- •Введение.
- •Историческая справка.
- •Жгутики прокариот Расположение жгутиков.
- •Строение бактериального жгутика и базального тела. Жгутик.
- •Базальное тело
- •Синтез жгутика.
- •Механизм движения.
- •Механизм торможения.
- •Направление движения бактерий.
- •Методы определения жгутиков.
- •Микроскопические методы.
- •Бактериологический метод.
- •Заключение.
- •Литература
- •Приложение
Методы определения жгутиков.
Окраска жгутиков очень сложный процесс, в лабораториях не используется. Диагностирование жгутиков производят по косвенному признаку – движение в жидкой среде. Для этого используется два метода: микроскопический и бактериологический.
Микроскопические методы.
Серебрение по Морозову
Жгутики пропитывают азотнокислым серебром с последующим его восстановлением, что способствует искусственному увеличению их поперечного сечения, в результате чего жгутики удается обнаружить под микроскопом при увеличении в 1000-1200 раз
Препарат «раздавленная капля».
На середину предметного стекла наносят петлей или пипеткой каплю исследуемого материала, ее осторожно накрывают покровным стеклом, чтобы в жидкости не образовалось пузырьков воздуха. Капля должна заполнять все пространство между стеклами л не выступать за края покровного стекла. Иногда, если препарат нужно рассматривать длительное время, края покровного стекла предварительно смазывают вазелином. Препарат можно окрасить, осторожно добавив к нему петлей разведенный краситель.
Готовые препараты рассматривают в сухих и иммерсионных системах. Для получения наибольшего контраста применяют темнопольную или фазово-контрастную микроскопию. Так как при этом чаще всего необходима двойная иммерсия (объектива и конденсора), толщина препарата не должна превышать 1,1—1,3 мм. Неокрашенные организмы выглядят под микроскопом обведенными светлой или темной (в зависимости от фокусировки) полоской (линия Векке), возникающей на границе преломления среды и тела.
Препарат «висячая капля».
В препарате «висячая капля» взвесь живых микробных клеток рассматривают в жидкой питательной среде или в физиологическом растворе (0,85% раствор NaCl). При этом не следует готовить слишком густую взвесь микробов, т.к. это затруднит наблюдение за отдельными клетками.
Микропрепарат готовится следующим образом: на чистое обезжиренное покровное стеклышко наносится небольшая капля взвеси микробов. Края стеклышка смазываются вазелином (или каким либо другим подобным веществом) и после этого на него накладывается предметное стекло с углублением в середине таким образом, чтобы капля взвеси не касалась краев и дна лунки. Затем предметное стекло быстро переворачивается так, чтобы капля свободно свисала в лунке. Капля оказывается герметически заключенной во влажной камере. Если препарат не удастся закрыть герметически, то капля физиологического раствора начнет постепенно подсыхать. В высыхающей жидкости возникают токи, способствующие пассивному передвижению микроорганизмов, что может быть ошибочно оценено как произвольное движение микробной клетки.
Наблюдение за микробами во влажной герметически закрытой камере можно осуществлять длительное время – несколько часов, используя при этом фазово-контрастный микроскоп или микроскоп с темным полем зрения.
Бактериологический метод.
Посев уколом в столбик полужидкого агара.
При этом методе посева делают укол в столбик полужидкого агара, инкубируют и наблюдают результат: подвижные бактерии растут по всей питательной среде в пробирке, среда мутнеет, неподвижные – только по уколу в виде стержня.
Также можно исследовать жгутики при электронной микроскопии – на большом увеличении. Именно с помощью этого метода были сделаны заключения о строении жгутиков.