Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Биология и патология рыб. Учебное пособие
.pdf
напоминает описторхиса. Паразитирует у человека и плотоядных животных
в желчных протоках печени, в поджелудочной железе и в желчном пузыре, а личиночные стадии (метацеркарии) – у дополнительных хозяев. Характеризуется
поражением печени и интоксикацией организма.
Развитие
и совершается с участием промеж уточных хозяев – моллюсков
monochourious
пресноводные рыбы (более 70 видов), преимущественно из семейства карповых.
Эпизоотологические данные.
распространен, главным образом, на территории Дальнего Востока в районах
нижнего Приамурья среди коренных жителей этих районов. Людям, занимающимся рыбным промыслом и переработкой рыбы, свойственны привычки употреблять
в пищу сырую или плохо провяленную рыбу, кормить ею собак. Это и приводит
к частым случаям заражения людей и плотоядных ж ивотных. Зараженность карповых рыб метацеркариями клонорхиса в водоемах Приамурья также значительна и
достигает в среднем 15–17 %.
Клинические признаки
малокровие, желтуха, расстройство ж елудочно-кишечного тракта, потеря веса,
длительное течение болезни и потеря работоспособности.
Диагноз
яиц возбудителя (у людей и животных). Учитывают также клинические признаки
болезни. Проводят гельминтологическое исследование рыб, обит ающих в водоемах, на зараженность их личинками описторхисов, ставят биопробу (см. Описторхоз).
Меры борьбы
допущении в пищу сырой и необезвреженной рыбы. Выявляют все виды рыб, н осителей метацеркарий – клонорхисов. В сыром виде в продажу такую рыбу не
допускают, ее проваривают или прожаривают, а также используют для пригото вления консервов. Ведут разъяснительную работу среди населения об опасности
клонорхоза и мерах профилактики.
Метагонимоз
Метагонимоз – гельминтозное заболевание человека и плотоядных живо тных, вызываемое трематодой
семейства
Возбудитель –
Длина тела 1,5 мм, ширина – 0,4–0,8 мм, густо покрыта шипиками. Выделяет яйца
с крышечкой на одном конце.
Развитие гельминта происходит с участием промеж уточных хозяев. Бол ьной человек или животное выделяет яйца гельминта, которые, по пав в воду, заглатываются первыми промежуточными хозяевами – пресноводными моллюсками
Semisulcospira cancellata
затем он превращается в спороцисту, редию и церкария. Церкарии в огромном
количестве выходят из моллюска и внедряются в дополнительных хозяев – пресноводных рыб (преимущественно карповых), проникают под чешую, в кожу, плавники, мускулатуру. Человек и ж ивотные заражаются метагонимозом при употреблении в пищу сырой необеззараженной рыбы. Метацеркарии с чешуи могут попасть на руки человека, а затем в рот и заразить его.
C. sinensis
клонорхиса протекает аналогично развитию
Parafossalurus
и
P. monochourious
ставят на основании исследования фекалий и обнаруж ения в них
те же, что и при описторхозе, но главное заключается в не-
Heterophyidae
, паразитирующей в тонком отделе кишечника.
половозрелая трематода продолговато-овальной формы.
. В организме моллюска в яйце развивается мирацидий,
Bourg. Дополнительным хозяином являются
Клонорхоз имеет природную очаговость и
у заболевших аналогичны описторхозу. Отмечаются
Metagonimus yokogawai
и
Nanophyetus salmonicola
O. felineus
из
151
Эпизоотологические данные.
ра, Уссури и рек севера Сахалина – местностях, где в пищу традиционно употребляют сырую рыбу.
Клинические признаки и патогенез.
в тонком отделе кишечника. Внедряясь в слизистую оболочку, они вызывают
атроф ию кишечного эпителия, воспалительные явления, что и приводит к нарушению пищеварения, изнурительным поносам, малокровию, анемии сл изистых
оболочек.
Диагноз
в экскрементах больных людей или ж ивотных яиц возбудителя. Проводят гельминтологическое исследование рыб, обитающих в водоемах, на зараженность их
личинками описторхисов, ставят биопробу (см. Описторхоз).
Меры борьбы.
слабо провяленную рыбу, содержащую метацеркарий паразита. Рыбу из неблагополучных водоемов перед употреблением в пищу прожаривают, проваривают или
засаливают. Лицам, соприкасающимся с зараженной вылавливаемой рыбой, необходимо мыть руки, чтобы метацеркарии не попадали на руки, а затем в рот. Необходимо проводить разъяснительную работу об опасности заражения метагоним озом среди населения.
Нанофиетоз
Нанофиетоз – инвазионная болезнь человека, домашних и диких плотоядных животных, вызываемая трематодой
Heterophyidae
регистрируют преимущественно в Хабаровском и Примо рском крае, в бассейнах
рек, впадающих в Уссури.
Возбудитель –
0,45–0,47 мм в ширину.
Развитие возбудителя происходит с участием промежуточных хозяев. Яйца
с фекалиями дефинитивных хозяев попадают в водоемы, и в течение трех месяцев
в яйцах развивается личинка (мирацидий), которая затем их покидает. Мирацидий, плавая в воде, внедряется в промежуточного хозяина – пресноводных брюхоногих моллюсков из семейства
редии и церкария. Вскоре церкарии выходят из моллюска и в воде внедряются
в дополнительных хозяв – рыб, чаще следующих видов: хариуса, сига, ленка, тайменя, кеты, гольяна, широколобки и др. Локализуются они, в основном, в мышцах,
плавниках, голове и во внутренних органах и вскоре превращаются в инвазионных
метацеркариев. Экстенсивность заражения амурских рыб метацеркариями достигает 80–90 %, при интенсивности до нескольких тысяч личинок.
Метацеркарии окружены тонкой, прозрачной соединительнотканной кап-
сулой. Человек или животное, съедая необезвреженную больную рыбу, заражае тся нанофиетозом.
ставят на основании клинических признаков и обнаружения
Нельзя употреблять в пищу сырую, плохо просоленную или
, паразитирующей в тонком отделе кишечника. Очаги заболевания
трематода, округлой формы, 0,58 –0,62 мм в длину и
Эпизоотологические данные.
ра, Уссури и рек севера Сахалина.
Клинические признаки.
кожа и внешние слизистые оболочки бледные, появляются боли в правом подр еберье, они ощущают недомогание, головокружение, т еряют аппетит.
Диагноз
гических исследований. При этом в фекалиях обнаруживают яйца гельминта.
ставят на основании клинических признаков и гельминтокопроло-
Метагонимоз распространен в бассейне Аму-
Гельминты у человека локализуются
Nanophyetus salmincola
Pleuroceridae
Метагонимоз распространен в бассейне Аму-
Люди, зараженные данной трематодой, теряют вес,
, где проходят стадии спороцисты,
из семейства
152
Меры борьбы.
ное обследование населения и животных. Исследуют промысловых рыб на пор аженность их метацеркариями трематод и таким образом выявляют неблагополу чные водоемы. Проводят мероприятия, направленные на разрыв жизненного цикла
паразита. Запрещается употреблять в пищу необезвреженную сырую рыбу, скармливать ее кошкам, собакам, пушным зверям. Медицинские и ветеринарные работники проводят разъяснительную работу среди населения неблагополучных районов.
Диоктофимоз
Диоктофимоз – гельминтозное заболевание серебристо-черных лисиц, собак, шакалов, куньих и других плотоядных животных, а также человека. Забол евание характеризуется поражением почек, почечных лоханок и интоксикацией
организма. Вызывается нематодой
Dioctophymidae
Возбудитель
длиной при ширине 3–5 мм. Самки достигают длины 100 –103 см. Размножение
происходит путем выделения яиц размером (0,077–0,083)x(0,046–0,047) мм, коричневого цвета, с крышечками на полюсах. Оболочка яйца состоит из трех слоев:
наружного, внутреннего и ж елточной мембраны.
Развитие возбудителя совершается с участием промежуточных хозяев. Половозрелые самки, локализующиеся у больного животного в почечной лоханке,
мочеточниках, мочевом пузыре, откладывают яйца, которые с мочой выводятся во
внешнюю среду. Яйца, попавшие в воду, развиваются за 25–30 дней. В них образуются личинки, которые достигают 0,28–0,31 мм длины. Яйца с развившимися
личинками заглатывают вместе с детритом первые промежуточные хозяева – олигохеты родов
ходит из яйца и мигрирует в брюшной кровеносный сосуд, где она растет и развивается. Через 45–60 дней, что зависит от температуры воды, происходит первая
линька и личинка превращается во вторую стадию, достигая при этом
0,885–1,181 мм в длину. Через 3,5-4 мес. личинка вторично линяет и превращается в личинку третьей стадии, достигающей 6,905–8,018 мм в длину. На этой стадии развития личинки происходит формирование молодых самцов и самок. Олигохеты, зараженные инвазионными личинками, поедаются рыбами – вторыми промежуточными хозяевами (чехонь, окунь, усач, шемая, шип, лопатонос, щука, сом,
гамбузия и некоторые другие карповые). Дальнейшее развитие личинки до третьей стадии происходит только в организме дефинитивного хозяина. Личинки диоктофимид, попав в кишечник окончательного хозяина, пронизывают его стенку,
попадают в полость тела и совершают миграцию по организму, достигая почечной
лоханки. В это время личинки еще дважды линяют. Жизненный цикл диоктофимид
завершается за 8,5-9 мес. Срок жизни нематоды в организме дефинитивного хозяина – до 3–5 лет.
Клинические признаки и патогенез.
гельминты локализуются у животных в почках и реж е в брюшной полости. Но
прежде чем туда попасть, нематоды совершают миграцию из желудка млекопитающего, куда они попадают с рыбой или олигохетой. Они внедряются в мышечный
слой стенки желудка, вызывая гематому. Затем мигрируют в полость тела и оказываются ближ е к печени. Проникают в ее паренхиму, а затем в почечную лохан-
В очагах распространения нанофиетоза проводят поголо в-
Dioctophyme renale
.
– очень крупная нематода красного цвета. Самец 25 –35 см
Branchiobdella
или
Lumbriculus
. В кишечнике олигохеты личинка вы-
В большинстве своем половозрелые
153
из семейства
ку. В результате стенка ее сильно растягивается и истончается, почка атрофир уется. Иногда нематода попадает в уретру. Все это приводит к значительным нарушениям функций этих органов и метаболизма всего организма. У животного или
человека отсутствуют аппетит, появляются рвота, общее истощение, угнетенное
состояние. Внутри почечной лоханки скапливается мутная кровянистая жидкость,
запах ее напоминает запах мочи. Слизистая почечной лоханки становится серов ато-белого или желтоватого цвета. На местах дегенерированных участков отклады-
ваются в виде множественных комочков соли извести.
У рыб личинки диоктофимид достигают 6,9–8,2 мм в длину и 0,19–0,2 мм
в ширину. Локализуются они во внутренних органах: в стенке кишечника, на
брюшине, брыж ейке, в гонадах, где вокруг них образуется соединительнотканная
капсула.
Диагноз
в почках и реже в других органах. При исследовании рыб обнаруживают инкапс улированных личинок в кишечнике, брыжейке, гонадах.
Лечение.
ние диоктофимид из пораженного органа.
Профилактика
мов и запрещении кормления животных сырой рыбой. В районах, неблагополу чных по диоктофимозу, не допускают собак к местам отлова и разделки рыбы.
Исключают из рациона пушных зверей сырую свеж ую рыбу, вылавливаемую
в неблагополучных по этой инвазии водоемов. Проводят разъяснительную работу
среди работников рыбного хозяйства по вопросам профилактики диоктоф имоза.
больных рыб, патологического материала, вод ы, грунта
Исследование рыб.
или свежеуснувших рыб обследуемого вида, регистрируют с указанием даты исследования, вида рыб и места вылова.
Рыб взвешивают, измеряют длину от вершины рыла до начала лучей х востового плавника. Осматривают плавники, чешую, ж абры. Участки с изменениями
просматривают под лупой и микроскопом (увеличение 2 ×8). Непосредственно
перед вскрытием рыба должна располагаться брюшной стороной к исследователю.
Ее головной конец должен быть ориентирован налево, а хвостовой – направо.
Затем делают поперечный разрез несколько впереди от анального отверстия,
чтобы не был повреждён кишечник. Просматривают брюшную полость. Внутре нние органы просматривают в следующей последовательности: мочевой пузырь,
желчный пузырь, сердце, печень, органы пищеварительного тракта (пищевод,
желудок, пилорические придатки, кишечник), селезёнку, жировую ткань, половые
железы, плавательный пузырь, почки, глаза, мускулатуру, головной и спи нной
мозг, хрящи. Каждый орган отдельно помещают в чашки Петри или на часовые
стекла и осматривают с помощью лупы.
Отпрепарированные органы помещают на стёкла для вскрытия, в чашки
Петри, кюветы, следя за тем, чтобы они не подсыхали и не касались друг друга.
ставят на основании вскрытия ж ивотных и обнаруж ения нематод
Единственный метод – хирургическое вмешательство и извлеч е-
болезни заключается в выявлении неблагополучных водое-
3.7. Исследование рыб. Правила отбора и пересылки
в ветеринарную лабораторию
Для исследования отбирают 10–15 экземпляров живых
154
После препарирования всех внутренних органов осматривают брюшную полость,
где могут встретиться личинки круглых червей, трематоды и другие паразиты.
Сначала каждый орган просматривают невооружённым глазом, обращая
внимание на его размер, цвет и форму. Отделяют по небольшому кусочку и просматривают компрессионным способом под микроскопом (при малом и большом
увеличении).
Определение жизнеспособности личинок.
ней рыбы (из цисты) плероцеркоидов помещают в подогретый (до 40 °С) физиологический раствор или в искусственный желудочный сок (100 мл 0,5 %-го раствора
поваренной соли, 0,5 г пепсина, 0,75 мл 35 %-го раствора соляной кислоты). Под
лупой осторожно раздражают личинку препаровальной иглой. Наличие даже сл абых движ ений указывает на жизнеспособность плероцеркоида.
Личинки из органов рыб освобождают от остатков ткани под контролем
лупы. На препарат наносят 2 капли 3 %-го раствора розоловой кислоты на 70 %-м
спирте на 2 мин, добавляют каплю 0,1 %-го раствора едкого калия, оставляют на
2 мин. Излишек краски смывают физиологическим раствором, препарат высушивают полоской фильтровальной бумаги, накрывают покровным стеклом и просматривают под микроскопом. Мышечная ткань и мертвые личинки окрашиваются
в розовый цвет, ж ивые личинки не окрашиваются.
Жизнеспособность личинок трематод можно определять, используя микроскоп с подогревательным столиком. Выделенных паразитов переносят на столик
(при 36-37 °С), добавляют 2-3 капли желчи или 0,5 %-го раствора трипсина. Ж ивые личинки через 5–10 минут выходят из цист.
Цисту, извлеченную из ткани рыб, под микроскопом в капле физиологического раствора препаровальными иглами освобождают от наружной оболочки. При
легком надавливании иглой на покровное стекло, под которое помещают препарат, внутренняя оболочка разрывается. Наличие движений у личинки указывает
на ее жизнеспособность.
Пересылка рыб и патологического материала
ных по заболеванию инфекционными и инвазионными болезнями рыб доставляют
в лабораторию в живом виде. Для исследования отбирают 15 –20 рыб с явно выраженными клиническими признаками болезни.
Рыб перевозят в чистых молочных бидонах, ваннах или других емкостях,
предназначенных для перевозки живой рыбы, заполненных на 3/4 объема водой
из того же водоема, откуда взята рыба, или из артезианской скважины. Рыба,
доставленная в лабораторию в бумаге, марле и др. упаковочных материалах, для
исследования непригодна.
Летом при длительной транспортировке воду с рыбой постепенно охл аждают до температуры 12–15 °С, добавляя кусочки льда. Чтобы не вызвать те мпературного шока и простудных явлений, нельзя пересаживать рыбу в воду, им еющую температуру ниже, чем в водоеме (на 7 °С и более).
При отсутствии возможности доставить живую рыбу у крупных рыб берут
кусочки пораженных органов и тканей, помещают их в стерильную стеклянную
посуду, заливают стерильным 40 %-м водным раствором глицерина, закрывают
пробкой, заливают парафином и направляют с нарочным в лабораторию.
Жидкий патологический материал (кровь, экссудат и др.) доставляют в лабораторию в запаянных стерильных пастеровских пипетках.
155
Извлеченных из органов и тка-
. Больных или подозритель-
Летом патологический материал пригоден для бактериологического исследования в течение 2 часов после его взятия. Зимой патологический
материал можно посылать замороженным.
Для вирусологического исследования живых рыб помещают в двойной п олиэтиленовый пакет, заполненный водой на 1/3 объема. В наружный пакет для
охлаж дения воды кладут лед. Пакет помещают в ящик, отравляют с нарочным
в лабораторию.
Мертвая рыба направляется только в том случае, если она погибла после
отлова перед отправкой в лабораторию. Т акую рыбу кладут в полиэтиленовый
пакет, который помещают в термос или пакет со льдом. При направлении рыбы
для исследования на вирусоносительство берут, с соблюдением правил асептики,
внутренние органы (можно объединять органы от пяти рыб в одну пробу) и пом ещают в стерильный флакон, который плотно закрывают резиновой пробкой. Фл акон помещают в те рмос или хладостойкий пакет.
В тех случаях, когда невозможно направить материал немедленно, его
мож но хранить в холодильнике при температуре не выше +4 °С не более суток.
Патологический материал от больных рыб или подозреваемых в заболевании вирусной этиологии можно консервировать 50 %-м фосфатно-буферным раствором
глицерина рН 7,2–7,4.
При подозрении на вирусную геморрагическую септицемию (ВГС) у производителей и ремонтной форели отсасывают из брюшной полости шприцем с иглой
перитонеальную жидкость, сливают ее в стерильную пробирку с резиновой пробкой и направляют в ветеринарную лабораторию. Патматериал 50 %-м фосфатнобуферным раствором не консервируют, а отправляют в пакетах со льдом.
При подозрении на инфекционный некроз гемопоэтической ткани (ИНГТ)
в лабораторию посылают от рыб маточного поголовья внутренние органы, а
в период нереста – овариальную жидкость вместе с икрой, которые помещают
в стерильные флаконы или пробирки с резиновыми пробками и отправляют в те рмосе или полиэтиленовом пакете со льдом.
При подозрении на инфекционный некроз поджелудочной ж елезы (ИНПЖ)
от производителей и ремонтной рыбы берут перитон еальную жидкость, которую
набирают из брюшной полости шприцем с иглой, сливают ее в стерильную пр обирку с резиновой пробкой. Для исследования в период между сезонами нереста
от производителей берут фекалии, пробы которых перевозят в термосе со льдом
в стерильных пробирках или ф лаконах, закрытых резиновыми пробками.
Материал для патологического исследования берут от больных снулых
рыб. Мелких рыб (мальки и сеголетки) после вскрытия брюшной полости фиксируют целиком, а от крупных берут органы или кусочки органов размером 2х3 см и
толщиной 0,5–1,0 см.
Кусочки из пораженных органов и тканей вырезают так, чтобы были захвачены нормальные и пораженные участки. Независимо от степени пораж ения
берут кусочки из различных органов: кожи с подлеж ащей мускулатурой, ж абр,
печени, почек, селезенки, сердца, кишечника, плавательного пузыря, головного
мозга.
Кишечник перед фиксацией осторожно вскрывают или делают на нем несколько надрезов, чтобы фиксирующая ж идкость проникла в его полость.
156
Головной мозг осторожно извлекают целиком после вскрытия черепной
коробки.
Подлежащий исследованию материал помещают в широкогорлую стекля нную банку и фиксируют обычным способом.
Для гистохимических исследований патологический мате риал фиксируют
так: его тотчас помещают в фиксирующую жидкость, объем которой должен
в 10 раз превышать объем взятого материала. В качестве фиксирующей жидкости
лучше всего использовать 10 %-й водный раствор формалина или 96 %-й этиловый спирт. При применении спирта толщина кусочков ткани не должна превышать 0,5 см.
Фиксирующую жидкость во всех случаях через сутки необходимо заменить свежей.
Патологический материал фиксируют в стеклянной посуде. Головной,
спинной мозг фиксируют в 10 %-м нейтральном формалине. Формалин нейтрализуют прибавлением в продаваемый формалин сухого мела или углекислого магния
до 1/10–1/20 его объема. Для фиксации кусочков мозга можно использовать также
96 %-й этиловый спирт, жидкость Карнуа или смесь Буэна.
Кровь для исследования берут из хвостовой вены или из сердца. Чешую
на месте взятия крови слущивают скальпелем, кожу вытирают от слизи и дезинфицируют 70 %-м спиртом. Кровь насасывают в пастеровскую пипетку, затем
переносят на часовое стекло и быстро отбирают количество, нео бходимое для
гематологических исследований (подсчета количества форменных элементов,
определения гемоглобина, пригото вления мазков и т. д.).
Для биохимических исследований цельную кровь предохраняют от свертывания, добавляя к ней лимоннокислый или щавелевокислый натрий (на 1 мл 2 мг)
или 1-2 %-й раствор гепарина (на 1 мл от 0,01 до 0,02 мл), и доставляют в лабораторию в герметически закрытых сосудах (эпиндорфах), снабженных этике ткой.
Сыворотку крови для биохимических исследований получают так: взятую
кровь выдерж ивают около часа при 20–30 °С для свертывания. Затем сгусток крови отделяют от стенок пробирки стальной спицей ( или стеклянной палочкой),
которую дезинфицируют раствором карболовой кислоты или обжигают на плам ени после каждой пробы, после чего пробирки выдерживают при 4–10 °С. Через
18–24 ч отстоявшуюся сыворотку в количестве 2-3 мл сливают в сухие стерильные
пробирки (лучше пробирки Ф лоринского), которые маркируют так же, как и пробирки с кровью, и направляют в лабораторию в свежем или консервированном
виде.
Пробирки с сыворотками закрывают стерильными резиновыми пробками и
устанавливают для пересылки в вертикальном положении (пробирки Флоринского –
в одноименных штативах).
При подозрении на инвазионные болезни у крупных рыб извлекают пораженные паразитами органы и ткани (жабры, кишечник, печень и др.) и посылают
для исследования законсервированными в банках, ме лких рыб – целиком.
спирте или 4 %-м растворе формалина.
Обнаруженных при клиническом осмотре и паразитологическом вскрытии
рыб паразитических организмов помещают в пробирки или флаконы с консервирующей ж идкостью.
Паразитических простейших наносят на покровное или предметное стекло
и, не давая мазку подсохнуть, спускают в жидкость Шаудина (50 мл насыщенного
157
раствора сулемы и 25 мл абсолютного спирта) на 20 мин. Маленькие кусочки п ораженных паразитами тканей и органов фиксируют указанной смесью в течение
30–120 мин. Затем стекло промывают несколько раз водой , заливают 70 %-м
спиртом и сохраняют в нем до исследования. Влажные мазки, кусочки органов и
тканей рыб с паразитами можно фиксировать также в ж идкости Буэна. Фиксация
мазков 1–20 мин, кусочков – 1–12 ч.
Гельминтов, преж де чем консервировать, тщательно промывают в воде
или физиологическом растворе. Моногенетических сосальщиков (дактилогирус,
гиродактилус и др.) консервируют в 4 %-м растворе формалина.
Трематод и мелких цестод помещают на предметное стекло, накрывают
покровным стеклом или куском предметного стекла (дл я неж ного прессования),
заливают 70 %-м спиртом и оставляют на несколько часов. После этого гельми нтов перекладывают при помощи кисточки в пробирку (флакон) со спиртом. Одновременно часть умерщвленных в физиологическом растворе трематод (цестод), не
подвергая прессованию (для сохранения естественной формы), помещают в пробирку с 70 %-м спиртом. Нематод и личиночные стадии цестод консервируют
в жидкости Барбагалло. Крупных ленточных гельминтов после умерщвления
в ф изиологическом растворе помещают в 70 %-й спирт. При консервировании
скребней в 70 %-м спирте добиваются выдавливания хоботка из влагалища путем
слабого прессования пере дних концов с помощью покровных стекол.
Паразитических рачков консервируют в 3 %-м растворе формалина и сразу
же переносят для хранения в 70 %-й спирт.
Пиявок фиксируют в 1-2 %-м растворе формалина.
При подозрении на отравление рыб отбирают пробы воды из водоема
непосредственно на месте гибели рыбы, сточные воды промышленных предприятий и сельскохозяйственных объектов, находящихся вблизи водосборной площади
данного водоема.
Для гидрохимического и химико-токсикологического исследований пробы
воды из водоемов берут в количестве 2-3 л каждая, батометром из поверхностных
(на глубине 30–50 см от зеркала воды) и глубинных слоев (нe менее 10–15 см от
дна), не допуская взмучивания грунта, так, чтобы проба соответствовала всей
массе исследуемой воды. Из проруби пробу воды берут на глубине 10–15 см от
нижней поверхности льда. При отборе проб необходимо исключить элементы сл учайности (временная взмученность воды, поверхностный слой воды со случайным
загрязнением).
В проточном водоеме пробы берут на быстринах, перепадах, водосборах и
водоспусках. Из больших водоемов пробы берут в нескольких местах с учетом
гидробиологических особенностей каждого участка (заросли, заболоченные участки, плесы и т. д.), в однотипных по гидробиологическим условиям водоемах –
в одном-двух местах, на расстоянии 3-4 м от берега.
Вблизи сельскохозяйственных объектов, промышленных предприятий и
мест сброса коммунально-бытовых сточных вод пробы воды берутся на условно
чистом участке выше источника загрязнения, в месте поступления сточных вод и
на различном расстоянии в нескольких точках ниж е места выпуска стоков.
На промышленном предприятии отбирают среднесуточные пробы (2-3 л)
воды общего выпуска.
158
Воду для анализа отбирают в чисто вымытые (без мыла) склянки. Перед
наполнением склянку промывают 2-3 раза исследуемой водой. При транспорт ировке проб зимой их нужно утеплить. Если доставка в лабораторию в теплое вр емя займет свыше суток, взятые пробы консервируют. Для этого в пробу, предназначенную для определения взвешенных веществ, нитритов, нитратов, ф осфатов
на каждый литр воды добавляют 2 мл хлороформа и хорошо взбалтывают. В порцию, предназначенную для определения аммиака, окисляемости, хлоридов на 1 л
добавляют 2 мл 25 %-й серной кислоты. Третью часть пробы для химического
анализа на токсические компоненты сточных вод не консервир уют.
Для химико-токсикологических исследований в лабораторию доставляют
живых или недавно погибших рыб, не менее 5 экземпляров каждого вида. Одновременно направляют рыб того же вида из благополучного водоема для контрольных исследований. Если доставить живых или свежеуснувших рыб невозможно, а
также в теплое время года, рыб охлаждают на льду, промораживают или консе рвируют спиртом-ректификатом. Другие вещества для консервирования использовать нельзя. Вместе с пробами высылают 50–100 мл консерванта.
Грунт для исследований берут в количестве 2 кг с поверхности дна водоема дночерпателем Экмана или Кирпичникова. Пробы отбирают выше предполагаемого источника загрязнения, в месте поступления сточных вод и на различном
расстоянии в нескольких точках ниже места выпуска стоков – на течении и в застойных зонах (ямах, бочагах, низинах). Грунт высушивают на воздухе, растирают
в ступке, просеивают через мелкое сито и упаковывают в щирокогорлые банки
или полиэтиленовые мешочки по 50 г каждый.
Планктон берут планктонной сеткой. Для этого 50–100 л воды пропускают
через сетку и собирают планктон.
Материал для исследования собирают комиссионно с участием ветврачаихтиопатолога, специалиста органов рыбохраны водного хозяйства, санитарноэпидемиологической станции и представителя местной администрации.
Весь материал (пробы воды, грунта, планктона и рыб) упаковывают в водонепроницаемую тару, опечатывают и вместе с актом комиссии направляют
в лабораторию.
159
РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА
1. Адиатулин И.Ф. Ветеринарно-санитарная экспертиза рыбы при опи-
сторхозе: автореф. дис. ... канд. вет. наук / И.Ф . Адиатулин. – М.: ВНИИ ВСГЭ
РАСХН, 2008. – 18 с.
2. Беэр С.А. Биология возбудителя описторхоза / С.А. Беэр. – М.: Товари-
щество научных изданий КМК, 2005. – 336 с.
3. Бутко М.П. Ветеринарно-санитарные показатели и безопасность рыбы,
пораженной описторхозом / М.П. Бутко, И.Ф. Адиатулин // Ветеринария Кубани. –
2010. – № 2. – С. 4–7.
4. Головин П.П. Кадастр лечебных препаратов, используемых и апробиро-
ванных в аквакультуре России и за рубежом / П.П. Головин, H.A. Головина,
H.H. Романова. – М.: Росинформагротех, 2005. – 56 с.
5. Григорьев С.С. Индустриальное рыбоводство / С.С. Григорьев,
Н.А. Седова. – Петропавловск-Камчатский: КамчатГТУ, 2008. – 186 с.
6. Енгашев В.Г. Лечение миксобактериозов осетровых рыб при их инд у-
стриальном выращивании / В.Г. Енгашев, Л.И. Грищенко, К.В. Гаврилин // Зооиндустрия. – 2005. – № 6. – С. 18–19.
7. Ихтиопатология / Н.А. Головина [и др.]; под ред. Н.А. Головиной,
О.Н. Бауера. – М.: Мир, 2003. – 448 с.
8. Казарникова A.B. Основные заболевания осетровых рыб в аквакультуре
/ А.В. Казарникова, Е.В. Шестаковская. – М.: Изд-во ВНИРО, 2005. – 104 с.
9. Ларцева Л.В. Сапролегниоз икры ценных видов рыб при искусственном
разведении в дельте р. Волги: таксономия, экология, профилактика и терапия /
Л.В. Ларцева, О.В. Обухова, Ю.В. Алтуфьев. – Астрахань: АГТУ, 2017. – 98 с.
10. Привезенцев Ю.А. Рыбоводство / Ю.А. Привезенцев, В.А. Власов. – М.:
Мир, 2004. – 456 с.
11. Юхименко Л.Н. Проблема аэромоноза: итоги исследования /
Л.Н. Юхименко // Сборник научных трудов ВНИИПРХ. – М.: Спутник, 2004. –
С. 206–215.
12. A ndrews C. Manual of Fish Health: Everything You Need t o Know About
Aquarium Fish, Their Environment and Disease Prevent ion / C. Andrews, A. Exell,
N. Carrington. – Firefly Books, 2003. – 208 p.
13. Bassleer G. The New Illustrated Guide to Fish Diseases / G. Bassleer. –
3rd ed. – Hollywood Import & Export, Inc., 2006. – 240 p.
14. Noga E.J. Fish Diseases: Diagnostic and Treatment / E.J. Noga. – 2nd ed. –
Wiley-Blackwell, 2010. – 519 p.
160
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]