Добавил:

Sekretar kiopkiopkiop18@yandex.ru t.me/Prokururor I Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.

Вуз:

Ростовский Государственный Медицинский Университет

Предмет:

Медицина общая

Файл:

Книга_49_библиотеки_им_акад_М_И_Перельмана

.pdf

Скачиваний:

Добавлен:

10.10.2026

Размер:

9 Мб

Скачать

☆

<<< < Предыдущая 1 2 34 / 124 5 6 7 8 9 10 11 12 > Следующая >>>





Африканская чума свиней (Pestis Africana suum, болезнь Монтгомери,

восточно- африканская лихорадка) –

особо опасная высококонтагиозная

болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, обширными геморра-

гиями ицианозом кожи, тяжелыми дистрофическими инекротически-

ми поражениями клеток ретикулоэндотелиальной системы, внутренних

органов ивысокой летальностью [4; 9].

Возбудитель – ДНК-содержащий кубической формы вирус семейства

Asfarviridae размером 130–225 нм. Вирус культивируют спроявлением

цитопатического действия вкультуре клеток костного мозга, лейкоци-

тов, вперевиваемых культурах. Ворганизме вирус размножается всисте-

ме мононуклеарных фагоцитов, индуцирует синтез антител. Установле-

ны сложная антигенная структура иналичие комплементфиксирующих,

преципитирующих игемадсорбирующих антигенов.

Для серологического исследования направляют кровь или сыворотку

впробирках, без признаков гемолиза ибактериальной контаминации.

Допускается однократное замораживание сыворотки крови. Также мож-

но присылать печень, подчелюстные имезентериальные лимфатические

узлы, селезенку, трубчатую кость.

 



https://t.me/medicina_free



Используют тест-систему для выявления антител при африканской

чуме свиней твердофазным иммуноферментным анализом.

Из печени, селезенки, лимфатических узлов, трубчатой кости (кост-

ный мозг) готовится 10-процентная суспензия на физиологическом рас-

творе. Делается навеска из исследуемого материала 10г, измельчается

вступке, добавляется 100 мл 0,9-процентного NaCl (физиологического

раствора) и раствор антибиотиков (пенициллин + стрептомицин) для

подавления патогенных бактерий. Суспензия откручивается на центри-

фуге при 2000 об/мин либо настаивается при комнатной температуре

втечение 1 часа.

Влунки планшетов вносим по 100 мкл натрия дезинтрифосфат

содержащего специфические иммуноглобулины. Планшет закры-

ваем липкой лентой иинкубируем при температуре 4°C втечение

ночи.

2. Планшет 2 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку), каждый раз

выдерживая лунки сбуфером не менее 30–60 с. Затем жидкость

из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого план-

шета по фильтровальной бумаге.

Вкаждую лунку вносим по 300 мкл рабочего раствора для забивки

активных сайтов иразведение исследуемых проб (концентрат мо-

лочного белка). Планшет закрываем липкой лентой иинкубируем

при температуре +37°C втечение 30 мин.

Планшет 1 раз промываем рабочим раствором ЗФР на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку), каждый раз

выдерживая лунки сбуфером не менее 30–60 с. Затем жидкость

из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого план-

шета по фильтровальной бумаге.

Испытуемые сыворотки разводим в50 раз буфером для разведения

проб (БР). Для приготовления 500 мкл пробы к490 мкл БР добав-

ляем 10 мкл сыворотки.

6. Влунки А1–В1 вносим 100 мкл K

Влунки С1–D1 вносим 100 мкл K

–

Востальные вносим по 100 мкл испытуемых проб (по2 лунки на каж-

дый образец). Планшет закрываем липкой лентой иинкубируем 1 час

при температуре +37°C.

7. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку), каждый раз

https://t.me/medicina_free



выдерживая лунки сбуфером не менее 30–60 с. Затем жидкость

из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого план-

шета по фильтровальной бумаге.

8. Вкаждую лунку вносим по 100 мкл рабочего раствора специфи-

ческого иммунопероксидазного конъюгата. Планшет закрываем

липкой лентой иинкубируем 1 час при температуре +37°C.

9. Планшет 6 раз промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку), каждый раз

выдерживая лунки сбуфером не менее 30–60 с. Затем жидкость

из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого план-

шета по фильтровальной бумаге.

10.

Вкаждую лунку вносим по 100 мкл хромоген- субстратного раство-

ра. Планшет инкубируют 20–30 мин. при комнатной температуре.

11.

Измеряем величину оптической плотности содержимого лунок

планшета на фотометре Sunrise Tecan вертикального сканирова-

ния при длине волны 405 нм.



1. Какой материал предназначен для исследования АЧС?

Для чего добавляют раствор антибиотиков при приготовлении

суспензии из органов?

3. При какой температуре инкубируют планшет?

https://t.me/medicina_free







Вирусный гастроэнтерит (трансмиссивный) свиней (Gastroenteritis

infectiosa suum, ВГЭС, ТГС, болезнь Дойла иХатчингса) – высококонтагиоз-

ная болезнь свиней, характеризующаяся катарально- геморрагическим

гастроэнтеритом ипроявляющаяся рвотой, диареей, дегидратацией ор-

ганизма ивысокой летальностью поросят впервые 2 недели жизни [1].

 



Возбудитель –

РНК-содержащий вирус семейства Coronaviridae. Раз-

мер вирионов

–

70–120 нм, они покрыты гликопротеидным слоем була-

вовидных отростков, напоминающих солнечную корону. Вантигенном

отношении вирус однороден исерологически идентичен независимо от

того, где он выделен. Возбудитель индуцирует образование агглютини-

рующих, вируснейтрализующих, преципитирующих антител.

Для анализа используют фекалии, взятые от животных впервые

6–12 часов после проявления клинических признаков заболевания. От

павших животных можно использовать содержимое тонкого итолстого

отделов кишечника. До исследования материал можно хранить вморо-

зильной камере.

Применяют набор для выявления антигена вируса трансмиссивного

гастроэнтерита (ТГС) иротавируса свиней (РВС) методом иммунофер-

ментного анализа.

https://t.me/medicina_free



Пробы разводим вобъеме физиологического раствора в соотноше-

нии 1 : 10 ицентрифугируем 10 мин. при 2000–3000 об/мин. Надосадоч-

ную жидкость осторожно отливаем встерильную пробирку иисследуем.

1. Влунки планшетов вносим по 100 мкл раствора специфического

иммуноглобулина G кТГС иРВС. Один планшет используется для

определения ТГС, другой

–

для РВС.

Планшет закрываем липкой лентой иинкубируем 18 часов при

температуре 4°C.

3. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку). Затем жид-

кость из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого

планшета по фильтровальной бумаге.

Если количество образцов для исследования не позволяет исполь-

зовать планшет полостью, то неиспользованные стрипы, не промывая,

помещают в полиэтиленовый пакет ихранят при температуре

–20°C.

4. Влунки А1–В1 вносим по 100 мкл специфического антигена ТГС.

Влунки С1–D1 вносим по 100 мкл специфического антигена РВС.

Таким образом, втесте на выявление ТГС вкачестве отрицательного

контроля используется гетерологичный антиген РВС, инаоборот.

Востальные вносим по 100 мкл испытуемых проб (по2 лунки на каж-

дый образец). Планшет закрываем липкой лентой иинкубируем 1 час

при температуре 37°C.

5. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку). Затем жид-

кость из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого

планшета по фильтровальной бумаге.

6. Вкаждую лунку вносим по 100 мкл рабочего раствора конъюгата.

Влунки, сенсибилизированные IgG квирусу ТГС, вносим конъю-

гат ТГС. Планшеты закрываем липкой лентой иинкубируем 1 час

при температуре 37°C.

7. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку). Затем жид-

кость из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого

планшета по фильтровальной бумаге.

Вкаждую лунку вносим по 100 мкл хромоген- субстратного рас-

твора. Планшет инкубируем 20 мин. втемноте при комнатной

температуре.

https://t.me/medicina_free



9. Останавливают реакцию добавлением вкаждую лунку по 50 мкл

стоп-раствора.

10.

Измеряем величину оптической плотности содержимого лунок

планшета на фотометре Sunrise Tecan вертикального сканирова-

ния при длине волны 450 нм.



1. Какой материал предназначен для исследования ТГС?

2. Вкаком соотношении разводят фекалии?

3. При какой температуре инкубируют планшет после добавления

хромоген- субстратного раствора?

https://t.me/medicina_free





Ротавирусная диарея поросят (Rotavirosis diarrhea suum, РВИС, РВС) –

высококонтагиозная болезнь, характеризующаяся симптомами острого

энтерита, диареей, дегидратацией организма [5].

 



Возбудитель – РНК-содержащий безоболочный вирус из семейства

Reoviridae, рода Rotavirus. Различают 4 серогруппы ротавируса свиней (А,

В, С, Е). Упоросят- сосунов основным возбудителем РВИС является ви-

рус серогруппы А. Свиной ротавирус обнаруживает антигенное родство

вРСК иРДП сротавирусами человека, крупного рогатого скота, мышей.

Для анализа используют фекалии, взятые от животных впервые 6–12

часов после проявления клинических признаков заболевания. От павших

животных можно использовать содержимое тонкого итолстого отделов ки-

шечника. До исследования материал можно хранить вморозильной камере.

Применяют набор для выявления антигена вируса трансмиссивного

гастроэнтерита (ТГС) иротавируса свиней (РВС) методом иммунофер-

ментного анализа.

Пробы разводим вобъеме физиологического раствора в соотноше-

нии 1 : 10 ицентрифугируем 10 мин. при 2000–3000 об/мин. Надосадоч-

ную жидкость осторожно отливаем встерильную пробирку иисследуем.

1. Влунки планшетов вносим по 100 мкл раствора специфического

иммуноглобулина G кТГС иРВС. Один планшет используется для

определения ТГС, другой

–

для РВС.

Планшет закрываем липкой лентой иинкубируем 18 часов при

температуре +4°C.

3. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку). Затем жид-

https://t.me/medicina_free



кость из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого

планшета по фильтровальной бумаге.

Если количество образцов для исследования не позволяет исполь-

зовать планшет полостью, то неиспользованные стрипы, не промывая,

помещают в полиэтиленовый пакет ихранят при температуре

–20°C.

4. Влунки А1–В1 вносим по 100 мкл специфического антигена ТГС.

Влунки С1–D1 вносим по 100 мкл специфического антигена РВС.

Таким образом, втесте на выявление ТГС вкачестве отрицательного

контроля используется гетерологичный антиген РВС, инаоборот.

Востальные лунки вносим по 100 мкл испытуемых проб (по2 лунки

на каждый образец). Планшет закрываем липкой лентой иинкубируем

1 час при температуре +37°C.

5. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку). Затем жид-

кость из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого

планшета по фильтровальной бумаге.

6. Вкаждую лунку вносим по 100 мкл рабочего раствора конъюгата.

Влунки, сенсибилизированные IgG квирусу РВС, вносим конъю-

гат РВС. Планшеты закрываем липкой лентой иинкубируем 1 час

при температуре +37°C.

7. Планшет 4 раза промываем рабочим раствором ФСБТ на автома-

тическом промывочном устройстве (300 мкл/лунку). Затем жид-

кость из лунок полностью удаляем постукиванием перевернутого

планшета по фильтровальной бумаге.

Вкаждую лунку вносим по 100 мкл хромоген- субстратного рас-

твора. Планшет инкубируем 20 мин. втемноте при комнатной

температуре.

9. Останавливают реакцию добавлением вкаждую лунку по 50 мкл

стоп-раствора.

10.

Измеряем величину оптической плотности содержимого лунок

планшета на фотометре Sunrise Tecan вертикального сканирова-

ния при длине волны 450 нм.



1. Какой материал предназначен для исследования РВС?

2. Допускается ли заморозка материала для исследования?

3. При какой температуре хранятся неиспользованные стрипы?

https://t.me/medicina_free





Болезнь Ауески (лат. Morbus Aujeszky, псевдобешенство, инфекционный

бульбарный паралич, инфекционный менингоэнцефалит) – остро протекаю-

щая болезнь многих видов домашних идиких животных, проявляюща-

яся расстройством ЦНС, сильным зудом ирасчесами (увсех животных,

кроме свиней ипушных зверей). Умолодняка сопровождается судоро-

гами, параличами, гибелью животных [2].

 



Возбудитель – ДНК-содержащий вирус семейства Herpesviridae.

Вирус относится кпантропным, однако у него выражена склонность

кнейротропизму ипневмотропизму. Культивируют его на тканях кури-

ных эмбрионов или на культурах куриных фибробластов, клеток почек

крольчат, свиней. Вклетках больных животных образует специфические

тельца- включения. Полученные от животных разных видов ииз разных

стран вирусы по своим биологическим иантигенным свой ствам не от-

личаются друг от друга.

Для выделения вируса болезни Ауески используют головной мозг,

кусочки легких, печени, селезенки, лимфоузлов, миндалин, полученные

при вскрытии трупов.

Биологическая проба проводится на кролике массой 2–2,5 кг. Из

отделов головного мозга (мозжечка, коры полушарий, продолговато-

го) и легких готовим 10-процентную суспензию на физиологическом

растворе. Делаем навеску из исследуемого материала 10г, измельчаем

вступке, добавляем 100 мл 0,9-процентного физиологического раствора

ираствор антибиотиков (пенициллин + стрептомицин) для подавления

https://t.me/medicina_free



патогенных бактерий. Суспензию откручиваем на центрифуге при 2000

об/мин либо настаиваем при комнатной температуре втечение 1 часа.

Заражение производим взаразном виварии. На месте введения суспен-

зии выстригаем шерсть, обрабатываем 70-процентным спиртом ивво-

дим суспензию внутримышечно вдозе 1 мл (рис.19, 20).



Зараженного кролика помещаем вспециальную клетку. Ее подписы-

ваем маркером, где указываем наименование заболевания, номер экс-

пертизы, дату, вид животного, подвергнутого вскрытию, хозяйство или

наименование района. Максимальный срок наблюдения за зараженным

животным составляет от 10 до 12 дней, ежедневно оно проверяется. Био-

пробу считают положительной, если кролик погибает склиническими

признаками болезни: нервная форма, зуд на месте введения, расчесы

через 2–10 дней (рис.20).



https://t.me/medicina_free

<<< < Предыдущая 1 2 34 / 124 5 6 7 8 9 10 11 12 > Следующая >>>

Соседние файлы в папке Библиотека им академика М.И. Перельмана

#
10.10.20268 Мб0Книга_4706_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.djvu
#
10.10.20268 Мб0Книга_4707_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
10.10.20267 Мб0Книга_4713_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
10.10.20267 Мб0Книга_4715_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
10.10.20267 Мб0Книга_4719_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
10.10.20269 Мб0Книга_49_библиотеки_им_акад_М_И_Перельмана.pdf
#
29.08.2026101 Мб0Книга_498_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
10.10.20269 Мб0Книга_50_библиотеки_им_акад_М_И_Перельмана.pdf
#
29.08.202698 Мб0Книга_500_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
29.08.202697 Мб0Книга_501_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf
#
29.08.202694 Мб0Книга_503_Библиотеки_им_академика_М_И_Перельмана.pdf