Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Репликация ДНК прокариот и вирусов. Учебное пособие.pdf
X
- •Принципы репликации
- •Ферментативная система синтеза ДНК in vitro. Активирование ДНК
- •Праймирование репликации ДНК фагов G4 и ФX174. Праймаза и праймосома
- •Репликация ДНК аденовируса
- •Модель «заячьи уши»
- •Репликация ДНК фага Т7. «Концевая избыточность»
- •Белок 32 гена фага Т4. Его свойства и функции. Другие SSB их функции
- •Топоизомеразы. Механизм действия релаксаз и гираз. Модель инверсии знака
- •Список литературы

>>> Ферментативная система синтеза ДНК in vitro. Активирование ДНК
ность продукта, чтобы квалифицировать его именно как ДНК (критерий, которого достигли очень немногие исследователи на тот момент). Первоначально Корнберг забрал
статьи, но они все равно были опубликованы в майском выпуске JBC 1958 г. после того,
как сменился редактор [1, 2]. Эта работа принесла ему Нобелевскую премию по физиологии и медицине в 1959 г., которую он раздел с Северо Очоа. Следующим шагом
А. Корнберга станет синтез ДНК, которая обладает генетической активностью, и он
будет заниматься ею на протяжении почти десяти лет.
Таким образом стали известны все компоненты, необходимые для синтеза ДНК
invitro:
1) ДНК-матрица — образец, по которому строятся новые цепи ДНК;
2) активированные нуклеотиды (dATP, dGTP, dTTP, dCTP) — «кирпичики», из ко-
торых строятся дочерние цепи;
3) ДНК-полимераза, которая синтезирует новую цепь ДНК;
4) ионы магния, без которых фермент не работает.
Нативная двуцепочечная ДНК, не имеющая повреждений, не может эффективно
использоваться в системе синтеза ДНК. Выделенную нативную форму ДНК-матрицы
необходимо активировать, т. е. поместить в нее потенциальные затравки (рис. 7). Акти-
5'
Щелочь,
нагрев
3'
5'
Эндонуклеаза
5'
1
2
Экзонуклеаза III
3
5'
3'
3'-ОН
3'
3'-ОН
Синтез ДНК
5'
3'-ОН
3'
5'
Синтез ДНК
5'
Синтез ДНК
5'3'
5'
5'
3'-ОН
3'
Рис.7. Способы активации нативного ДНК-дуплекса спомощью физических
5' 5'
иферментативных подходов
>>> 11

5' 5'
5'
5'
5'
5'
5'
5'
1
2
3
5'
5'
5'3'
3'
3'
3'
3'-ОН
3'-ОН
3'-ОН
Синтез ДНК
Синтез ДНК
Экзонуклеаза III
Эндо-
нуклеаза
Щелочь,
нагрев
Синтез ДНК
3'-ОН
3'
3'
O
N
>>>
вировать ДНК можно либо денатурацией щелочью или нагреванием (1), либо обработкой с помощью экзонуклеазы III из E.coli (2), либо внесением ников (одноцепочечных
разрывов) с помощью различных эндонуклеаз (3). Во всех случаях матрицей для синтеза новых цепей будет служить одноцепочечная ДНК, а затравкой — 3'-гидроксильная
группа на конце двуцепочечной ДНК, спаренной с матрицей. В том случае, если эндонуклеаза вносит одноцепочечный разрыв с формированием 3'-фосфатной группы, ДНК
не является активированной.
Прямым доказательством того, что затравкой служит 3'-гидроксильный конец,
является эксперимент с дидезоксинуклеозидтрифосфатом (рис. 8). Если использовать
активированный нуклеотид, меченый по α-фосфату, то он будет включаться в растущую полимерную цепь и всегда обнаруживаться на ее 3'-конце. Это говорит о том, что
он сам включается, но дальнейший рост цепи невозможен, так как нет 3'-гидроксильного конца. Этот эксперимент также доказывает и униполярность репликации в направлении 5'→3'.
O
NHNH
NH
CH
2
3
N
O
HNHN
5'-PO
·
O
P
·
O
2 –
3
OCH
O
N
N
2
O
O
N
O
NH
CH
N
·
O
2
3
O
OCH
P
·
O
2
O
N
O
O
O
3'-OH
OO
·
O
P
O
OCH
P
·
O
·
2
OH
O
*P
P
·
O
O
·
O
N
OCH
O
P
·
O
NH
2
N
N
2
O
HH
N
N
OCH
O
O
*P
O
2
·
O
O
OCH
N
NH
2
N
N
2
O
H
H
N
Рис.8. Доказательство принципа униполярности приферментативном синтезе ДНК
>>> 12

>>> Метод ближайших соседей и антипараллельности репликации
МЕТОД БЛИЖАЙШИХ СОСЕДЕЙ
ВДОКАЗАТЕЛЬСТВЕ КОМПЛЕМЕНТАРНОСТИ
ИАНТИПАРАЛЛЕЛЬНОСТИ РЕПЛИКАЦИИ
В 1950–1953 гг. Эрвин Чаргафф определил количественное соотношение азотистых оснований, входящих в состав молекул ДНК. Он показал, что: а) общее количество адениновых остатков в каждой молекуле ДНК равно количеству тиминовых
остатков, а количество гуаниновых — количеству цитозиновых; б) мольное соотношение пуринов и пиримидинов равно 1; в) количество оснований с 6-аминогруппой
равно количеству оснований с 6-кетогруппой; г) сумма частей 4 оснований равна единице (А + Т) + (G + C) = 100 %. Также он ввел понятие видового индекса: соотношение G + C/А + Т было названо коэффициентом специфичности. Также Чаргафф доказал, что ДНК обладает видовой специфичностью и отверг гипотезы о существовании
многих разновидностей ДНК в живых системах. Правила Чаргаффа использовали
Френсис Крик и Джеймс Уотсон при построении структурной модели ДНК в виде
двойной спирали.
Ясно, что наиболее надежным доказательством идентичности структур синтезированной и исходной цепей ДНК при репликации явилось бы установление идентичности
нуклеотидных последовательностей в этих молекулах. Однако, поскольку определение
нуклеотидных последовательностей длинных отрезков ДНК на тот момент было еще
нерешенной экспериментальной задачей, Корнбергу приходилось полагаться на менее
прямые способы доказательства идентичности. Он разработал альтернативный подход
к решению этой проблемы — так называемый метод определения частот ближайших
соседей с привлечением [32P]-радиоактивно меченых изотопов по α-фосфатной группе
в одном из 4 dNTP. Очевидно, что для нуклеиновой кислоты, содержащей четыре разных
основания, существует 16 возможных комбинаций динуклеотидных последовательностей. Метод ближайших соседей состоит в определении абсолютной частоты, с которой
каждая из этих динуклеотидных последовательностей встречается в исследуемом образце ДНК. Эксперимент состоит в следующем. После проведения синтеза в присутствии
меченого α-dNTP конечная ДНК подвергается обработке смесью ДНКазы микрококков
и диэстеразы селезенки до получения 3'-dNMP, после чего проводится анализ мононуклеотидного состава дочерней и матричной цепей ДНК. При подобной ферментативной обработке ДНК 32Р изотоп остается на 3'-конце того нуклеотида, с которым исходно
участвовал в формировании фосфодиэфирной связи меченый dNTP (рис. 9, а). При анализе данных сравнивают частоту, с которой нуклеотид, исходно меченный по 5'-положению, располагается возле соседнего нуклеотида вновь синтезированной цепи ДНК.
Подобные расчеты проводят отдельно для каждого эксперимента с использованием одного меченого dNTP. Полученные данные позволяют сравнить частоту встречаемости
каждого димера. Отдельно стоит отметить, что при анализе мононуклеотидов должны
выполняться правила Чаргаффа для обеих цепей ДНК. Совокупность всех полученных Корнбергом данных позволила сформулировать следующие выводы. Во-первых,
>>> 13

>>>
в молекуле ДНК встречаются все 16 нуклеотидных последовательностей, но частота
их встречаемости существенно зависит от источника ДНК (согласно видовому индексу) и отличается от случайного распределения. Следовательно, расположение нуклеотидов подчиняется определенной закономерности. Во-вторых, частота встречаемости
отдельных динуклеотидов в матричной цепи совпадает с частотой их встречаемости
в дочерней цепи. В-третьи, антипараллельность синтеза ДНК вытекает из следующих
соображений. Частоты встречаемости димеров АрА и ТрТ, СрС и GpG совпадают. Соответствие остальных последовательностей зависит от того, как направлены цепи друг
относительно друга. Например, для последовательности AGTC при прямой полярности будет наблюдаться совпадение частот встречаемости в парах ApG и TpC или GpT
и CpA, а при обратной полярности — в парах ApG и CpT или GpT и ApC (рис. 9, б).
Из экспериментальных данных полярность получилась обратной. И, наконец, в-четвертых, после проведения «второго» раунда с использованием «горячей» матричной цепи
и последующего анализа состава матричной цепи становится очевидным, что ДНК-полимераза синтезирует цепь ДНК антипараллельно и последовательность оснований
в матрице при ферментативном синтезе полностью воспроизводится.
а
N
N
N
1
p p
N
2
3
4
OH
X
Синтез
p
*
OH
p
p
б
Меченые по
5´-концу dNPT
dATP
dGTP
dTTP
dAMP dGMP dTMP dCMP
ApA
ApG
ApT
N
N
N
1
2
X XN
N
3
4
Расщепление
OH
*
Меченые по 3´-концу dNMP
0,024
0,045
0,031
GpA
0,065
GpG
0,090
GpT
0,060
TpA
TpG
TpT
0,012
0,063
0,026
N
1
+++
CpA
CpG
CpT
2
0,063
0,139
0,045
N
3
+ +
N
4
OH
*
>>> 14
dCTP
Σ
ApC
0,064
0,164 0,337 0,162 0,337
GpC
0,122
TpC
0,061
CpC
0,090
Рис.9. Метод ближайших соседей: а— принцип формирования динуклеотидов;
б — распределение частот их встречаемости

>>> Строение и каталитические активности ДНК-полимеразы I E. coli
СТРОЕНИЕ ИКАТАЛИТИЧЕСКИЕ АКТИВНОСТИ
ДНК-ПОЛИМЕРАЗЫ I E.COLI
ДНК-полимераза I E.coli, pol I, впервые была выделена в 1956 г. Белок кодируется
геном polA, имеет 928 аминокислот и молекулярную массу 103 кДа. Копийность фермента составляет ~ 400 мол/клетку. Это моносубъединичный процессивный фермент
способен катализировать синтез 25–50-звенного олигонуклеотида без диссоциации
с ДНК-матрицы. (Под процессивностью понимают количество актов реакции, катализируемое ферментом до момента диссоциации. Антонимом является дистрибутивность.)
Полимераза I относится к структурному семейству А и имеет трехдоменную структуру:
два домена реализуют экзонуклеазную активность и один — полимеразную (рис. 10).
Механизм полимеризации включает участие двух ионов магния. Один из ионов атакует
3'-гидроксильную группу dNMP праймерной цепи, второй стабилизирует отрицательный заряд кислорода. Точность синтеза ДНК-полимеразы составляет 10–4–10–5. Это означает, что на 10 000 или 100 000 каталитических актов один нуклеотид встраивается
некорректно. Скорость синтеза составляет 10–20 нт/с.
Фрагмент Кленова
Корректирующий
5’-3’-экзонуклеазный
pol I
Полимеразный
домен
домен
домен
Рис.10. Структура идоменная организация ДНК-полимеразы I E.coli (справа)
иее усеченного варианта — фрагмента Кленова (слева).
Зеленым ирозовым показаны две цепи ДНК-дуплекса (PDB)
>>> 15

>>>
У pol I обнаружены четыре разные каталитические активности:
1) 5'→3' ДНК-зависимая ДНК-полимеразная: DNAn + dNTP → DNA
2) 5'→3' РНК-зависимая ДНК-полимеразная: RNAn + dNTP → RNAndNMP + PPi
(появляется с частотой 0,1–0,4 % от основной ДНК-полимеразной активности);
3) экзонуклеазная активность в направлении 5'→3' и экзонуклеазная, или корректирующая, активность в направлении 3'→5': DNAn → DNA
активность проявляется при наличии неспаренного основания на 3'-конце. При ошибке включения фермент «возвращается» назад по матричной цепи ДНК и «откусывает»
некорректно встроенный нуклеотид. Все репликативные ДНК-полимеразы обладают
такой активностью;
4) эндонуклеазная активность. Если на пути фермента встречается короткий, менее 10 нуклеотидов, неспаренный 5'-конец, то полимераза сначала проявляет эндонуклеазную активность и «откусывает» весь свисающий конец в месте перехода «одноцепочечная — двуцепочечная ДНК», а затем проявляет экзонуклеазную 5'→3' активность, т. е. «откусывает» по одному нуклеотиду. Если неспаренный 5'-конец длинный,
то фермент способен использовать его как новую матрицу.
При мягком расщеплении pol I субтилизином можно получить два активных фрагмента: один (аминокислотные остатки с 324 по 928) будет обладать полимеразной
и 3'→5' экзонуклеазной активностями, а другой — только 5'→3' экзонуклеазной активностью (аминокислотные остатки с 1 по 323). Первый фермент был получен в 1970 г.
и называется фрагментом Кленова. Он чрезвычайно полезен для исследовательских
задач, таких как синтез двуцепочечной ДНК по протяженным одноцепочечным матрицам, заполнение 3'-одноцепочечных участков для получения ДНК с тупыми концами,
вырезание выступающих 3'-концов, подготовка радиоактивных ДНК-зондов. Фрагмент
Кленова также широко использовался для амплификации ДНК в процессе полимеразной цепной реакции, ПЦР, до того момента, когда был заменен термостабильными
ферментами, такими, например, как Taq-полимераза, открытая в 1976 г. Кроме того,
с помощью направленного мутагенеза был получен и фрагмент Кленова «exo-», не обладающий корректорской активностью, который используется для некоторых приложений при получении флуоресцентно меченых зондов для микрочипов, а также при синтезе dA- и dT-хвостов для лигирования адаптеров ДНК при подготовке библиотек ДНК
для последующего полногеномного секвенирования.
+ dNMP. Корректирующая
n–1
n+1
+ PPi;
СРАВНИТЕЛЬНЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
ДНК-ПОЛИМЕРАЗЫI, ДНК-ПОЛИМЕРАЗЫII
ИДНК-ПОЛИМЕРАЗЫIII E.COLI. РАЗЛИЧНЫЕ
ФОРМЫ ДНК-ПОЛИМЕРАЗЫIII E.COLI
В 1960-х гг. Артур Корнберг продолжал заниматься изучением свойств открытой
им ДНК-полимеразы I и сосредоточился на синтезе генетически активной ДНК, работая с различными бактериями. Это оказалось намного сложнее, чем просто копирова-
>>> 16

>>> Сравнительные характеристики ДНК-полимераз E. coli
ние матричной ДНК, поскольку любое нарушение приводило к потере «жизнеспособности» ДНК. При работе с крупными матричными молекулами ДНК в лабораторных
условиях практически невозможно было избежать их повреждения. Именно поэтому
А. Корнберг переключился на работу с некоторыми из самых маленьких бактериальных вирусов — фагов, таких как φX174 и M13, паразитирующих в клетках E.coli. Их
сравнительно небольшие геномы легче сохранять неповрежденными во время работы
и их биологическую активность легко наблюдать в процессе проведения эксперимента. Роберт Синсхаймер обнаружил, что геном вируса φX174 представлен замкнутой
кольцевой одноцепочечной ДНК, но сразу же после его попадания в клетку хозяина
трансформируется в двуцепочечную форму. В отсутствие белков капсида эта ДНК сама
по себе способна заразить другую бактериальную клетку. Аналогичная картина была
обнаружена и для ДНК фага M13. Корнберг и его команда смогли синтезировать обе
вирусные ДНК, но не в кольцевой, а в линейной форме. Оказалось, что вирулентна
именно циклическая форма генома. Соответственно, возник вопрос о существовании
фермента, способного сшивать свободные концы синтезированных нитей ДНК, а также любые разрывы в ДНК. В 1967 г. пять различных исследовательских групп, включая группу А. Корнберга, нашли фермент ДНК-лигазу. К концу этого года Корнберг
синтезировал ДНК фага φX174 в такой же кольцевой форме. Она имела тот же состав,
нуклеотидную последовательность и инфекционность, как и ДНК природного вируса.
Чтобы сообщить об этом, 14 декабря Корнберг и новостное бюро Стэнфорда
провели пресс-конференцию, приуроченную к публикации исследований в журнале
PNAS. Журналистов заранее предупредили, чтобы те не писали в заголовках о «синтезированной в пробирке жизни». В конце концов, хотя синтез ДНК и был биохимическим маркером, вирусная ДНК не имеет собственной формы жизни вне более крупной
клеточной системы. В тот же день президент США Линдон Б. Джонсон должен был
выступить в Смитсоновском институте, и его спичрайтер попросил Стэнфорд подготовить представление о работе с ДНК. Текст был написан, но, когда Джонсон начал читать подготовленное заявление, он резко отложил его и сказал своей аудитории:
«Некоторые гении в Стэнфордском университете создали жизнь в пробирке!» К ужасу Корнберга, все газетные статьи о его работе на следующий день начались именно
с этого заявления.
Позже Корнберг показал, что у ДНК-полимеразы I есть и корректирующая активность, т. е. способность удалять некорректно встроенные нуклеотиды в процессе синтеза новой цепи ДНК. Кроме того, он обнаружил, что pol I способна «находить» небольшие повреждения в сахарофосфатном остове ДНК и удалять часть нуклеотидов вокруг
них, чтобы цепь сохраняла комплементарность. Она также играет большую роль в репарации ДНК. При возникновении повреждений другой фермент закрывает основную
цепь, ДНК-полимераза связывается с этим белок-нуклеиновым комплексом, удаляет
поврежденные нуклеотиды, а затем заполняет брешь, используя противоположную нативную цепь в качестве матрицы. Одноцепочечный разрыв обычно зашивается ДНК-лигазой. По иронии судьбы, открытие А. Корнбергом и другими авторами замечательных
«ремонтных» функций ДНК-полимеразы заставило некоторых ученых задуматься, действительно ли фермент Корнберга отвечает за репликацию ДНК. Сомнения усилились
>>> 17

>>>
с открытием Джоном Кэрнсом в 1969 г. мутантной формы кишечной палочки, которая
может нормально делиться, хотя ее ДНК-полимераза I лишена полимеразной активности. Лаборант Кэрнса Паула Де Лючия сделала тысячи экстрактов из колоний клеток
E.coli и проанализировала их на наличие ДНК-полимеразной активности. 3478-й клон
содержал мутант pol A, который был назван Кэрнсом «Паула» (De Lucia). А Корнберг
был «оправдан» своим сыном Томасом в 1971 г., который обнаружил вторую ДНК-полимеразу в мутантной кишечной палочке Джона Кэрнса, отличающуюся по структуре,
но также способную синтезировать и редактировать ДНК. В течение следующего года
он нашел и третью ДНК-полимеразу. Это был сенсационный научный дебют Томаса,
талантливого виолончелиста, учащегося в школе Джулиард, который только недавно
взялся за лабораторную работу после травмы руки, помешавшей его работе на сцене.
Таким образом, стало понятно, что клетки E.coli содержат, по крайней мере, три
ДНК-полимеразы. На сегодня основной ролью pol I в процессе репликации считается застройка брешей, образующихся после выщепления РНК-праймеров ферментом
РНКаза H (от англ. hybrid) или вследствие ник-трансляции.
ДНК-полимераза II, pol II, кодируется геном polBилиdinA, состоит из 783 аминокислот и имеет молекулярную массу 90 кДа. Этот моносубъединичный фермент
принадлежит к структурному семейству В и имеет доменную структуру. Первая аминокислота — формилметионин — отщепляется при созревании белка, аминокислоты
2-783 реализуют корректирующую, полимеразную и праймазную активности. Механизм полимеризации включает участие двух ионов магния. Процессивность фермента
сильно возрастает в присутствии вспомогательных белков — скользящего зажима (beta
slidingclamp), продукта гена dnaN, и погрузчика (clamploader). Точность синтеза ДНК,
катализируемого pol II, составляет 2•10–6, частота внесения делеций 10–6, что выше,
чем для pol III. Скорость синтеза составляет около 20–40 нт/мин, т. е. ~ 5 % от показателя для pol I. Копийность pol II составляет ~ 30–50 мол/клетку, однако при действии
ДНК-повреждающих агентов клетка запускает SOS-ответ, при котором концентрация
pol II резко увеличивается до 350–1000 мол/клетку.
Функциональность pol II in vivo до конца не установлена. Предполагается, что
она взаимодействует с различными белками, в том числе с pol III holo, увеличивая ее
точность и процессивность, поскольку способна корректировать и/или синтезировать
через некорректно встроенные pol III нуклеотиды. При репликации принимает участие
в основном в процессе синтеза отстающей цепи. Предполагается, что существует механизм, при котором при остановке или потере функциональности основной pol III в репликативную вилку может специфически привлекаться pol II, что позволяет избежать
коллапса и продолжить репликацию. ДНК-полимераза II способна принимать участие
в процессе репарации межцепочечных сшивок. Кроме того, pol II взаимодействует с pol
IV и конкурирует с ней за связывание с 3'-концом в процессе репарации, тем самым
предотвращая вовлечение менее точной ДНК-полимеразы в процесс синтеза ДНК.
ДНК-полимераза II не так хорошо изучена, поэтому существует много предполагаемых функций этого фермента, которые являются вероятными и в конечном итоге
не подтверждены in vivo. Среди них: репарация ДНК, поврежденной ультрафиолетовым облучением; восстановление движения репликативной вилки при УФ-облучении
>>> 18

>>> Сравнительные характеристики ДНК-полимераз E. coli
клеток E.coli; адаптивный мутагенез и роль в процессах, связанных
а
β
с изменением продолжительности
жизни клетки.
В 1970-х гг. Томас Корнберг идентифицировал комплекс
из семи различных белков, инициирующий синтез цепи ДНК, а также многокомпонентный фермент,
α
ε
θ
τ
δ/δʹ
γ
который он назвал holo-ферментом ДНК-полимеразы III, pol III
(рис. 11, а). Это высокопроцес-
Геликаза
χ
ψ
сивный, селективный фермент,
осуществляющий репликацию
в клетках E.coli. Его представленность ~ 5–10 мол/клетку, скорость
б
Отстающая
цепь
синтеза ~ 1000 нт/с. ДНК-полимераза III взаимодействует со всеми
остальными ДНК-полимеразами
SSB
бактерии: pol I, pol II, pol IV, pol V.
Имеет корректорскую активность.
Функционально pol III представ-
Праймаза
лена в клетке двумя формами:
core- и holo-ферментом. Первый
включает в себя ферментативные
активности, а holo-фермент дополнительно содержит «скользящий
зажим» и комплекс-погрузчик.
Лидирующая
РНК-праймер
цепь
Движение
репликативной
вилки
В репликативной вилке holo-фермент работает в составной форме:
каталитически активный комплекс
взаимодействует с гамма-комплексом и катализирует синтез лидирующей или отстающей цепи ДНК.
Рис.11. Строение core- иholo-фермента
ДНК-полимеразы III E.coli (а). Распределение
активных молекул pol III врепликативной вилке
E.coli (б) (адаптировано из[5, 6])
На сегодняшний день считается,
что репликация бактериальной
ДНК проходит не в составе реплисомы в репликативной фабрике, а имеет две четко сформированные репликативные
вилки, расходящиеся от ori E.coli в двух направлениях вдоль всего генома [3]. При этом
репликативная вилка содержит три каталитически активные молекулы фермента pol
III (рис. 11, б). Одна молекула ведет синтез лидирующей цепи ДНК, а две другие кооперативно функционируют на отстающий цепи, поддерживая более полный синтез
фрагментов Оказаки и повышая процессивность репликативной вилки в целом [4–6].
>>> 19

>>>
Состав holo-фермента pol III:
• три core-фермента pol III, каждый из которых состоит из α, ε и θ-субъединицы:
α-субъединица, кодируемая геном dnaE, обладает полимеразной активностью;
ε-субъединица, кодируемая геном dnaQ, обладает 3'→5'-экзонуклеазной ак-
тивностью;
θ-субъединица, кодируемая геном holE, стимулирует корректирующую функ-
цию ε-субъединицы;
• три β-комплекса, кодируемых геном dnaN; комплекс представляет собой димер,
который действует как «скользящий зажим» и удерживает полимеразу на ДНК, не давая ей диссоциировать;
• γ-комплекс, который обеспечивает загрузку реплисомы при репликации фрагментов Оказаки на отстающей цепи. Гамма-комплекс состоит из γ-субъединицы, кодируемой геном dnaX; 3 τ-субъединиц, также кодируемых геном dnaX, за счет которых
мультимеризуется core-фермент; 3 субъединиц δ и δ', кодируемых генами holAи holB
соответственно; δ-субъединица принимает непосредственное участие в синтезе отстающей цепи;
• субъединицы χ и ψ, кодируемые генами holD и holC соответственно, которые
образуют комплекс 1 : 1, связываются с γ-субъединицей и увеличивают ее аффинность
к δ- и δ'-субъединицам. Субъединица χ также может играть роль в перемещении ферментативного комплекса от РНК-праймера к ДНК.
Строение и функции ДНК-полимераз IV и V E.coli будут рассмотрены отдельно
при описании процесса синтеза ДНК через повреждение.
СХЕМЫ РЕПЛИКАЦИИ IN VIVO КОРНБЕРГА,
КЭРНСА ИОКАЗАКИ. ДОКАЗАТЕЛЬСТВА СХЕМЫ
ПРЕРЫВИСТОЙ РЕПЛИКАЦИИ ОКАЗАКИ.
ДНК-ЛИГАЗЫ
После создания модели двуцепочечной спирали ДНК в 1953 г. Уотсон и Крик
высказали предположение, что две цепи могут раскручиваться и разделяться, после
чего каждая из них служит матрицей, к которой путем спаривания гетероциклических
оснований достраивается комплементарная цепочка нуклеотидов. Таким образом,
из каждой исходной молекулы ДНК получаются две копиис идентичной структурой.
В 1956 г. Корнбергу удалось продемонстрировать in vitro синтез молекулы ДНК [7].
Позже в 1960 г. он предложил схему непрерывной антипараллельной репликации
invivo (рис. 12). Гипотетическая модель описывала репликацию ДНК как одновременный синтез двух цепей ДНК в направлении 5'→3'. Сначала неизвестный фактор должен
денатурировать концы линейной молекулы ДНК, после чего 3'-концы ДНК должны загибаться и служить затравками для работы ДНК-полимеразы. Для этого концы молекулы ДНК должны иметь палиндромные последовательности. Фермент осуществляет
>>> 20
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]
