Наблюдение плазмолиза и деплазмолиза в живых растительных клетках

Таблица П.2

Основные различия клеток прокариот и эукариот

Составные части клетки	Прокариоты	Эукариоты
Клеточная стенка	Есть. Прочность придает муреин	Есть у растений (прочность придает целлюлоза) и грибов (уплотняющее вещество – хитин)
Капсула или слизистый слой	Есть у некоторых бактерий	Нет
Ядро	Нет. Имеется нуклеотид – часть цитоплазмы, где содержится ДНК, не окруженный мембраной	Имеет оболочку из двух мембран, содержит одно или несколько ядрышек
Генетический материал	Кольцевая молекула ДНК, не связанная с белками	Линейные молекулы ДНК, связанные с белками, организованы в хромосомы
Эндоплазматический ретикулум, аппарат Гольджи, лизосомы, митохондрии	Нет	Есть
Мезосомы	Есть	Нет
Рибосомы	Есть. Более мелкие, чем у эукариот	Есть
Жгутики	Если есть, то не имеют микротрубочек и не окружены плазматической мембраной. d 20 нм	Если есть, то имеют микротрубочки, окружены плазматической мембраной. d 200 нм
Размеры	Диаметр в среднем 0,5-5 мкм	Диаметр обычно до 40 мкм

Приложение 3

ВЛИЯНИЕ СОЛЕЙ ТЯЖЕЛЫХ МЕТАЛЛОВ НА КОАГУЛЯЦИЮ

РАСТИТЕЛЬНЫХ И ЖИВОТНЫХ БЕЛКОВ

Рис. П.3. Уровни структуры белков:

1 — первичная, 2 — вторичная, 3 — третичная, 4 — четвертичная

Приложение 4

СОСТАВЛЕНИЕ ПИЩЕВЫХ ЦЕПЕЙ

Рис. П.4.1. Пастбищная сеть питания в наземном биоценозе

Рис. П.4.2. Детритная пищевая цепь

Рис. П.4.3. Общая схема пищевой цепи

Рис. П.4.4. Экологические пирамиды:

1 ‑ Сужающая пирамида; 2 ‑ перевернутая пирамида

Приложение 5

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ПИТЬЕВОЙ ВОДЫ

Принцип действия фотоэлектроколориметра кфк-2

Колориметр фотоэлектрический концентрационный КФК-2 предназначен для измерения в отдельных участках диапазона длин волн 315-980 нм, выделенных светофильтрами, коэффициентов пропускания и оптической плотности жидкостных растворов, а также определения концентрации веществ в растворах методом построения градуировочных графиков.

Принцип измерения коэффициента пропускания состоит в том, что на фотоприемник направляются поочередно световые потоки, полный - F₀ и прошедший через исследуемую среду F_α, и определяется Т исследуемого раствора.

Т = ·100 %.

На колориметре это отношение определяется следующим образом:

• колориметр включить в сеть за 15 минут до начала измерений. Во время прогрева прибора кюветное отделение должно быть открыто.

• ввести необходимый по роду измерений цветной светофильтр.

• установить минимальную чувствительность колориметра ручкой «чувствительность» в положение 1, а ручкой «установка 100 грубо» в крайнее левое положение.

• в световой пучок поместить кювету с растворителем, закрыть крышку кюветного отделения и ручками «чувствительность» «установка 100» сначала грубо, а потом точно установить отсчет 100 по шкале колориметра «Т» или 0 по шкале колориметра «Д».

• затем поворотом ручки кювету с растворителем заменить на кювету с исследуемым раствором и снять отсчет по шкале колориметра, соответствующий оптической плотности Д.