
- •Фотосинтез Вопросы:
- •Фотосинтез, его значение и физико-химическая сущность
- •История изучения фотосинтеза
- •Лист как орган фотосинтеза
- •Хлоропласты, их состав, строение, свойства и функции
- •Пигменты хлоропластов
- •Хлорофиллы
- •Каратиноиды
- •Световая фаза фотосинтеза
- •Организация и функционирование пигментных систем
- •Циклическое и нециклическое фотосинтетическое фосфорилирование
- •Темновая фаза фотосинтеза
- •С3-путь фотосинтеза (цикл кальвина)
- •С4-путь фотосинтеза (цикл хетча и слэка)
- •Фотосинтез по типу толстянковых (сам-метаболизм)
- •Фотодыхание и метаболизм гликолевой кислоты
- •Интенсивность фотосинтеза и методы его определения
- •Эндогенные механизмы регуляции фотосинтеза
- •Зависимость фотосинтеза от факторов внешней среды
- •Интенсивности света
- •Спектрального состава света
- •Концентрации со2 и о2.
- •Температуры
- •Водного режима
- •Света. Фотодыхание
- •Минерального питания
- •Болезни растений
- •Взаимодействие факторов при фотосинтезе
- •Посевы и насаждения как фотосинтезирующие системы
- •Индекс листовой поверхности (илп)
- •Фотосинтетический потенциал
- •Чистая продуктивность фотосинтеза
- •Радиационный режим и структура посева
- •Параметры оптимального посева
- •Пути оптимизации фотосинтетической деятельности посевов
- •Фотосинтез и урожай
- •Светокультура сельскохозяйственных растений
- •Источники облучения
- •Влияние искусственного облучения на анатомо-физиологическую характеристику растений
Интенсивность фотосинтеза и методы его определения
Под интенсивностью фотосинтеза (ИФ) понимают количество СО2, усваиваемое единицей листовок поверхности за единицу времени. ИФ измеряется преимущественно в мг СО2/(дм2ч) или в мкмоль СО2/(м2 с). Реже для характеристики активности фотосинтеза используют количество О2, выделяемое единицей листовой поверхности за единицу времени.
Наиболее распространенным методом определения ИФ как в лабораторных, так и в полевых условиях является газометрический. Измерение поглощения СО2 имеет ряд важных преимуществ (в сравнении с определением накопления сухой массы):
данный метод применим в любое время,
не приводит к уничтожению растения,
позволяет оценить прибавку сухои массы за короткий интервал времени (за минуты, часы или дни),
дает возможность изучать каждый лист в отдельности и соответственно оценить вклад каждого яруса в фотосинтетическую деятельность растения, отделяя прибыль углерода за счет фотосинтеза от потерь за счет дыхания.
При использовании этого метода лист, растения или группы растений помещпомещаются в прозрачную камеру. ИФ таких объектов определяют с помощью инфракрасных газоанализаторов по содержанипю СО2 в токе воздуха. Это самый производительный и точный метод учета поглощения СО2. Недавно появивились портативные ИК-газоанализаторы на СО2, используемые при работе в поле.
Обмен СО2 больших участков, например поля, можно измерить с помощью микрометеорологического метода. При этом ИФ посевов определяют с помощью параллельных измерений концентрации СО2 и движения воздуха над посевом.
Радиометрический метод предполагает введение метки по 14С в виде СО2. С этой целью лист (целое растение) экспонируется с 14СО2 в течение короткого (менее 60 с), но точно изморенного, периода времени. Затем лист срезают, фиксируют в жидком азоте и определяют содержание в нем 14С, которое прямо пропорционально ИФ. Метод широко используется для полевого измерения.
Недостатки метода: во-первых, он приводит к гибели растения, во-вторых, может систематически завышать ИФ, особенно у С3-растений, обладающих в сравнении с С4-растениями значительным фотодыханием.
Полярографическое определение О2 при помощи электрода, прикладываемого к листовой высечке, является более дешевым методом, альтернативным газометрическому. Он может дать дополнительную информацию, например, о том, что отношение между выделившимся О2 и поглощенной СО2 не всегда равно 1. Электрод для листовой высечки можно использовать для измерения максимальных скоростей фотосинтеза в условиях насыщения СО2. Этим же способом удобно проводить измерение скорости фотосинтеза в зависимости от освещенности.
Фотосинтетическую активность изолированных хлоропластов также наиболее целесообразно измерять при помощи кислородного электрода (дает возможность определять в суспензии содержание О2 порядка 0,01 мкмоль).
Эндогенные механизмы регуляции фотосинтеза
Проводимость листа. Проводимость листа для молекул СО2, тесно коррелирует с ИФ. Различают устьичную и остаточную проводимость. Последняя представлена главным образом проводимостью мезофилла. Проводимость - это величина, обратная сопротивлению (измеряется в см/сек).
Устьичная проводимость (УП), или проводимость в газовой фазе, у растений колеблется от 1 см/с, когда устьица широко открыты, до 0,02 см/с при закрытых устьицах.
Проводимость мезофилла (МП), или проводимость молекул СО2 в жидкой фазе, при их прохождении через клеточные стенки, мембраны, цитозоль и двойную мембрану хлоропласта к местам карбоксилирования в стреме определяется прежде всего активностью карбоксилирующих ферментов фотосинтеза. МП имеют значения 0,1-0,5 см/с у С3-растений и 0,5 см/с у С4-растений. Более высокая МП у С4-видов объясняется главным образом незначительным фотодыханием. УП у С4-видов, напротив, ниже, чем у С3-видов, что обусловлено как меньшим числом устьиц на единицу площади листьев, так и меньшими размерами устьичных щелей. Однако суммарная проводимость листа для молекул СО2 в целом выше для С4 -растений, что определяет преимущество последних по ИФ.
Фотохимическое лимитирование фотосинтеза. Скорость фотосинтетического метаболизма часто ограничивается поступлением энергии в форме АТФ и НАДФН, образующихся в мембранах хлоропластов за счет энергии поглощенного света. Считается, что звено, ограничивающее скорость транспорта электронов, находится между ФС1 и ФС2. При этом существует корреляция между транспортом электронов и количеством цитохромов *- и *_-типов, пластохинона и сопрягающего фактора, связанного с мембранами.
Биохимическое лимитирование фотосинтеза. Реакции, катализируемые РДФ-карбоксилазой/оксигеназой, наиболее вероятное звено лимитирования скорости ассимиляции СО2. Скорость реакции карбоксилирования является функцией количества фермента, присутствующего в хлоропласте; концентрации субстратов (СО2, О2 и РДФ) вблизи фермента; степени активации фермента. Содержание карбоксилазы в листьях С3-растений 2,0-3,5 г/м_, что достаточно для обеспечения довольно высокой скорости фотосинтеза. Белок РДФ-карбоксилазы представляет большую часть растворимого белка листьев у С3-видов, чем у С4-видов.
Карбоксилирующий фермент, как правило, содержится в листьях в избыточном количестве и поэтому вряд ли ограничивает ассимиляцию СО2. Скорость ферментативной реакции скорее всего лимитируется снабжением субстратом РДФ, особенно если недостаточна скорость поступления энергии из световой фазы. Несмотря на то что у С4-видов первым ферментом карбоксилирования является ФЭП-карбоксилаза, а не РДФ-карбоксилаза, как у С3-, так и у С4 -видов существует очень тесная корреляция между ИФ и активностью РДФ-карбоксилазы. Однако энергия, сэкономленная за счет подавления фотодыхания, примерно равна энергии, затраченной на концентрирование СО2. Поэтому основным преимуществом С4-цикла можно считать то, что РДФ-карбоксилаза у С4 -видов функционирует в условиях насыщающих концентраций СО.
Гормональный эффект. Из донорного листа экспортируются также синтезируемые в хлоропластах вещества гормональной природы, в том числе абсцизовая кислота (АБК). При торможении экспорта ассимилятов, например, путем удаления бобов у сои, устьичная проводимость и ИФ резко снижаются. Одновременно содержание АБК в листе в сравнении с контролем возрастает в 10 раз. Это приводило к закрыванию устьиц и торможению фотосинтеза.
Частичное удаление корней, где синтезируется цитокинин, транспортируемый по ксилеме водным током, также подавляло фотосинтез листьев. Избыточного накопления углеводов в листьях при этом не установлено, что указывает на важную роль фитогормонов в эндогенной регуляции фотосинтеза.
Донорно-акцепторные отношения. ИФ листа (донор) сильно зависит от запроса на ассимиляты со стороны потребляющих органов (акцептор). Так, удаление клубней с растений картофеля или плодоэлементов у томата подавляло фотосинтез, а увеличение спроса на ассимиляты или усиление «силы» акцептора, напротив, стимулировало ассимиляцию СО2 листьями. Например, частичная дефолиация молодых растений яблони или кукурузы резко увеличила ИФ оставшихся листьев для того, чтобы удовлетворить запрос акцепторов на ассимиляты. Удаление колоса у пшеницы снизило ИФ флагового листа на 40 %, а последующее затенение нижних листьев практически восстановило ИФ на прежнем уровне.
Изменение ИФ в онтогенезе растения также можно объяснить изменением запроса на ассимиляты. Высокая ИФ отмечена у листьев обеспечивающих прежде всего рост и развитие плодов.
Накопление углеводов. Повышенная концентрация сахарозы или крахмала в листе рассматривалась ранее как один из важных факторов, обусловливающих снижение ИФ. Однако в последние годы появились данные, которые не позволяют однозначно интерпретировать влияние высокой концентрации углеводов на фотосинтез листа.
Возраст листа (растения). ИФ, как правило, быстро возрастает в период интенсивного роста листовой пластинки, достигая наибольших значений у завершившего рост листа. Затем начинается постепенное снижение ИФ, которое обусловлено параллельным уменьшением проводимости устьиц и мезофилла для молекул СО2. Одна из причин снижения МП является уменьшение содержания хлорофилла в результате деградации хлоропластов по мере старения листа (рис.). Скорость транспорта электронов по ЭТЦ и активность ключевого фермента фотосинтеза РДФК снижались. Следовательно, уменьшение фотосинтеза в ходе старения листа нельзя связывать со снижением скорости реакций ни световой, ни темповой фазы в отдельности.
ИФ целого растения или посева достигает максимума в фазе цветения-бутонизации и затем постепенно снижается, достигая наименьших значений перед созреванием репродуктивного органа (рис.). Подобный колоколообразный ход ИФ объясняется формированием определенного индекса листовой поверхности (ИЛП) в онтогенезе растения в посеве. Вслед за прекращением роста листьев начинается снижение ИФ посева в результате уменьшения площади листьев и увеличения вклада дыхания в суммарный СО2 обмен посева по мере формирования репродуктивного органа.