает самоопыления.
