- •Глава 10
- •10.1. Структурные основы сокращения
- •10.1.1. Тонкая структура миофиламентов
- •10.2. Теория скольжения нитей
- •10.2.1. Кривая зависимости «длина–сила»
- •10.3. Функция поперечных мостиков и развитие силы
- •10.3.1. Химия активности поперечных мостиков
- •10.3.2. Активность поперечных мостиков и мышечное сокращение
- •10.4. Роль кальция в процессе сокращения
- •10.4.1. Активация поперечных мостиков
- •10.4.2. Инактивация поперечных мостиков и расслабление мышцы
- •10.5. Электромеханическое сопряжение
- •10.5.1. Мембранный потенциал и сокращение
- •10.5.2. Саркотубулярная система
- •10.5.3. Саркоплазматический ретикулум
- •10.5.4. Высвобождение кальция саркоплазматическим ретикулумом
- •10.5.5. Краткое описание процессов сокращения и расслабления
- •10.6. Механические свойства сокращающейся мышцы
- •10.6.1. Длина свойства саркомера и сократительные
- •10.6.2. Латентный период
- •10.6.3. Зависимость «сила–скорость»
- •10.6.4. Последовательные эластические компоненты
- •10.6.5. Активное состояние
- •10.6.6. Одиночное и тетаническое сокращение
- •10.6.7. Энергетика сокращения
- •10.7. Метаболические подтипы поперечнополосатых мышц
- •10.8. Нервная регуляция мышечного сокращения
- •10.8.1. Нейромоторная организация позвоночных
- •10.8.2. Нервно–мышечная организация членистоногих
- •10.8.3. Асинхронные летательные мышцы насекомых
- •10.9. Сердечная мышца
- •10.10. Гладкая мышца
- •10.11. Скелетно–мышечная механика
- •10.12. Резюме
10.4. Роль кальция в процессе сокращения
10.4.1. Активация поперечных мостиков
Данные о роли ионов кальция в сократительной активности мышц накапливались довольно медленно. Кальций активен в саркоплазме при такой низкой (10–6 M и менее) концентрации, что до открытия кальцийхелатных реагентов, например ЭДТА (этилендиаминтетраацетат) и ЭГТА, ее невозможно было поддерживать в экспериментальных растворах. Дело в том, что даже в бидистиллированной воде концентрация ионов кальция превышает 10–6 M. Самые первые доказательства физиологической роли Са2+ представлены в работах Рингера и Бакстона (S. Ringer, D.W. Buxton, 1887) в конце XIX в. Авторы обнаружили, что изолированное сердце лягушки прекращает сокращения при отсутствии кальция в омывающем растворе. Так появились раствор Рингера и другие физиологические солевые растворы.
Камада и Киносита (Т. Kamada, H. Kinosita, 1943), а затем Хейлбрун и Вержинский (L.V. Нeilbrunn, F. G. Wierczinski, 1947) проверяли участие Ca2+ в регуляции мышечного сокращения путем введения разных катионов внутрь мышечных волокон. Из всех изученных ионов только кальций вызывал сокращение при концентрациях, соизмеримых с концентрациями Са2+ обычно наблюдаемыми в живой ткани. Впоследствии было обнаружено, что скелетная мышца не сокращается в ответ на деполяризацию мембраны, если исчерпаны запасы кальция во внутренних депо, а подвергнутые предварительной экстракции препараты волокон скелетной мышцы (дополнение 10–1) не сокращаются при добавлении АТР, если отсутствует Са2+.
Количественная зависимость между концентрацией свободного Са2+ в саркоплазме и силой мышечного сокращения была установлена сравнительно недавно. Для проведения анализа удаляли поверхностную мембрану и оголенные миофибриллы обрабатывали растворами кальция различной концентрации. Как видно из рис. 10–11, А, сила возрастает сигмоидально от нуля при концентрации кальция около 10–8 М до максимального значения при концентрации кальция около 5∙10–6М. Данная зависимость между силой и концентрацией Ca2+ аналогична зависимости между АТРазной активностью (скоростью гидролиза АТР) гомогенизированных миофибрилл и концентрацией Ca2+ (рис. 10–11 Б,). Такое совпадение характеристик наводило на мысль, что Са2+ служит кофактором АТРазной активности миозина. Но оказалось, что это не так.
|
Рис. 10.11. А. Зависимость между концентрацией кальция и силой, развиваемой в глицеринизированной мышце. (Hellam, Podolsky, 1967.) Б. АТРазная активность суспензии изолированных миофибрилл в зависимости от концентрации кальция. (Bendall, 1969.)
|
Каким же тогда образом Са2+ индуцирует сокращение? АТРазная активность чистого раствора миозина довольно низкая, но сильно возрастает при добавлении очищенного актина. Это указывает на то, что ATРазный центр миозина активируется при связывании миозина с актином. В интактной мышце активация АТРазного центра миозина осуществляется при присоединении поперечного мостика к активному филаменту. Эксперименты, проведенные в лаборатории Эбаши (S. Ebashi), показали, что тропонин и тропомиозин, лежащие вдоль актиновой спирали (рис. 10–12), препятствуют присоединению миозиновых поперечных мостиков к актину. Тропонин – единственный белок в актиновых и миозиновых филаментах поперечнополосатых мышц позвоночных животных, имеющий высокое химическое сродство к Са2+. Каждый тропониновый комплекс связывает четыре иона кальция. Тропониновые комплексы расположены вдоль актинов ого филамента через каждые 40 нм, прикрепляясь одновременно к актиновому филаменту и молекуле тропомиозина. В состоянии покоя положение тропомиозина конформационно препятствует соединению головок миозина с актиновым филаментом. Связывая Са2+, тропонин претерпевает конформационные изменения, в результате чего молекула тропомиозина смещается и освобождает дорогу миозиновым поперечным мостикам для прикрепления к актиновым центрам (рис. 10–12, Б). Следовательно, присоединение Cа2+ к тропонину устраняет постоянно существующее препятствие для взаимодействия поперечных мостиков с актином. Из результатов экспериментов, подобных тем, которые показаны на рис. 10–11 и 10–13, сделан вывод, что ингибирование присоединения мостиков снимается при концентрации свободного Cа2+ свыше 10–7 М.
Сказанное выше объясняет роль Са2+ в регуляции актин–миозинового взаимодействия в скелетных и сердечной мышце позвоночных животных. В большинстве других мышц роль кальция иная. Есть еще по крайней мере два механизма кальцийзависимой регуляции актин–миозинового взаимодействия. В поперечнополосатых мышцах большинства беспозвоночных животных кальций инициирует сокращение, присоединяясь к легким полипептидным цепям миозина в головках поперечных мостиков. В гладких мышцах позвоночных животных (см. разд. 10.10) и в немышечном актомиозине сокращение контролируется кальцийзависимым фосфорилированием миозиновой головки.
|
Рис.10.12. Регуляторные белки мышцы. А. Расположение тропонина и тропомиозина в актиновом филаменте, впервые постулированное Ebashi etal. (1969). Б. Более современная модель, показывающая механизм действия в поперечном разрезе. Слева – состояние покоя при низкой концентрации Ca2+. Тропониновый комплекс, включающий Т–, С– и I–единицу, присоединен к актину и тропомиозину таким образом, что последний белок создает стерическое препятствие для прикрепления головок поперечных мостиков к миозинсвязывающим центрам актина. Справа показано увеличение концентрации саркоплазматического Са2+, приводящее к связыванию его с тропонином С. В результате этого изменяется химическое сродство в субъединице и происходит смещение молекулы тропомиозина в сторону от миозинсвязывающего центра. Соединение поперечного мостика может существовать до тех пор, пока Са2+ не будет удален из тропонинового комплекса. В. Трехмерное представление тропонинового комплекса во взаимосвязи с тропомиозином (ТМ). Две части Т–единицы тропонина обозначены Т1 и Т2. (Ebashi et al., I980.)
|