Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Репликация ДНК прокариот и вирусов. Учебное пособие.pdf
X
- •Принципы репликации
- •Ферментативная система синтеза ДНК in vitro. Активирование ДНК
- •Праймирование репликации ДНК фагов G4 и ФX174. Праймаза и праймосома
- •Репликация ДНК аденовируса
- •Модель «заячьи уши»
- •Репликация ДНК фага Т7. «Концевая избыточность»
- •Белок 32 гена фага Т4. Его свойства и функции. Другие SSB их функции
- •Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
- •Список литературы

>>> Белок 32 гена фага Т4. Его свойства и функции. Другие SSB их функции
БЕЛОК 32ГЕНА ФАГА Т4. ЕГО СВОЙСТВА
ИФУНКЦИИ. ДРУГИЕ SSB ИХ ФУНКЦИИ
Фаг Т4 является одним из самых изученных литических фагов энтеробактерий.
Он обладает сравнительно большим размером частиц: 90 нм в ширину и 200 нм в длину.
Его геном представлен линейной дцДНК ~ 170 тпн, кодирующей 289 белков, и упакован
в икосаэдрическую головку. Геном имеет концевую избыточность. Полный жизненный
цикл фага осуществляется за ~ 30 мин при 37 °С и включает в себя стадии адсорбции
и проникновения вирусного генома, ареста системы экспрессии генов клетки-хозяина,
синтеза ферментов вируса (к 5 мин), репликации (к 10 мин) и сборки новых вирусных
частиц (к 12 мин). Частота возникновения мутаций составляет ~ 1,7•10–8. В одной клетке-хозяине производится 100–150 вирусных частиц. Первая копия ДНК реплицируется
в форме отдельной единицы, а следующие несколько копий рекомбинируют по принципу
«хвост к хвосту» с образованием конкатемера. Перед упаковкой конкатемер разрезается
по специфическим позициям на дцДНК-фрагменты равной длины, которые представляют геном будущих вирусных частиц с циклической перестановкой генов. Особенностью
генома T4 является наличие эукариотоподобных интронных последовательностей.
В конце 1968 г. Брюс Альбертс обнаружил белок фага Т4, в присутствии которого
температура плавления дуплекса полиdA/олигоdT понижалась на 40 °С. В 1979 г. был
идентифицирован 32 ген, кодирующий этот белок. Продуктом гена 32 бактериофага Т4 является белок gp32, оцДНК-связывающий белок. Белок gp32 необходим для репликации,
рекомбинации и репарации ДНК T4, стимулирует работу компонентов реплисомы и повышает ее точность. Структура gp32 сходна со структурой других фаговых оцДНК-связывающих белков, таких как gp2.5 бактериофага Т7 [21]. В кристаллической структуре
gp32 в центральной ее части есть домен связывания оцДНК — «щель», состоящая из трех
структурных субдоменов, по которым оцДНК может свободно скользить (рис. 31). Домен
имеет складку типа OB-fold (oligonucleotide/oligosaccharide-binding) — положительно
заряженную поверхность, которая проходит параллельно гидрофобному карману, образованному кластером боковых цепей ароматических аминокислот. При связывании SSB
с оцДНК сахарофосфатный остов контактирует с электроположительной «щелью» белка,
при этом гетероциклические основания находятся в контакте с гидрофобными аминокислотами. Подвижность ДНК в составе этого комплекса может говорить о сиквенс-независимом шапероноподобном связывании оцДНК, поскольку, например, при репликации
белок должен взаимодействовать с различными регионами ДНК с одинаковой аффинностью. Дополнительно в месте связывания оцДНК gp32 содержит субдомен цинковый палец, остатки 63-111, который не встречается в двух других фаговых SSB, но представлен
в структуре основного SSB человека — RPA (replicationproteinA).
Стоит отметить, что SSB-белки связывают и дц-форму ДНК, но разница в аффинности достигает 104 раз. В общем случае SSB не способны понижать температуру плавления дцДНК или денатурировать дуплекс. Их способность различать оц- и дц-формы
ДНК основана на ограничении объема в центре ДНК-связывающей «щели» за счет наличия ароматических аминокислот; для gp32 это остатки Phe183 и Tyr186. Разупорядочен-
>>> 51

>>>
ность структуры ДНК, наблюдаемая в кристаллах, может отражать связывание белком
различных конформеров ДНК. Связывание ДНК белком SSB, с одной стороны, должно
предотвращать формирование вторичной структуры ДНК (дц-форма), а с другой, позволить Т4 ДНК-полимеразе и другим белкам получить доступ к оцДНК. Наличие перемещений оцДНК внутри SSB и обеспечение доступа ДНК-полимеразы без диссоциации
SSB-ДНК-комплекса может как раз объясняться существованием различных конформеров ДНК. Восстановление вторичной структуры ДНК происходит непосредственно сразу
после диссоциации SSB при скольжении белка перед ДНК-полимеразой в репликативной вилке. За взаимодействие с другими белками отвечает С-концевой домен gp32, тогда
как N-концевой обеспечивает кооперативность взаимодействия. Связываясь с оцДНК,
gp32 формирует большой компактный белок-нуклеиновый комплекс, в котором находится основной пул белковой массы репликационной вилки. Подобные комплексы являются
важной структурной особенностью сборки T4-геликазы/праймосомы.
Tyr-137
Tyr-186
Tyr-115
Tyr-84
Zn
3'-OH
Tyr-106
2+
Tyr-99
Phe-183
Рис.31. Кристаллическая структура белка,
связывающего оцДНК — d(T)4(показано красным),
gp32бактериофага Т4[21]
>>> 52

>>> SSB E. coli
SSB E.COLI
Еще одним представителем SSB-белков является оцДНК-связывающий белок
E.coli [22, 23]. Это небольшой глобулярный белок с молекулярной массой 19 кДа, состоящий из 178 ак. Кроме оцДНК, он способен связывать также оцРНК, но с более
низкой аффинностью. Комплекс SSB E.coli с ДНК реализуется за счет взаимодействий
белка как с основаниями, так и с сахарофосфатным остовом нуклеиновой кислоты.
Интересной особенностью SSB E.coli является его растворимая форма, представленная стабильным гомотетрамером с симметричной структурой D2 (рис. 32, а). При кооперативном связывании с ДНК белок реализует 2 различные конформации: в низкой
соли и при избытке белка он «неограниченно» кооперативно связывается с протяженной оцДНК с формированием длинных белковых кластеров; в высокой соли и при низкой концентрации белка он связывается с оцДНК с ограниченной кооперативностью
(рис. 32, б и в). Один тетрамер может связываться либо с 35+/–2 нуклеотидами, либо
с 65+/–3 нуклеотидами. В первом случае 2 из 4 субъединиц взаимодействуют с ДНК,
во втором — все 4. В модели взаимодействия оцДНК с четырьмя субъединицами SSB
(SSB)
лубым), половину сайтов связывания двух других субъединиц (обозначены зеленым
и желтым) и не заходит внутрь сайта связывания оцДНК четвертой субъединицы (обозначена красным). Хотя эта структурная модель и предполагает частичное взаимодействие с тремя из четырех субъединиц, сумма этих взаимодействий эквивалентна взаимодействию с двумя субъединицами. При «неограниченном» кооперативном связывании реализуется тип (SSB)35, при ограниченной — (SSB)65. Предложенные модели объясняют, как достаточно протяженная ДНК способна «обвиваться» вокруг сравнительно
маленького белка.
ДНК занимает весь сайт связывания одной субъединицы SSB (обозначена го-
35
3'-OH
б ва
выход
5'
3'
5'-Р
вход
Рис.32. Кристаллическая структура белка, связывающего оцДНК, E.coli,
каждая субъединица показана отдельным цветом (структура Pdb 1eqq, 22) (а).
Типы связывания SSB E.coli соцДНК: б — SSB35; в— SSB65(адаптировано из[23])
>>> 53

>>>
SSB E. coli взаимодействует с другими белками метаболизма ДНК через свой
С-концевой домен, 173–178 ак: DnaG, HolC, PriA, PriB, RecO, RecQ и SbcB.
К основным клеточным функциям SSB, безусловно, относится его участие в репликации, показанное на уровне in vivo и in vitro. SSB связывает оцДНК в реликативной
вилке непосредственно за геликазой, таким образом, с одной стороны, предотвращая
схлопывание ДНК-дуплекса и предохраняя оцДНК от действия экзонуклеаз, а с другой,
стимулируя работу ферментов. Более того, он участвует в организации и стабилизации
ori: взаимодействует с праймазой и праймосомой при синтезе отстающей цепи ДНК
и с РНК-полимеразой при синтезе лидирующей цепи. Поскольку присутствие SSB подавляет основную реакцию праймирования при участии DnaB-геликазы, то можно говорить о том, что SSB поддерживает специфическую инициацию корректного ori. Также он
может способствовать связыванию ДНК-полимеразы II с реплисомой при SOS-ответе.
ГЕЛИКАЗЫ. ИХ РОЛЬ ВРЕПЛИКАЦИИ
Какие же еще белки необходимы для формирования корректной репликативной
вилки? К таким белкам относятся геликазы (от лат. helix — спираль) — класс ферментов, способных двигаться вдоль сахарофосфатного остова дуплекса нуклеиновых кислот (ДНК, РНК, ДНК-РНК-гибридов) и разрывать внутри- или межмолекулярные водородные связи между основаниями, используя для этого энергию гидролиза NTP, чаще
ATP или GTP. Геликазы постепенно перемещаются вдоль линии НК-дуплекса в направлении 5'→3' и 3'→5', формируя оцНК. Для реализации многих клеточных процессов,
таких как репликация ДНК, транскрипция, трансляция, рекомбинация, репарация ДНК
и биогенез рибосом, необходимо разделение цепей нуклеиновых кислот, что требует
привлечения геликаз. К 2004 г. в клетках E.coli и других одноклеточных было известно
14 ферментов этого класса; 6 геликаз было обнаружено в бактериофагах; 12 геликаз —
у вирусов; 15 — у дрожжей; 8 — у растений; 11 ферментов выделено из клеток тимуса
теленка, приблизительно 25 геликаз — из клеток человека; около 1 % генов эукариот
кодируют геликазы [25]. На сегодняшний день известно, что геном человека кодирует
95 неизбыточных, т. е. функционально неперекрывающихся, геликаз: 64 РНК-геликазы
и 31 ДНК-геликазу [26].
Хронология изучения ферментов этого класса включает следующие основные этапы.
1976 г. — открытие и выделение ДНК-геликазы E.coli [27].
1978 г. — открытие первых эукариотических ДНК-геликаз, выделенных из лилий.
1982 г. — белок гена 41 фага Т4 — первая ДНК-геликаза бактериофага.
1985 г. — первые ДНК-геликазы млекопитающих, выделенные из тимуса теленка.
1986 г. — большой опухолевый антиген SV40 — первая вирусная ДНК-геликаза.
1986 г. — ATPase III, дрожжевая геликаза.
1990 г. — выделение человеческой ДНК-геликазы.
1992 г. — выделение митохондриальной ДНК-геликазы из клеток головного мозга
крупного рогатого скота.
>>> 54

>>> Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
2002 г. — выделение и характеризация первой биохимически активной малярийной ДНК-геликазы Plasmodiumcynomolgi.
Геликазы имеют различную структуру и состояние олигомеризации. Было показано, что DnaB-подобные геликазы раскручивают ДНК в составе кольцевого гексамерного комплекса, другие ферменты активны в качестве мономеров или димеров. Геликазы
могут действовать пассивно, стартуя с некатализированного разматывания дуплекса,
или играть активную роль в процессе разделении цепей с участием каталитической
стадии гидролиза NTP.
Помимо плавления НК-дуплекса, геликазы способствуют диссоциации связанных
с нуклеиновой кислотой белков и катализируют процесс гомологичной рекомбинации
ДНК. Метаболические процессы РНК, такие как трансляция, транскрипция, биогенез рибосом, сплайсинг, перенос РНК, ее редактирование и деградация, невозможны
без геликазной активности.
ТОПОИЗОМЕРАЗЫ. МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ
РЕЛАКСАЗ ИГИРАЗ. МОДЕЛЬ ИНВЕРСИИ ЗНАКА
Топоизомеразы — изомеразные ферменты, которые изменяют топологию ДНК.
Проблема скручивания существует из-за спиральной структуры ДНК. Во время репликации и транскрипции с каждым раскрученным витком спирали ДНК становится еще
более скрученной в месте перед репликативной (транскрипционной) вилкой. В конечном итоге это кручение должно привести к остановке в движении вилки из-за топологических проблем. Для предотвращения и устранения этих проблем топоизомеразы связываются с двуцепочечной ДНК и разрезают сахарофосфатный остов одной или обеих
цепей дуплекса. Этот промежуточный разрыв позволяет распутать ДНК, после чего
топоизомераза сшивает ДНК-разрыв. Поскольку общий химический состав и целостность ДНК не изменяются, то исходная и конечная молекулы ДНК представляют собой
химические изомеры, отличающиеся только своей общей топологией.
Топоизомеразы способны релаксировать сверхспирализованные молекулы ДНК;
в некоторых случаях эти ферменты могут вносить в ДНК отрицательные супервитки
или формировать катенаны.
Сверхспирализация — это явление пере- или недоскручивания топологически замкнутых молекул ДНК, в результате которого ось двойной спирали ДНК сама закручивается в спираль более высокого порядка. Под «топологически замкнутыми» понимают молекулы, свободное вращение концов которых затруднено: кольцевые молекулы ДНК либо
линейные молекулы, концы которых зафиксированы белковыми структурами. Образующуюся в результате сверхспирализации ДНК иногда называют суперскрученной. Сверхспирализация важна для компактизации ДНК. Сверхспирализация может быть положительной или отрицательной. За положительную сверхспирализацию принято принимать
такую, при которой ось двойной спирали закручена в том же направлении, что и цепи
>>> 55

>>>
внутри двойной спирали. Спираль В-формы ДНК закручена по часовой стрелке. Соответственно, сверхспирализация считается отрицательной, если ось двойной спирали закручена против часовой стрелки. ДНК большинства мезофильных организмов отрицательно
сверхспирализована. В то же время есть сведения об особой биологической роли положительной сверхспирализации ДНК как мезофильных, так и термофильных организмов.
Топоизомеразы играют важную роль в процессах репликации и транскрипции, удаляя положительные сверхвитики и снимая напряжение на участке перед ДНК-вилкой.
Показана роль топоизомераз в образовании петель хроматина во время конденсации
хромосом. Встраивание вирусной ДНК в хромосомы хозяина и другие формы рекомбинации также требуют присутствия топоизомераз. Бактериальная топоизомераза и топоизомераза человека используют один и тот же механизм при репликации и транскрипции.
В 1970-х гг. Джеймс К. Вон впервые открыл топоизомеразу — топоизомеразу I
E.coli [28].
В зависимости от механизма действия топоизомеразы подразделяют на топоизомеразы I типа, вносящие одноцепочечные разрывы без затрат энергии, и топоизомеразы
II типа, осуществляющие внесение двуцепочечных разрывов с затратой АТР (см. таблицу). Особое место среди топоизомераз занимает ДНК-гираза, характерная для E.coli.
Типы топоизомераз
Топоизомеразы IA IB IIA IIB Гираза (II)
Зависимость от ионов металла Да Нет Да Да Да Да
Зависимость от АТР,
кол-во мол
Разрыв оц оц дц дц дц дц
Конец прикрепления 5' 3' 5' 5' 5' 5'
Изменение числа супервитков ± 1 ± 1 ± 2 ± 2 + → – – → +
Нет Нет
Да2Да
2
Да
2
Обратная гираза
(I + белки)
Нет
Топоизомеразы I представляют собой мономерные белки, которые релаксируют
ДНК, внося одноцепочечный разрыв без затрат энергии (рис. 33,а). Внесение разры-
ва происходит за счет остатка тирозина, который осуществляет нуклеофильную атаку
фосфатной группы ДНК, образуя фосфотирозин (рис. 33, б). Сам фермент при этом свя-
зывается с высвободившимся 3'- или 5'-концом цепи. В зависимости от того, к какому
концу присоединяется топоизомераза, выделяют:
– топоизомеразы IA типа, связывающиеся с 5'-концом; снимают только отрицательную суперспирализацию;
– топоизомеразы IB типа, связывающиеся с 3'-концом; снимают как положительную, так и отрицательную суперспирализацию.
>>> 56

>>> Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
а
Связывание
Topo I
б
Тирозин
Разрезание цепи;
формирование
ковалентной связи
HO
Цепь ДНК
Протаскивание
3'-конца
под другой цепью;
лигирование
Ty r
p
Диссоциация
Topo I
Рис.33. Механизм действия
топоизомеразы I типа (а)
через образование ковалентной
связи белок-ДНК (б)
Такой механизм действия не требует затрат энергии, т. е. при работе топоизомераз
I типа АТР не расходуется. Число витков при этом изменяется на 1.
Топоизомеразы I типа известны у бактерий, архей, некоторых вирусов, например
вируса оспы, в клетках эукариот.
Топоизомеразы II функционируют в клетках прокариот в виде тетрамеров,
в клетках эукариот — в виде димеров. Они осуществляют АТР-зависимое расщепление обеих цепей ДНК с последующим переносом цепей через разрыв и его лигированием (рис. 34) [24]. Разрыв происходит за счет связывания тирозинов топоизомеразы
с G-сегментом (от англ. gate — ворота) ДНК с образованием двух новых 5'-фосфодиэфирных связей. В образовавшийся разрыв проходит другая часть ДНК-дуплекса —
Т-сегмент (от англ. transport — перенос). Таким образом, число положительных или
отрицательных супервитков изменяется на 2. Топоизомеразы II могут катенировать
и декатенировать узлы ДНК. Относящаяся к этому типу ДНК-гираза Е. coli вносит
отрицательные супервитки.
Топоизомеразы II, как и топоизомеразы I, подразделяют на 2 группы: IIA и IIB.
Однако анализ структур топоизомераз IА, IIА и IIB выявил их большое структурное
сходство, в частности наличие специальной складки для связывания с ионами металлов.
ДНК-гиразы — это специфические ферменты прокариот, топоизомеразы, вызывающие образование отрицательных супервитков в релаксированной кольцевой
молекуле ДНК. ДНК-гираза относится к топоизомеразам типа II и вносит в ДНК
двуцепочечный разрыв. ДНК-гираза является тетрамерным белком, состоящим
>>> 57

>>>
а
Суперскрученная
форма ДНК
б
G-сегмент
TOPO II
Релаксированная,
декатенированная
форма ДНК
Т-сегмент
TOPO II
Катенированная
форма ДНК
ATP
>>> 58
ADP + Pi
Pi
Рис.34. Декатенирование ДНК спомощью топоизомераз II типа (а). Механизм действия
топоизомеразы II типа (б) (адаптировано из[24])

>>> Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
из 2 субъединиц типа А, GyrA, и двух субъединиц типа В, GyrB. Структурно белковый комплекс представляет собой три пары «шлюзовых ворот», через которые происходит последовательный перенос сегмента ДНК с образованием 2 отрицательных супервитков. N-концевой створ образован АТФ-азными доменами субъединиц
GyrB, С-концевой — субъединицами GyrA. Связывание 2 молекул АТР приводит
к закрытию ворот, гидролиз, напротив, открывает их. Расщепление и восстановление исходной структуры ДНК-дуплекса осуществляется каталитическим центром,
сформированным всеми субъединицами гиразы. В общем случае фермент взаимодействует с ДНК так, что ДНК наматывается вокруг белка. В тех местах ДНК, которые связаны с гиразой, возникает положительная сверхспирализация. Фермент вносит двуцепочечный разрыв в ДНК и переносит двойную цепь с внутренней стороны
спирали на внешнюю. После этого гираза сшивает оба разрыва, превращая, таким
образом, положительные супервитки в отрицательные. Этот процесс носит название «модели инверсии знака». Скорость работы гиразы достигает около 100 супервитков в минуту.
Связывание гиразы является специфическим; в ДНК E. coli было обнаружено 2 специфических сайта с консенсусной последовательностью
5'-RNNNRNNRTGRYCTYNYNGNY-3' (21 нт) (R — пурины, Y — пиримидины, N —
любой). Было установлено, что разрыв происходит между нуклеотидами TG (выделено
выше). Во всем геноме E. coli предположительно есть около 45–50 крупных сайтов
связывания с ДНК-гиразой, однако не все они функциональны. Имеется также почти
10 тыс. сайтов, характеризующихся более слабым связыванием гиразой. Это означает,
что крупные сайты составляют приблизительно 0,5 % от всех возможных сайтов связывания. Однако даже эти сайты в подавляющем большинстве случаев не проявляют
никакой активности и работают лишь тогда, когда концентрация гиразы чрезвычайно
высока.
Помимо ДНК-гиразы, индуцирующей образование отрицательных супервитков,
существует также обратная гираза, вызывающая образование положительных супервитков. Обратная гираза представляет собой уникальную комбинацию классической
топоизомеразы I типа и белкового комплекса с геликазными свойствами. В более общем понимании этот комплекс принадлежит к классическому семейству топоизомераз
II типа, однако обладает уникальной способностью образовывать отрицательный тороидальный супервиток в сегменте ДНК. На данный момент обратная гираза обнаружена
во всех гипертермофильных организмах, в то время как ДНК-гираза обнаружена лишь
у мезофилов. Обратная гираза имеется как у бактерий, так и у архей, однако ДНК-гираза обнаружена только у бактерий, хотя у галофильных архей (требующих для роста
наличия высоких концентраций соли) выявлены гены, предположительно кодирующие
ДНК-гиразу. Наличие обратной гиразы у термофильных архей связывают с наличием
у них генетических элементов (плазмид, вирусных ДНК) в уникальной положительно
закрученной форме, в то время как плазмиды мезофильных архей и бактерий закручены
отрицательно.
>>> 59

>>>
СОБЫТИЯ ВРЕПЛИКАТИВНОЙ ВИЛКЕ ДНК E.COLI.
СТРУКТУРА ORI РЕПЛИКАЦИИ ДНК E.COLI.
РОЛЬ БЕЛКА DnaA
E.coli является модельным организмом при изучении репликации прокариот, несмотря на то что другие бактерии проявляют с ним много общего. Репликация ДНК
E.coli начинается в сиквенс-специфичном месте начала репликации — ori. Чем больше
размер генома, тем большее количество ori ему необходимо для инициации репликации: у E.coli, бактериофага лямбда, вируса SV40 — один ori, в эукариотических клетках — множественные начала репликации, расположенные на расстоянии ~ 20 тпн друг
от друга.
Репликация E. coli является двунаправленной и возникает из одного источника
репликации oriC (originof chromosomalreplication). Процесс состоит из трех этапов:
инициации, элонгации и терминации.
Инициация. Условия среды, которые поддерживают быстрый рост бактерий, также соответствуют и более короткому времени инициации репликации в них, т. е. время удвоения ДНК в быстрорастущих клетках меньше по сравнению с медленнорастущими клетками. Другими словами, вполне возможно, что в условиях быстрого роста
исходные клетки начнут повторно реплицировать свою ДНК во время предыдущего
раунда репликации. По этой причине начало репликации должно подвергаться строгой регуляции. У бактерий сборка реплисомы в месте ori регулируется ассоциацией
белок-нуклеинового комплекса. OriC представляет собой регион ~ 260 пн, который
содержит 13–16 пн (в зависимости от вида) АТ-богатый участок — DNAunwinding
element (DUE) и множественные сайты посадки белка DnaA (рис. 35). Это относительно небольшой белок с молекулярной массой 52,5 кДа, содержащий 467 ак. В геноме E.coliесть 11 сайтов АТР-зависимого связывания DnaA, три из которых — R1,
R2 и R4 — обладают крайне высокой аффинностью к DnaA; они имеют консервативную 9-нуклеотидную консенсусную последовательность 5'-TTAT(C/A)CACA. DnaA
существует с двух формах: активной DnaA-ATP и неактивной DnaA-ADP. Обе формы
с одинаковым сродством связываются с высокоаффинными участками на протяжении
большей части клеточного цикла. Эти сайты представляют собой специфическое место, в котором формируется реплисома, т. е. комплекс, осуществляющий репликацию.
Остальные восемь сайтов связываются с DnaA-ATP с более низкой аффинностью.
Во время инициации DnaA связывается с высокой аффинностью с сайтом R4, «падает» на соседний сайт с низкой аффинностью и постепенно заполняет все сайты.
Таким образом, связывание DnaA с oriC напоминает кооперативные взаимодействия.
Связывание с этими сайтами изменяет нативную конформацию ori. Предполагается,
что вызванное связыванием с DnaA появление оцДНК способствует разделению цепей, что позволяет большему количеству DnaA связываться с раскрученной областью
(рис. 36). Затем «погрузчик» геликазы DnaC взаимодействует с DnaA, связанным
с оцДНК, и привлекает геликазу DnaB, которая, собственно, и раскручивает ДНК-дуплекс, до тех пор пока активируемая ею праймаза DnaG в составе праймосомы (с ге-
>>> 60
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]
