Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

819

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
09.01.2024
Размер:
5.46 Mб
Скачать

УДК 619:[611.018.15:616-002.951.3](59.084)

О.И. Лазарева – аспирант 2 курса; Т.Н. Сивкова – научный руководитель, доцент, доктор биологических наук, профессор,

ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

АНТИМИТОТИЧЕСКОЕ ДЕЙСТВИЕ БЕЛКОВОГО ЭКСТРАКТА ANISAKIS

SIMPLEX

Аннотация. В статье описано действие соматического антигена из личинок анизакид в разных дозах на клетки лабораторных животных. Доза в 200 мкг на голову вызывает наиболее тяжелые антимитотические изменения в красном костном мозге мышей. Уровень нарушений в половых клетках зависит от дозы по количеству белка и возрастает с ее увеличением.

Ключевые слова: антимитотическое действие, Anisakis simpleх, костный мозг, семенники.

Известно, что метаболиты гельминтов воздействуют на различные клетки макроорганизма. Прежде всего, это отражается на гемопоэтической ткани красного костного мозга и клетках половых органов. Антимитотическое действие на клетки хозяев было доказано на примере гименолеписов [5], тениидозах [1], токсокар [4], трихинелл [2] и других гельминтов. Выраженное антимитотическое действие установлено на лабораторных мышах под влиянием соматического экстракта личинок Anisakis simpleх [6]. Целью нашей работы стало изучение антимитотического действия различных доз данного экстракта на костный мозг и семенники лабораторных животных.

Материалы и методы. Экстракт из личинок A.simplex однократно внутрибрюшинно вводили нелинейным белым мышам-самцам массой 18-22 грамма в дозах 100, 200, 500 и 1000 мкг белка на голову. Пятая группа служила интактным контролем. В каждой группе было по 5 животных.

Так как предварительно было установлено, что наиболее значительные изменения наблюдаются у мышей через 48 часов после введения экстракта [6], убой лабораторных животных проводили именно в этот период методом цервикальной дислокации. Готовили мазки-отпечатки красного костного мозга из грудины и семенников, которые окрашивали азур-эозином по Романовскому. При микроскопировании определяли митотический (%), общее количество патологий и их отдельных форм (%). Фактический материал, полученный в результате эксперимента, обрабатывали методом вариационной статистики. Показатели считались достоверными при значениях р≤0,05, р≤0,01 и р≤0,001 (по критерию Стьюдента).

Результаты и обсуждение. Во время проведения эксперимента общее состояние опытных и контрольных животных оставалось удовлетворительным. При исследовании мазков-отпечатков красного костного мозга (таблица 1) был установлен дозозависимый эффект.

301

Таблица 1

Изменение частоты кариопатических последствий в красном костном мозге лабораторных мышей после воздействия разными дозами экстракта A.simplex

Показатель

Контроль

Дозы антигена A.simplex, мкг белка на голову

 

 

100

200

500

1000

Митотический индекс (%)

0,44±0,20

1,74±0,40**

1,45±0,18**

1,54±0,45**

1,48±0,42**

Соотношение фаз деления

0,10±0,02

0,30±0,14

0,34±0,23

0,26±0,16

0,32±0,17

про-метафаза/ана-телофаза

 

 

 

 

 

Патологии митоза (%)

0,04±0,02

0,58±0,14***

0,60±0,12***

0,36±0,20*

0,46±0,19**

Отставание в анафазе(%)

0,02±0,01

0,18±0,14

0,04±0,05

0,08±0,03

-

Многополюсный митоз(%)

0,02±0,01

0,34±0,25

0,34±0,09***

0,18±0,10*

0,30±0,12**

Неравнополюсная анафаза,

-

0,06±0,03

0,10±0,08

0,08±0,04

0,08±0,03

телофаза(%)

 

 

 

 

 

Мосты в анафазе(%)

-

-

0,10±0,05

0,02±0,01

0.08±0,03

Двухядерные лимфоциты

-

-

0,02±0,01

 

-

*р≤0,05; **р≤0,01; ***р≤0,001

Митотический индекс во всех опытных группах по сравнению с контролем был завышен, максимальное значение он составил при дозе 100 мкг на голову. Соотношение фаз деления увеличивается также в 3 раза. При этом возрастает и количество патологий митоза. При дозе 100мкг и 200 мкг белка на голову в 15 раз, при дозе 500 мкг - в 9 раз и 1000 мкг - примерно - в 12 раз. При дозе 200мкг на голову наблюдали самое большое количество патологий, основная часть которых происходила за счет многополюсного митоза. При дозах 200мкг и 500 мкг появлялись двухъядерные лимфоциты. Предполагается, что двухъядерные клетки могут возникать как компенсация действия генотоксических агентов для поддержки генетического баланса в популяции. Некоторые авторы объясняют наличие двухъядерных клеток как следствие старения и естественного удлинения продолжительности цитокинеза [3]. Также при дозе 200 мкг на голову на стадии анафазы появилась такая субхроматидная аберрация, как мосты. Ранее было доказано, что мосты являются следствием разрывов хромосом и объединения фрагментов, имеющих центромеры, в результате чего возникают дицентрики. При этом ацентрические фрагменты чаще опаздывают в митозе, и в интерфазе из них формируются микроядра [3].

При исследовании мазков-отпечатков семенников также был установлен дозозависимый эффект (таблица 2).

Таблица 2

Изменение частоты кариопатических показателей в семенниках лабораторных мышей после воздействия разными дозами экстракта из Anisakis simplex

Показатель

Контроль

Дозы антигена A.simplex, мкг белка на голову

 

 

 

 

 

 

 

 

100

200

500

1000

Мейотический индекс (%)

5,50±1,00

6,28±1,30

7,56±1,07

7,68±1,30

8,24±1,83

Патологии мейоза(%)

0,08±0,01

0,20±0,16

0,44±0,25

0,62±0,38

0,64±0,31*

Соотношение фаз деления про-

0,20±0,09

0,40±0,18

0,27±0,08

0,28±0,18

0,24±0,06

метафаза/ана-телофаза

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Отставание в метафазе(%)

0,04±0,01

0,10±0,08

0,16±0,09

0,26±0,07

0,30±0,20

Отставание в анафазе(%)

-

-

0,02±0,01

0,04±0,02

0,02±0,01

Трехполюсная анафаза

0,02±0,01

-

0,10±0,04

0,18±0,09

0,10±0,05

Четырехполюсная анафаза

-

-

0,06±0,03

0,06±0,03

0,02±0,01

Неравнополюсная на-телофаза

0,02±0,01

-

-

-

0,02±0,01

Многогрупповая метафаза

-

0,06±0,03

0,10±0,06

0,06±0,03

0,08±0,06

Анафаза с мостами

-

0,04±0,02

-

0,02±0,01

0,04±0,02

Преждевременное расхождение

-

-

-

-

0,06±0,03

хромосом(%)

 

 

 

 

 

*Р≥0,05

 

 

 

 

 

 

302

 

 

 

 

Мейотическая активность максимально повысилась при дозе 1000 мкг (в 1,5 раза по сравнению с контролем). Отношение фаз деления также изменилось. С увеличением дозы экстракта по белку количество ана-телофаз уменьшилось, а про-метафаз, соответственно, возросло. Количество патологий мейоза увеличилось в 2,5 раза при дозе в 100 мкг на голову, при дозе в 200 мкг - в 5 раз, в 8 раз - при дозах в 500 и 1000 мкг белка. При этом, изменения при дозе в 1000 мкг оказались достоверными по сравнению с контролем (р≥0,05). С нарастанием дозы антигенного материала увеличивалось разнообразие патологий, стали встречаться отставания в анафазе, четырехполюсные анафазы, многогрупповые метафазы, анафазы с мостами и преждевременные расхождения хромосом.

Выводы. Таким образом, доза соматического антигена A.simplex по белку 200 мкг на голову вызывает наиболее тяжелые антимитотические изменения в красном костном мозге лабораторных мышей. Уровень нарушений в половых клетках при экспериментальном заражении зависит от дозы по количеству белка и возрастает с ее увеличением.

Литература 1.Бекиш, В.Я. Зорина, В.В. Генотоксические и цитотоксические эффекты в клетках хозяи-

на при тениидозах. – Москва.- Российский паразитологический журнал. - №3.- 2015.- С.45-52. 2.Калинин, Л.В. Влияние трихинеллезной инвазии и метаболитов трихинелл на хромо-

сомный аппарат соматических клеток хозяина: Дис. ...канд. мед. наук:03.00.19.-Витебск.,1995.- 151с.

3.Ковалева, О.А. Цитогенетические аномалии в соматических клетках млекопитающих / О. А. Ковалева // Цитология и генетика.- 2008.- № 1.-С. 58-72.

4.Колмогоров, В.И., Бекиш, Вл.Я. Повреждения генома хозяина при экспериментальном токсокарозе и при сенсибилизации белковым продуктом из тканей Тoxocara canis.-Витебск: Вестник ВГМУ.-Т.3.-№3.-2004.-С.81-89.

5.Побряжин, В.В. Бекиш, Вл.Я. Нарушения в геноме хозяина при экспериментальном гименолепидозе в зависимости от дозы введенного инвазионного материала при заражении. – Витебск: Вестник ВГМУ. – Т.2. - №4. – 2003. – С.84-89.

6.Сивкова, Т.Н. Кариопатическое и патоморфологическое действие продуктов метаболизма паразитов и влияние на репродуктивную функцию домашних плотоядных Дисс. … докт биол. наук. - 03.02.11 – Москва. – 2010.. – 244с.

УДК 619: 637.07: 593.192.1

Д.А. Локтева – студентка 4 курса; Т.Н. Сивкова – научный руководитель, профессор,

ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА КУР ПРИ ТОКСОПЛАЗМОЗЕ

Аннотация. Статья посвящена проблеме токсоплазмоза, приведены результаты исследования образцов органов кур (доморощенных и промышленного производства) методами мазков-отпечатков, неполного гельминтологического вскрытия и ПЦР-диагностики, также проанализирована нормативная документация.

Ключевые слова: токсоплазмоз, Toxoplasma gondii, ветеринарно-санитарная экспертиза, куры, паразиты.

Токсоплазмоз – природно-очаговое заболевание, встречающееся повсеместно, возбудителем является Toxoplasma gondii (Nicolle, Manceaux, 1909) – внутриклеточное паразитическое простейшее, не обладающее специфичностью по отно-

303

шению к хозяевам, может поражать как человека, так и все виды млекопитающих и птиц [2].

Токсоплазмоз в настоящее время является одной из самых значительных и острых проблем ветеринарии и медицины. Актуальность проблемы обусловливают следующие основные факторы:

во-первых, чрезвычайно широкая распространенность инвазии (до 500 млн человек в мире, в России – до 50 млн – около 33% населения). Что касается токсоплазмоза животных и птиц, в том числе кур, заболевание регистрируется более 60 лет по всему миру, но единой статистики случаев не существует.

Во-вторых, выявлено частое развитие летальных и приводящих к инвалидности форм болезни. Токсоплазмоз особенно опасен для беременных женщин и людей, страдающих иммунодефицитными заболеваниями.

В-третьих, существуют сложности диагностики и лечения. Ни один из 20 известных методов диагностики полностью не удовлетворяет потребностям медицины и ветеринарии. Что касается лечения, ни один препарат не оказывает влияния на цисты, основную форму существования паразита в тканях хозяина [1].

Целью проведенного нами исследования являлось изучение сложившейся на сегодняшний день обстановки зараженности токсоплазмозом кур находящихся в личных подсобных хозяйствах и на крупных предприятиях, а так же поиск сведений в нормативно-правовой документации об обязательных исследованиях продукции животного происхождения на токсоплазмоз.

Материалы и методы. Исследования проводили на базе кафедры инфекционных болезней Пермской ГСХА и Пермского ветеринарного диагностического центра. Материалом для исследований послужили 30 голов кур (головной мозг и глаза), отобранные как от доморощенной птицы – 5 образцов, так и от птицы промышленного производства – 25 образцов. От доморощенной птицы также исследовали тонкий и толстый кишечник.

Образцы промышленного производства были закуплены в различных торговых сетях, куда поступили с птицеводческих предприятий Пермского края (ОАО Пермская «Птицефабрика», СХК «Птицефабрика Григорьевская») и Челябинской области (ЗАО «Уралбройлер», ООО «Чебаркульская птица»), образцы доморощенной птицы получены от владельцев личных подсобных хозяйств территории Пермского края (деревня Волеги, деревня Фадеята, город Пермь).

Проводили микроскопию мазков-отпечатков головного мозга и глаз по общепринятой методике, ПЦР-диагностику (по МУ 1.3.2569-09) и неполное гельминтологическое вскрытие по К.И.Скрябину. Так же был проведен мониторинг нор- мативно-правовых актов на предмет содержания сведений об исследованиях различной продукции животного происхождения на инфицированность возбудителем токсоплазмоза.

Головной мозг и глаза извлекали из черепной коробки и прикладывали к поверхности стекла (по три отпечатка на два стекла), оставшийся материал замораживали для последующей ПЦР-диагностики. Мазки окрашивали по Романовско- му-Гимзе и микроскопировали. Препараты просматривали на микроскопе Meiji при увеличении Х100, Х400 и Х1000 и фиксировали с помощью фотокамеры Vision.

304

Неполное гельминтологическое вскрытие проводили для образцов из личных подсобных хозяйств, осматривали тонкий и толстый кишечник и исследовали его содержимое визуально и методом Фюллеборна.

Результаты и обсуждение. Первым этапом нашего исследования являлся мониторинг нормативно-правовых документов на предмет сведений об исследованиях продукции животноводства на зараженность токсоплазмозом. В результате изучения существующей документации нами было установлено, что исследования на токсоплазмоз любой продукции животного происхождения (мяса, молока и прочее) нигде не указаны, стандарты методик для проведения подобных анализов не разработаны.

Затем мы провели микроскопирование мазков-отпечатков головного мозга и глаз, окрашенных по Романовскому-Гимзе. Всего этим методом было исследовано 120 препаратов, полученных от 30 образцов голов кур, – 60 стекол с мазкамиотпечатками головного мозга и 60 с отпечатками глаз, на каждом препарате изучали не менее 5 полей зрения.

Ни в одном исследуемом образце возбудитель токсоплазмоза нами обнаружен не был. Во всех препаратах были зафиксированы остатки клеточных элементов, в ряде случаев – бактерии – палочки и кокки.

Неполное гельминтологическое вскрытие было проведено для обнаружения других видов паразитов, так как их наличие может указать на вероятность заражения токсоплазмозом исследуемых проб. В результате анализа нами была обнаружена самка Ascaridia galli в образце, полученном из хозяйства деревни Волеги, и Eimeria sp. неустановленного вида в образце из города Перми.

ПЦР-диагностику проводили для 3 образцов головного мозга кур. Для этого вида исследований нами были выбраны образцы мозга и глаз доморощенной птицы (из хозяйств деревни Волеги, деревни Фадеята и города Перми), так как именно в этих пробах наиболее вероятно мог оказаться возбудитель токсоплазмоза.

Образцы органов сразу после извлечения были заморожены и доставлены в лабораторию Пермского ветеринарного диагностического центра, где в результате проведения анализа было установлено отсутствие возбудителя токсоплазмоза во всех исследуемых образцах, что можно объяснить сложным циклом развития паразита. Для заражения птица должна проглотить спорулированную ооцисту, выделенную представителем семейства кошачьих во внешнюю среду. На крупных комплексах это практически невозможно – помещения цехов защищены от проникновения кошек и различных переносчиков, а корма и вода соответствуют санитарным требованиям. Тем не менее, все меры профилактики на предприятии не могут дать оснований для исключения возможности заболевания, а, следовательно, есть вероятность выпуска инфицированной продукции.

Что касается доморощенной птицы, то здесь риск заражения значительно выше, чем при промышленном выращивании. Птица содержится напольно, рядом с другими животными, в том числе и кошками, и имеет выгул, что приводит к возможности возникновения заражения. Изученные нами образцы из личных подсобных хозяйств оказались не инфицированными токсоплазмой, но это не говорит об отсутствии инвазии в данной местности, так как исследовано недостаточно проб. Кроме того, обнаружение других видов паразитов (Ascaridia galli и эймерии) свидетельствует о несоблюдении санитарно-гигиенических норм в хозяй-

305

ствах. Исходя из этих факторов, теоретически в поголовье могут встречаться куры больные токсоплазмозом.

Вывод. Нормативная документация, регламентирующая исследование продукции птицеводства на токсоплазмоз, отсутствует. В пробах головного мозга и глаз кур промышленного производства и из личных подсобных хозяйств T. gondii не обнаружена.

Предложения. В качестве предложений мы бы хотели указать необходимость внесения исследований на токсоплазмоз в различные планы противоэпизоотических мероприятий и производственного контроля, для того чтобы предотвратить выпуск инфицированной токсоплазмой продукции и обезопасить население от возможности заражения.

Литература

1.Васильев, В.В. Токсоплазмоз: современные научно-практические подходы [Электронный ресурс] / В. Васильев // Вестник инфектологии и паразитологии: интернет-ресурс. - Электрон.дан.

Режим доступа: http://www.infectology.ru/mnenie/index.aspx. - Загл. с экрана. - Яз. рус., англ. -

(Дата обращения: 30 октября 2015).

2.Протозойные болезни сельскохозяйственных животных [Текст] / Н.И. Степанова, Н.А. Казаков, В.Т. Заблоцкий и др.; под ред. Н.И. Степановой. – М.: Колос,1982. – 352 с., ил.

УДК 636.082.252

Ю.А. Махнутина - студентка В-1 курса ФВМиЗ; С.Ю. Пьянкова– научный руководитель, ст. преподаватель, ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ИНБРИДИНГА В СПОРТИВНОМ СОБАКОВОДСТВЕ

Аннотация. Изучен инбридинг, как один из методов гомогенного подбора в животноводстве. Проанализированы результаты применения инбридинга в различных отраслях, в том числе в собаководстве. Выявлены цели применения родственного спаривания и его опасность. Поставлен эксперимен по получению спортивной собаки с помощью инбридинга.

Ключевые слова: Аджилити, бордер-колли, инбридинг, родственное спаривание, инбредная депрессия.

Современное спортивное собаководство, как всякий серьезный спорт, требует создания популяции собак с уникальными характеристиками. Для аджилити важными качествами являются резкость, гибкость, оптимальный прыжок. Так же учитываются отсутствие болезней, свойственных породе бордер-колли: дисплазия тазобедренного сустава, болезни глаз. Для достижения этих целей заводчики часто используют инбридинг. Некоторые заводчики доказывают, что инбридинг, или лайнбридинг, как они предпочитают его называть, - единственный путь к успеху. Однако, отмечают и недостатки этого метода.

Малейшая ошибка (нежелательный признак) усиливается в связи с гомозиготностью и закрепляется в данной породной группе;

Слишком продолжительный инбридинг ослабляет физические характеристики и экстерьер, а также отрицательно сказывается на репродуктивной функции и жизнеспособности животных;

306

Не обогащает начальный генотип популяции.

По данным профессора Е.А. Богданова, «собаки принадлежат к наиболее «страдающим» от тесного родственного разведения животным» [3].

Так, знаменитый эксперт по немецким овчаркам JI.K. Брекетт поддерживает мнение о том, что инбридинг следует вести от чемпионов породы и что вязки собак из разных кровных линий в 99% случаев дают плохое потомство [2].

Большинство пород, будь то собаки или крупный рогатый скот, появились и развивались, начиная с тесного инбридинга, который постепенно становился все более отдаленным. Это было вполне логично в том смысле, что первым создателям той или иной породы хотелось вывести определенный тип животного и как можно скорее добиться этого путем инбридинга от особей, считающихся эталоном породы. Это приводило к довольно быстрой фиксации специфических породных признаков, если сопровождалось выбраковкой животных, не соответствующих стандарту. К сожалению, в некоторых случаях интенсивный инбридинг оказался невыгодным. Так, в семействе Дюшес, шортгорнской породы крупного рогатого скота, он достиг инбредной депрессии, из-за чего матки стали бесплодными и линии не стало. Как только устанавливается породный тип, заводчики все реже и реже прибегают к инбридингу, особенно когда дело касается видов, для которых чрезвычайно важны скороспелость и плодовитость. В ходе классических экспериментов со скрещиванием сибсов морских свинок на протяжении более двадцати генераций выяснилось, что это ведет к серьезному ухудшению некоторых признаков. Так, С. Райт показал, что размер пометов морских свинок сократился с 12,09 животного в 1906 году, до 6,79 — в 1920-м [2]. За тот же период число малышей, доживших до отъема от груди матки, упало с 9,83 до 4,29. Наряду с сокращением размеров пометов произошло и снижение веса новорожденных и выкормленных свинок, связанных с инбридингом. Г.Е. Дикерсон с коллегами продемонстрировал на свиньях, что размер опоросов сокращается на 0,26 поросенка на каждые 10% увеличения коэффициента инбридинга, а к возрасту в 56 дней это сокращение достигает 0,37. Таким образом, у свиней понижается не только супоросность, но и выживаемость [2].

Работая с молочным крупным рогатым скотом, Робертсон проанализировал результаты инбридинга по разным признакам и заключил, что он вызывает снижение фертильности и молочности телок, веса новорожденных телят и повышение уровня ранней смертности. У мясного крупного рогатого скота наблюдается аналогичная картина инбредной депрессии [1].

Очень многое зависит от вида и популяции животных, о которых идет речь, равно как и от степени их инбридинга. Установлено, что при длительном инбридинге экстерьер собак может улучшиться, а жизнеспособность и фертильность — снизиться. С усилением инбридинга нарастает неонатальная смертность, и когда он достигает 67—78%, в пометах умирает почти три четверти родившихся щенков [2]. Разумеется, следует учесть, что этот уровень инбридинга гораздо выше того, на котором обычно работают заводчики чистопородных животных. Даже в высоко инбредных питомниках он редко превосходит 25-30%, а в большинстве случаев не доходит до 20%. Развивая свое поголовье бордер-колли, Р.Б. Келли выяснил, что при инбридинге, не превышающем 20%, не наблюдается никаких отрицательных эффектов, а в ходе проведения в Калифорнии программы разведе-

307

ния собак-поводырей в питомнике Сан-Рафаэль К.Й. Праффенбергер отметил гетерозис при инбридинге на кобеля Фрэнка оф Ледж-Акрс. В крайних случаях коэффициент инбридинга пометов составлял 48% без каких-либо признаков инбредной депрессии [1].

Инбридинг не вносит в генофонд ничего нового, он лишь способствует проявлению уже имеющегося, делает тайное явным. Вы не можете получить уродство или порок путем инбридинга, если обуславливающие отклонение гены отсутствуют у производителей. Собаки, содержащие в генотипе скрытые дефекты, при аутбридинге будут распространять их шире и дальше, причем от их проявления застраховаться не удастся: они «выскочат» при подходящем сочетании генов независимо от метода разведения. Инбридинг же, наоборот, позволяет выделить и сконцентрировать пороки и уродства в части потомков, выявить их и отсечь от полезного набора качеств путем жесткой и бескомпромиссной выбраковки. Только так выводят собак экстра-класса, и пусть необходимость отсева части щенков кому-то покажется жестокой, но все же лучше это делать сразу и сознательно, чем превращать поиск дефектов и «зловредных» генов в игру в жмурки, растянутую на годы и поколения.

В Пермском крае существует секция аджилити, входящая в команду Российской Федерации и участвующая в соревнованиях на международном уровне. Потребность в спортивных собаках высочайшего уровня привела к эксперименту. Были отобраны пара собак, близких к идеалу спортивной собаки. Кобель – MaeglinElvis (привезен в Пермь из Бельгии). Сука – Айскнехт Прима (привезена в Пермь из Москвы).

рис.1 Отец MaeglinElvis

рис.2 Мать Айскнехт Прима

Эти животные являлись родственниками в степени III-I (дед - внучка). Коэффициент инбридинга равнялся 12,5%. Такой тип инбридинга относится к близкому инбридингу и используется для однократного закрепления качеств животных.

В результате родственного спаривания были получены щенки (2 кобеля и 6 сук). Все потомки были исследованы на оптимальное строение скелета. Поголовье, полученное в результате эксперимента, характеризовалось прекрасными углами задних конечностей, постановкой пястных суставов, отличным балансом и пропорциональностью телосложения. Уникальная гибкость отца проявилась и у детей. Это обеспечило наиболее экономное движение по трассе, а значит и высокую скорость еѐ прохождения.

Все щенки принимали участие в соревнованиях различного уровня, в дальнейшем, им обеспечено спортивное будущее.

308

Наше исследование доказало нужность и возможность использования инбридинга в спортивном собаководстве. Дж.Л. Лаш, один из ведущих в мире популяционных генетиков, утверждал, что «из-за отказа от инбридинга, когда его можно было бы посоветовать, упущено больше возможностей для прогресса пород, чем из-за чрезмерного увлечения им» [3]. Этим он подчеркивает, что у инбридинга есть свои плюсы и минусы, и заводчик должен знать, когда он показан, а когда — нет.

Литература

1.Блохин Г.И. и др.Кинология. М.: ООО «Издательство Скрипторий 2000». 2001. 432 с.

2.Гуттман Б. и др. Генетика. Пер. с англ. О. Перфильева. М.: ФАИР-ПРЕСС. 2004. 448 с.

3.Мазовер А. Племенное дело в служебном собаководстве. Москва: ДОСААФ. 1954. 567 c.

УДК 619:573.6

В.В. Нифонтова – студентка 3 курса; Е.О. Чугунова – научный руководитель, доцент,

ФГБОУ ВО Пермская ГСХА, г. Пермь, Россия.

КРИСТАЛЛОГЕНЕЗ СЫВОРОТКИ КРОВИ КРОЛИКОВ, БОЛЬНЫХ ЭЙМЕРИОЗОМ

Аннотация. В статье рассказывается о биокристаллографии – науке изучающей строение, образование и свойства кристаллов в биологических жидкостях. В результате проведенных исследований по большинству показателей выявлено различие между фациями сыворотки крови здорового и больных эймериозом кроликов.

Ключевые слова: кристаллография, кристаллоскопия, сыворотка крови, эймериоз кроликов.

Биокристаллография – это наука, изучающая строение, образование и свойства кристаллов в биологических жидкостях. В медицине биокристаллография стала использоваться в течение последних 35 лет [4].

Цель исследования – описать и сравнить полученные данные о кристаллограммах сыворотки крови кроликов, больных эймериозом и здоровых.

Задачи исследования:

провести биохимический анализ сыворотки крови и исследование фекалий всех подопытных кроликов;

изучить современную литературу по кристаллографии сыворотки крови разных видов животных;

освоить методику выполнения пробоподготовки в биокристаллографии: биокристаллоскопия;

визуаметрировать кристаллоскопические фации;

сравнить полученные результаты.

Материал исследования: сыворотка крови и фекалии кроликов.

Методы исследования: микроскопический (объектив х10 и окуляр х10), биохимический, метод Фюллеборна.

При проведении опытов, мы использовали «классическую кристаллоско-

309

пию» [1]. На предметные стекла были нанесены капли образцов сыворотки крови и оставлены до полного высыхания при комнатной температуре. После высыхания, полученные образцы микроскопировали с помощью светового микроскопа.

Для описания результатов свободного кристаллообразования биологических жидкостей использовали количественный алгоритм [2]. При этом учитывали как основные показатели - индекс структурности (ИС) и кристаллизуемость (К), так и дополнительныe параметры: степень деструкции фации (СДФ), равномерность распределения кристаллических и аморфных элементов фации (R), степень выраженности ячеистости фации (C), выраженность отдельных зон кристаллизации (Z), индекс хаотичности (ИХ), выраженность краевой белковой зоны (Кз), рельефность текстуры (Т).

При оценке результатов исследований учитывали биохимические показатели сыворотки крови, результат анализа фекалий и кристаллизуемость сыворотки кроликов.

В итоге биохимического исследования сыворотки крови установлено, что кролик под номером 1 здоров, у остальных отмечена печеночная недостаточность (табл. 1).

Таблица 1

Результат биохимического исследования сыворотки крови кроликов

Показатель

Номер животного

 

 

 

 

Норма

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

2

3

4

5

6

7

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

АСТ, U/L

20,4

-

56,9

109,4

-

95,8

112,4

5-31

 

 

 

 

 

 

 

 

 

АЛТ, U/L

44,8

-

61

92,8

-

56

-

25-60

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Общ. белок, г/л

57,3

59,2

46

32,2

80

41,6

74,5

54-75

Примечание: «-»определение невозможно из-за гемолиза сыворотки крови

В результате исследования фекалий в 85,7 % случаев обнаружены ооцисты эймерий (табл. 2).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 2

 

 

 

Результаты исследования фекалий на эймериоз

 

 

 

 

Результат

 

 

 

Номер животного

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

2

 

3

4

5

 

 

6

 

7

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Наличие эймерий

 

 

 

-

 

+

 

+

+

+

 

 

+

 

+

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Данные о показателях исследования кристаллоскопической фации сыво-

ротки крови представлены в таблице 3.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 3

 

 

Показатели оценки кристаллоскопической фации

 

 

 

 

Показатель

Номер животного

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

2

 

 

3

 

4

 

5

 

6

 

 

7

 

 

 

ИС

2

 

1

 

 

2

 

3

 

2

 

2

 

 

1

 

 

 

К

1

 

1

 

 

2

 

3

 

2

 

2

 

 

1

 

 

 

СДФ

1

 

2

 

 

2

 

2

 

1

 

1

 

 

2

 

 

 

R

4

 

4

 

 

4

 

3

 

3

 

3

 

 

5

 

 

 

C

5

 

5

 

 

5

 

4

 

4

 

4

 

 

5

 

 

 

Z

1

 

1

 

 

2

 

2

 

2

 

1

 

 

-

 

 

 

T

1

 

1

 

 

3

 

2

 

2

 

2

 

 

-

 

 

 

Кз

4

 

3

 

 

3

 

3

 

2

 

2

 

 

-

 

 

 

ИХ

0,1

 

0,2

 

0,18

 

0,2

 

0,1

 

0,125

 

-

 

 

 

Примечание: «-»определение невозможно из-за гемолиза сыворотки крови

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

310

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]