Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Репликация ДНК прокариот и вирусов. Учебное пособие.pdf
Скачиваний:
1
Добавлен:
08.09.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
☆

>>>  Белок 32 гена фага Т4. Его свойства и функции. Другие SSB их функции

БЕЛОК 32ГЕНА ФАГА Т4. ЕГО СВОЙСТВА ИФУНКЦИИ. ДРУГИЕ SSB ИХ ФУНКЦИИ
Фаг Т4 является одним из самых изученных литических фагов энтеробактерий. Он обладает сравнительно большим размером частиц: 90 нм в ширину и 200 нм в длину. Его геном представлен линейной дцДНК ~ 170 тпн, кодирующей 289 белков, и упакован в икосаэдрическую головку. Геном имеет концевую избыточность. Полный жизненный цикл фага осуществляется за ~ 30 мин при 37 °С и включает в себя стадии адсорбции и проникновения вирусного генома, ареста системы экспрессии генов клетки-хозяина, синтеза ферментов вируса (к 5 мин), репликации (к 10 мин) и сборки новых вирусных частиц (к 12 мин). Частота возникновения мутаций составляет ~ 1,7•10–8. В одной клет­ке-хозяине производится 100–150 вирусных частиц. Первая копия ДНК реплицируется в форме отдельной единицы, а следующие несколько копий рекомбинируют по принципу «хвост к хвосту» с образованием конкатемера. Перед упаковкой конкатемер разрезается по специфическим позициям на дцДНК-фрагменты равной длины, которые представля­ют геном будущих вирусных частиц с циклической перестановкой генов. Особенностью генома T4 является наличие эукариотоподобных интронных последовательностей.
В конце 1968 г. Брюс Альбертс обнаружил белок фага Т4, в присутствии которого температура плавления дуплекса полиdA/олигоdT понижалась на 40 °С. В 1979 г. был идентифицирован 32 ген, кодирующий этот белок. Продуктом гена 32 бактериофага Т4 яв­ляется белок gp32, оцДНК-связывающий белок. Белок gp32 необходим для репликации, рекомбинации и репарации ДНК T4, стимулирует работу компонентов реплисомы и по­вышает ее точность. Структура gp32 сходна со структурой других фаговых оцДНК-свя­зывающих белков, таких как gp2.5 бактериофага Т7 [21]. В кристаллической структуре gp32 в центральной ее части есть домен связывания оцДНК — «щель», состоящая из трех структурных субдоменов, по которым оцДНК может свободно скользить (рис. 31). Домен имеет складку типа OB-fold (oligonucleotide/oligosaccharide-binding) — положительно заряженную поверхность, которая проходит параллельно гидрофобному карману, обра­зованному кластером боковых цепей ароматических аминокислот. При связывании SSB с оцДНК сахарофосфатный остов контактирует с электроположительной «щелью» белка, при этом гетероциклические основания находятся в контакте с гидрофобными аминокис­лотами. Подвижность ДНК в составе этого комплекса может говорить о сиквенс-неза­висимом шапероноподобном связывании оцДНК, поскольку, например, при репликации белок должен взаимодействовать с различными регионами ДНК с одинаковой аффинно­стью. Дополнительно в месте связывания оцДНК gp32 содержит субдомен цинковый па­лец, остатки 63-111, который не встречается в двух других фаговых SSB, но представлен в структуре основного SSB человека — RPA (replicationproteinA).
Стоит отметить, что SSB-белки связывают и дц-форму ДНК, но разница в аффин­ности достигает 104 раз. В общем случае SSB не способны понижать температуру плав­ления дцДНК или денатурировать дуплекс. Их способность различать оц- и дц-формы ДНК основана на ограничении объема в центре ДНК-связывающей «щели» за счет нали­чия ароматических аминокислот; для gp32 это остатки Phe183 и Tyr186. Разупорядочен-
>>> 51
>>>
ность структуры ДНК, наблюдаемая в кристаллах, может отражать связывание белком различных конформеров ДНК. Связывание ДНК белком SSB, с одной стороны, должно предотвращать формирование вторичной структуры ДНК (дц-форма), а с другой, позво­лить Т4 ДНК-полимеразе и другим белкам получить доступ к оцДНК. Наличие пере­мещений оцДНК внутри SSB и обеспечение доступа ДНК-полимеразы без диссоциации SSB-ДНК-комплекса может как раз объясняться существованием различных конформе­ров ДНК. Восстановление вторичной структуры ДНК происходит непосредственно сразу после диссоциации SSB при скольжении белка перед ДНК-полимеразой в репликатив­ной вилке. За взаимодействие с другими белками отвечает С-концевой домен gp32, тогда как N-концевой обеспечивает кооперативность взаимодействия. Связываясь с оцДНК, gp32 формирует большой компактный белок-нуклеиновый комплекс, в котором находит­ся основной пул белковой массы репликационной вилки. Подобные комплексы являются важной структурной особенностью сборки T4-геликазы/праймосомы.
Tyr-137
Tyr-186
Tyr-115
Tyr-84
Zn
3'-OH
Tyr-106
2+
Tyr-99
Phe-183
Рис.31. Кристаллическая структура белка,  
связывающего оцДНК — d(T)4(показано красным),  
gp32бактериофага Т4[21]
>>> 52
>>>  SSB E. coli
SSB E.COLI
Еще одним представителем SSB-белков является оцДНК-связывающий белок E.coli [22, 23]. Это небольшой глобулярный белок с молекулярной массой 19 кДа, со­стоящий из 178 ак. Кроме оцДНК, он способен связывать также оцРНК, но с более низкой аффинностью. Комплекс SSB E.coli с ДНК реализуется за счет взаимодействий белка как с основаниями, так и с сахарофосфатным остовом нуклеиновой кислоты. Интересной особенностью SSB E.coli является его растворимая форма, представлен­ная стабильным гомотетрамером с симметричной структурой D2 (рис. 32, а). При ко­оперативном связывании с ДНК белок реализует 2 различные конформации: в низкой соли и при избытке белка он «неограниченно» кооперативно связывается с протяжен­ной оцДНК с формированием длинных белковых кластеров; в высокой соли и при низ­кой концентрации белка он связывается с оцДНК с ограниченной кооперативностью (рис. 32, б и в). Один тетрамер может связываться либо с 35+/–2 нуклеотидами, либо с 65+/–3 нуклеотидами. В первом случае 2 из 4 субъединиц взаимодействуют с ДНК, во втором — все 4. В модели взаимодействия оцДНК с четырьмя субъединицами SSB (SSB) лубым), половину сайтов связывания двух других субъединиц (обозначены зеленым и желтым) и не заходит внутрь сайта связывания оцДНК четвертой субъединицы (обо­значена красным). Хотя эта структурная модель и предполагает частичное взаимодей­ствие с тремя из четырех субъединиц, сумма этих взаимодействий эквивалентна взаи­модействию с двумя субъединицами. При «неограниченном» кооперативном связыва­нии реализуется тип (SSB)35, при ограниченной — (SSB)65. Предложенные модели объ­ясняют, как достаточно протяженная ДНК способна «обвиваться» вокруг сравнительно маленького белка.
ДНК занимает весь сайт связывания одной субъединицы SSB (обозначена го-
35
3'-OH
б ва
выход
5'
3'
5'-Р
вход
Рис.32. Кристаллическая структура белка, связывающего оцДНК, E.coli,  
каждая субъединица показана отдельным цветом (структура Pdb 1eqq, 22) (а).  
Типы связывания SSB E.coli соцДНК: б — SSB35; в— SSB65(адаптировано из[23])
>>> 53
>>>
SSB E. coli взаимодействует с другими белками метаболизма ДНК через свой С-концевой домен, 173–178 ак: DnaG, HolC, PriA, PriB, RecO, RecQ и SbcB.
К основным клеточным функциям SSB, безусловно, относится его участие в репли­кации, показанное на уровне in vivo и in vitro. SSB связывает оцДНК в реликативной вилке непосредственно за геликазой, таким образом, с одной стороны, предотвращая схлопывание ДНК-дуплекса и предохраняя оцДНК от действия экзонуклеаз, а с другой, стимулируя работу ферментов. Более того, он участвует в организации и стабилизации ori: взаимодействует с праймазой и праймосомой при синтезе отстающей цепи ДНК и с РНК-полимеразой при синтезе лидирующей цепи. Поскольку присутствие SSB по­давляет основную реакцию праймирования при участии DnaB-геликазы, то можно гово­рить о том, что SSB поддерживает специфическую инициацию корректного ori. Также он может способствовать связыванию ДНК-полимеразы II с реплисомой при SOS-ответе.
ГЕЛИКАЗЫ. ИХ РОЛЬ ВРЕПЛИКАЦИИ
Какие же еще белки необходимы для формирования корректной репликативной вилки? К таким белкам относятся геликазы (от лат. helix — спираль) — класс фермен­тов, способных двигаться вдоль сахарофосфатного остова дуплекса нуклеиновых кис­лот (ДНК, РНК, ДНК-РНК-гибридов) и разрывать внутри- или межмолекулярные водо­родные связи между основаниями, используя для этого энергию гидролиза NTP, чаще ATP или GTP. Геликазы постепенно перемещаются вдоль линии НК-дуплекса в направ­лении 5'→3' и 3'→5', формируя оцНК. Для реализации многих клеточных процессов, таких как репликация ДНК, транскрипция, трансляция, рекомбинация, репарация ДНК и биогенез рибосом, необходимо разделение цепей нуклеиновых кислот, что требует привлечения геликаз. К 2004 г. в клетках E.coli и других одноклеточных было известно 14 ферментов этого класса; 6 геликаз было обнаружено в бактериофагах; 12 геликаз — у вирусов; 15 — у дрожжей; 8 — у растений; 11 ферментов выделено из клеток тимуса теленка, приблизительно 25 геликаз — из клеток человека; около 1 % генов эукариот кодируют геликазы [25]. На сегодняшний день известно, что геном человека кодирует 95 неизбыточных, т. е. функционально неперекрывающихся, геликаз: 64 РНК-геликазы и 31 ДНК-геликазу [26].
Хронология изучения ферментов этого класса включает следующие основные этапы.
1976 г. — открытие и выделение ДНК-геликазы E.coli [27].
1978 г. — открытие первых эукариотических ДНК-геликаз, выделенных из лилий.
1982 г. — белок гена 41 фага Т4 — первая ДНК-геликаза бактериофага.
1985 г. — первые ДНК-геликазы млекопитающих, выделенные из тимуса теленка.
1986 г. — большой опухолевый антиген SV40 — первая вирусная ДНК-геликаза.
1986 г. — ATPase III, дрожжевая геликаза.
1990 г. — выделение человеческой ДНК-геликазы.
1992 г. — выделение митохондриальной ДНК-геликазы из клеток головного мозга крупного рогатого скота.
>>> 54

>>>  Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака

2002 г. — выделение и характеризация первой биохимически активной малярий­ной ДНК-геликазы Plasmodiumcynomolgi.
Геликазы имеют различную структуру и состояние олигомеризации. Было показа­но, что DnaB-подобные геликазы раскручивают ДНК в составе кольцевого гексамерно­го комплекса, другие ферменты активны в качестве мономеров или димеров. Геликазы могут действовать пассивно, стартуя с некатализированного разматывания дуплекса, или играть активную роль в процессе разделении цепей с участием каталитической стадии гидролиза NTP.
Помимо плавления НК-дуплекса, геликазы способствуют диссоциации связанных с нуклеиновой кислотой белков и катализируют процесс гомологичной рекомбинации ДНК. Метаболические процессы РНК, такие как трансляция, транскрипция, биоге­нез рибосом, сплайсинг, перенос РНК, ее редактирование и деградация, невозможны без геликазной активности.
ТОПОИЗОМЕРАЗЫ. МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ РЕЛАКСАЗ ИГИРАЗ. МОДЕЛЬ ИНВЕРСИИ ЗНАКА
Топоизомеразы — изомеразные ферменты, которые изменяют топологию ДНК. Проблема скручивания существует из-за спиральной структуры ДНК. Во время репли­кации и транскрипции с каждым раскрученным витком спирали ДНК становится еще более скрученной в месте перед репликативной (транскрипционной) вилкой. В конеч­ном итоге это кручение должно привести к остановке в движении вилки из-за топологи­ческих проблем. Для предотвращения и устранения этих проблем топоизомеразы свя­зываются с двуцепочечной ДНК и разрезают сахарофосфатный остов одной или обеих цепей дуплекса. Этот промежуточный разрыв позволяет распутать ДНК, после чего топоизомераза сшивает ДНК-разрыв. Поскольку общий химический состав и целост­ность ДНК не изменяются, то исходная и конечная молекулы ДНК представляют собой химические изомеры, отличающиеся только своей общей топологией.
Топоизомеразы способны релаксировать сверхспирализованные молекулы ДНК; в некоторых случаях эти ферменты могут вносить в ДНК отрицательные супервитки или формировать катенаны.
Сверхспирализация — это явление пере- или недоскручивания топологически зам­кнутых молекул ДНК, в результате которого ось двойной спирали ДНК сама закручива­ется в спираль более высокого порядка. Под «топологически замкнутыми» понимают мо­лекулы, свободное вращение концов которых затруднено: кольцевые молекулы ДНК либо линейные молекулы, концы которых зафиксированы белковыми структурами. Образую­щуюся в результате сверхспирализации ДНК иногда называют суперскрученной. Сверх­спирализация важна для компактизации ДНК. Сверхспирализация может быть положи­тельной или отрицательной. За положительную сверхспирализацию принято принимать такую, при которой ось двойной спирали закручена в том же направлении, что и цепи
>>> 55
>>>
внутри двойной спирали. Спираль В-формы ДНК закручена по часовой стрелке. Соответ­ственно, сверхспирализация считается отрицательной, если ось двойной спирали закру­чена против часовой стрелки. ДНК большинства мезофильных организмов отрицательно сверхспирализована. В то же время есть сведения об особой биологической роли положи­тельной сверхспирализации ДНК как мезофильных, так и термофильных организмов.
Топоизомеразы играют важную роль в процессах репликации и транскрипции, уда­ляя положительные сверхвитики и снимая напряжение на участке перед ДНК-вилкой. Показана роль топоизомераз в образовании петель хроматина во время конденсации хромосом. Встраивание вирусной ДНК в хромосомы хозяина и другие формы рекомби­нации также требуют присутствия топоизомераз. Бактериальная топоизомераза и топои­зомераза человека используют один и тот же механизм при репликации и транскрипции.
В 1970-х гг. Джеймс К. Вон впервые открыл топоизомеразу — топоизомеразу I E.coli [28].
В зависимости от механизма действия топоизомеразы подразделяют на топоизо­меразы I типа, вносящие одноцепочечные разрывы без затрат энергии, и топоизомеразы II типа, осуществляющие внесение двуцепочечных разрывов с затратой АТР (см. табли­цу). Особое место среди топоизомераз занимает ДНК-гираза, характерная для E.coli.
Типы топоизомераз
Топоизомеразы IA IB IIA IIB Гираза (II)
Зависимость от ионов металла Да Нет Да Да Да Да
Зависимость от АТР,
кол-во мол
Разрыв оц оц дц дц дц дц
Конец прикрепления 5' 3' 5' 5' 5' 5'
Изменение числа супервитков ± 1 ± 1 ± 2 ± 2 + → – – → +
Нет Нет
Да2Да
2
Да
2
Обратная гираза
(I + белки)
Нет
Топоизомеразы I представляют собой мономерные белки, которые релаксируют ДНК, внося одноцепочечный разрыв без затрат энергии (рис. 33,а). Внесение разры- ва происходит за счет остатка тирозина, который осуществляет нуклеофильную атаку фосфатной группы ДНК, образуя фосфотирозин (рис. 33, б). Сам фермент при этом свя- зывается с высвободившимся 3'- или 5'-концом цепи. В зависимости от того, к какому концу присоединяется топоизомераза, выделяют:
– топоизомеразы IA типа, связывающиеся с 5'-концом; снимают только отрица­тельную суперспирализацию;
– топоизомеразы IB типа, связывающиеся с 3'-концом; снимают как положитель­ную, так и отрицательную суперспирализацию.
>>> 56
>>>  Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
а
Связывание
Topo I
б
Тирозин
Разрезание цепи; 
формирование 
ковалентной связи
HO
Цепь ДНК
Протаскивание
3'-конца
под другой цепью;
лигирование
Ty r
p
Диссоциация
Topo I
Рис.33. Механизм действия  топоизомеразы I типа (а)   через образование ковалентной  связи белок-ДНК (б)
Такой механизм действия не требует затрат энергии, т. е. при работе топоизомераз I типа АТР не расходуется. Число витков при этом изменяется на 1.
Топоизомеразы I типа известны у бактерий, архей, некоторых вирусов, например вируса оспы, в клетках эукариот.
Топоизомеразы II функционируют в клетках прокариот в виде тетрамеров, в клетках эукариот — в виде димеров. Они осуществляют АТР-зависимое расщепле­ние обеих цепей ДНК с последующим переносом цепей через разрыв и его лигирова­нием (рис. 34) [24]. Разрыв происходит за счет связывания тирозинов топоизомеразы с G-сегментом (от англ. gate — ворота) ДНК с образованием двух новых 5'-фосфоди­эфирных связей. В образовавшийся разрыв проходит другая часть ДНК-дуплекса — Т-сегмент (от англ. transport — перенос). Таким образом, число положительных или отрицательных супервитков изменяется на 2. Топоизомеразы II могут катенировать и декатенировать узлы ДНК. Относящаяся к этому типу ДНК-гираза Е. coli вносит отрицательные супервитки.
Топоизомеразы II, как и топоизомеразы I, подразделяют на 2 группы: IIA и IIB. Однако анализ структур топоизомераз IА, IIА и IIB выявил их большое структурное сходство, в частности наличие специальной складки для связывания с ионами ме­таллов.
ДНК-гиразы — это специфические ферменты прокариот, топоизомеразы, вы­зывающие образование отрицательных супервитков в релаксированной кольцевой молекуле ДНК. ДНК-гираза относится к топоизомеразам типа II и вносит в ДНК двуцепочечный разрыв. ДНК-гираза является тетрамерным белком, состоящим
>>> 57
>>>
а
Суперскрученная 
форма ДНК
б
G-сегмент
TOPO II
Релаксированная, 
декатенированная 
форма ДНК
Т-сегмент
TOPO II
Катенированная 
форма ДНК
ATP
>>> 58
ADP + Pi
Pi
Рис.34. Декатенирование ДНК спомощью топоизомераз II типа (а). Механизм действия 
топоизомеразы II типа (б) (адаптировано из[24])
>>>  Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
из 2 субъединиц типа А, GyrA, и двух субъединиц типа В, GyrB. Структурно белко­вый комплекс представляет собой три пары «шлюзовых ворот», через которые про­исходит последовательный перенос сегмента ДНК с образованием 2 отрицатель­ных супервитков. N-концевой створ образован АТФ-азными доменами субъединиц GyrB, С-концевой — субъединицами GyrA. Связывание 2 молекул АТР приводит к закрытию ворот, гидролиз, напротив, открывает их. Расщепление и восстановле­ние исходной структуры ДНК-дуплекса осуществляется каталитическим центром, сформированным всеми субъединицами гиразы. В общем случае фермент взаимо­действует с ДНК так, что ДНК наматывается вокруг белка. В тех местах ДНК, кото­рые связаны с гиразой, возникает положительная сверхспирализация. Фермент вно­сит двуцепочечный разрыв в ДНК и переносит двойную цепь с внутренней стороны спирали на внешнюю. После этого гираза сшивает оба разрыва, превращая, таким образом, положительные супервитки в отрицательные. Этот процесс носит назва­ние «модели инверсии знака». Скорость работы гиразы достигает около 100 супер­витков в минуту.
Связывание гиразы является специфическим; в ДНК E. coli было об­наружено 2 специфических сайта с консенсусной последовательностью 5'-RNNNRNNRTGRYCTYNYNGNY-3' (21 нт) (R — пурины, Y — пиримидины, N — любой). Было установлено, что разрыв происходит между нуклеотидами TG (выделено выше). Во всем геноме E. coli предположительно есть около 45–50 крупных сайтов связывания с ДНК-гиразой, однако не все они функциональны. Имеется также почти 10 тыс. сайтов, характеризующихся более слабым связыванием гиразой. Это означает, что крупные сайты составляют приблизительно 0,5 % от всех возможных сайтов свя­зывания. Однако даже эти сайты в подавляющем большинстве случаев не проявляют никакой активности и работают лишь тогда, когда концентрация гиразы чрезвычайно высока.
Помимо ДНК-гиразы, индуцирующей образование отрицательных супервитков, существует также обратная гираза, вызывающая образование положительных супер­витков. Обратная гираза представляет собой уникальную комбинацию классической топоизомеразы I типа и белкового комплекса с геликазными свойствами. В более об­щем понимании этот комплекс принадлежит к классическому семейству топоизомераз II типа, однако обладает уникальной способностью образовывать отрицательный торо­идальный супервиток в сегменте ДНК. На данный момент обратная гираза обнаружена во всех гипертермофильных организмах, в то время как ДНК-гираза обнаружена лишь у мезофилов. Обратная гираза имеется как у бактерий, так и у архей, однако ДНК-ги­раза обнаружена только у бактерий, хотя у галофильных архей (требующих для роста наличия высоких концентраций соли) выявлены гены, предположительно кодирующие ДНК-гиразу. Наличие обратной гиразы у термофильных архей связывают с наличием у них генетических элементов (плазмид, вирусных ДНК) в уникальной положительно закрученной форме, в то время как плазмиды мезофильных архей и бактерий закручены отрицательно.
>>> 59
>>>
СОБЫТИЯ ВРЕПЛИКАТИВНОЙ ВИЛКЕ ДНК E.COLI. СТРУКТУРА ORI РЕПЛИКАЦИИ ДНК E.COLI. РОЛЬ БЕЛКА DnaA
E.coli является модельным организмом при изучении репликации прокариот, не­смотря на то что другие бактерии проявляют с ним много общего. Репликация ДНК E.coli начинается в сиквенс-специфичном месте начала репликации — ori. Чем больше размер генома, тем большее количество ori ему необходимо для инициации реплика­ции: у E.coli, бактериофага лямбда, вируса SV40 — один ori, в эукариотических клет­ках — множественные начала репликации, расположенные на расстоянии ~ 20 тпн друг от друга.
Репликация E. coli является двунаправленной и возникает из одного источника репликации oriC (originof chromosomalreplication). Процесс состоит из трех этапов: инициации, элонгации и терминации.
Инициация. Условия среды, которые поддерживают быстрый рост бактерий, так­же соответствуют и более короткому времени инициации репликации в них, т. е. вре­мя удвоения ДНК в быстрорастущих клетках меньше по сравнению с медленнорасту­щими клетками. Другими словами, вполне возможно, что в условиях быстрого роста исходные клетки начнут повторно реплицировать свою ДНК во время предыдущего раунда репликации. По этой причине начало репликации должно подвергаться стро­гой регуляции. У бактерий сборка реплисомы в месте ori регулируется ассоциацией белок-нуклеинового комплекса. OriC представляет собой регион ~ 260 пн, который содержит 13–16 пн (в зависимости от вида) АТ-богатый участок — DNAunwinding element (DUE) и множественные сайты посадки белка DnaA (рис. 35). Это относи­тельно небольшой белок с молекулярной массой 52,5 кДа, содержащий 467 ак. В ге­номе E.coliесть 11 сайтов АТР-зависимого связывания DnaA, три из которых — R1, R2 и R4 — обладают крайне высокой аффинностью к DnaA; они имеют консерватив­ную 9-нуклеотидную консенсусную последовательность 5'-TTAT(C/A)CACA. DnaA существует с двух формах: активной DnaA-ATP и неактивной DnaA-ADP. Обе формы с одинаковым сродством связываются с высокоаффинными участками на протяжении большей части клеточного цикла. Эти сайты представляют собой специфическое ме­сто, в котором формируется реплисома, т. е. комплекс, осуществляющий репликацию. Остальные восемь сайтов связываются с DnaA-ATP с более низкой аффинностью. Во время инициации DnaA связывается с высокой аффинностью с сайтом R4, «па­дает» на соседний сайт с низкой аффинностью и постепенно заполняет все сайты. Таким образом, связывание DnaA с oriC напоминает кооперативные взаимодействия. Связывание с этими сайтами изменяет нативную конформацию ori. Предполагается, что вызванное связыванием с DnaA появление оцДНК способствует разделению це­пей, что позволяет большему количеству DnaA связываться с раскрученной областью (рис. 36). Затем «погрузчик» геликазы DnaC взаимодействует с DnaA, связанным с оцДНК, и привлекает геликазу DnaB, которая, собственно, и раскручивает ДНК-ду­плекс, до тех пор пока активируемая ею праймаза DnaG в составе праймосомы (с ге-
>>> 60
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]