Активный транспорт
Активный транспорт — энергозависимый трансмембранный перенос против электрохимического градиента. Различают первичный и вторичный активный транспорт. Первичный активный транспорт осуществляют насосы (различные АТФазы), вторичный — симпортёры (сочетанный однонаправленный транспорт) и антипортёры (встречный разнонаправленный транспорт).
Первичный активный транспорт. Движущая сила трансмембранного переноса возникает при ферментативном гидролизе макроэргических связей АТФ. Родовой термин для таких АТФаз (например, Na+,K+-, H+,K+-, Ca2+‑АТФазы) — насосы.
Вторичный активный транспорт. Движущая сила для трансмембранного переноса одного вещества (или ионов) против электрохимического градиента возникает за счёт потенциальной энергии, запасённой за счёт сочетанного переноса ионов (как правило, Na+) по электрохимическому градиенту. В большинстве случаев поступление Na+ в цитозоль из межклеточного пространства и обеспечивает вторичный активный транспорт разных ионов и веществ. Известно 2 типа вторичного активного переноса — симпорт и антипорт (рис. 2–6).
· Первичный активный транспорт обеспечивают следующие насосы — натрий, калиевые АТФазы, протонные и калиевые АТФазы, Са2+-транспортирующие АТФазы, митохондриальные АТФазы, лизосомальные протонные насосы и др.
Натрий, калиевая АТФаза (рис. 2–11) регулирует трансмембранные потоки основных катионов (Na+, K+) и опосредованно — воды (что поддерживает постоянный объём клетки), обеспечивает Na+–связанный трансмембранный перенос (симпорт и антипорт) множества органических и неорганических молекул, участвует в создании МП покоя и генерации ПД нервных и мышечных элементов.
Электрогенность. При каждом цикле гидролиза АТФ 3 иона Na+ выбрасываются из клетки, а 2 иона K+ поступают в цитозоль, суммарный эффект — выброс из клетки одного катиона. Другими словами, Na+,K+‑насос обладает электрогенностью: его работа приводит к поддержанию положительного заряда наружной (внеклеточной) поверхности мембраны.
Сердечные гликозиды (например, уабаин и дигоксин) блокируют работу Na+,K+–насоса, конкурентно с K+ взаимодействуя с участком связывания K+ на наружной поверхности мембраны. В результате при гипокалиемии (низкий [K+] плазмы крови) увеличивается токсичность сердечных гликозидов.
Рис. 2–11. Na+,K+–насос [7]. Модель Na+,K+–АТФазы, встроенной в плазматическую мембрану. Na+,K+–насос — интегральный мембранный белок, состоящий из 4 СЕ (формирующие канал 2 каталитические субъединицы a и 2 гликопротеина b). Na+,K+‑насос осуществляет транспорт катионов против электрохимического градиента (mX) — транспортирует Na+ из клетки в обмен на K+ (при гидролизе одной молекулы АТФ 3 иона Na+ выкачиваются из клетки, и 2 иона K+ закачиваются в неё). Слева и справа от насоса при помощи стрелок показаны направления трансмембранного потока ионов и воды в клетку (Na+) и из клетки (K+, Cl– и вода) в силу различий их DmX. АДФ — аденозиндифосфат, Фн — неорганический фосфат.
Протонная и калиевая АТФаза (H+,K+‑насос). При помощи этого фермента париетальные клетки желёз слизистой оболочки желудка участвуют в образовании соляной кислоты (электронейтральный обмен 2 внеклеточных ионов K+ на 2 внутриклеточных иона H+ при гидролизе одной молекулы АТФ).
H+,K+‑АТФаза — гетеродимер (2 высокомолекулярных a‑СЕ и 2 меньшей мол. массы и сильно гликозилированной b‑СЕ).
b‑СЕ — главный Аг, к которому при некоторых заболеваниях (например, при витамин B12–анемиях и атрофическом гастрите) в крови циркулируют АТ.
Са2+-транспортирующие АТФазы (Са2+‑АТФазы) выкачивают ионы кальция из цитоплазмы в обмен на протоны против значительного электрохимического градиента Са2+.
Са2+‑АТФазы плазмолеммы переносят ионы кальция из цитоплазмы во внеклеточное пространство в обмен на протоны (1 H+ в обмен на 1 Ca2+ при гидролизе 1 молекулы АТФ).
Са2+‑АТФазы саркоплазматического ретикулума. Как и Са2+‑АТФазы плазмолеммы, Са2+-транспортирующие АТФазы саркоплазматического ретикулума откачивают ионы кальция из цитоплазмы (2 H+ в обмен на 2 Ca2+ при гидролизе 1 молекулы АТФ), но не во внеклеточное пространство, а во внутриклеточные депо кальция (в замкнутые межмембранные объёмы гладкой эндоплазматической сети, именуемой в скелетных МВ и кардиомиоцитах — саркоплазматический ретикулум). Недостаточность Са2+‑АТФазы саркоплазматического ретикулума проявляется симптомами мышечной усталости (миопатия) при физической нагрузке.
Митохондриальная АТФаза типа F (F0F1) — АТФ–синтаза внутренней мембраны митохондрий — катализируют конечный этап синтеза АТФ (рис. 2–12). Кристы митохондрий содержат АТФ-синтазу, сопрягающую окисление в цикле Кребса и фосфорилирование АДФ до АТФ. АТФ синтезируется при обратном токе протонов в матрикс через канал в АТФ-синтезирующем комплексе.
Хемиосмотическое сопряжение. Сопряжение переноса электронов и синтеза АТФ (механизм предложил Питер Митчелл в 1961 г.) обеспечивает протонный градиент. Внутренняя мембрана непроницаема для анионов и катионов. Но при прохождении электронов по дыхательной цепи ионы H+ откачиваются из матрикса митохондрий в межмембранное пространство (рис. 2–12). Эта энергия электрохимического протонного градиента и используется для синтеза АТФ и транспорта метаболитов и неорганических ионов в матрикс.
Рис. 2–12. Механизм хемиосмотического сопряжения при образовании АТФ в митохондриях [11]. При транспорте электронов по дыхательной цепи из матрикса через внутреннюю мембрану в межмембранное пространство митохондрий поступает H+. Созданный таким образом электрохимический градиент (DmH) позволяет АТФ-синтазе катализировать реакцию АДФ + неорганический фосфат (Фн) ® АТФ.
Лизосомальные протонные насосы (H+‑АТФазы типа V [от Vesicular]), встроенные в мембраны, окружающие лизосомы (также комплекс Гольджи и секреторные пузырьки), транспортируют H+ из цитозоля в эти мембранные органеллы. В результате в них понижается значение pH, что оптимизирует функции этих структур.
Транспортёры ABC (от ATP-Binding Cassette — АТФ-связывающая последовательность) — либо гидролизующие АТФ насосы для активного транспорта разных ионов и молекул, либо ионные каналы или регуляторы ионных каналов. Так, ген CFTR (от cystic fibrosis transmembrane regulator — трансмембранный регулятор кистозного фиброза) кодирует структуру хлорного канала (одновременно регулятор функционирования других каналов), мутации которого приводят к развитию муковисцидоза (кистозного фиброза).
· Вторичный активный транспорт. Известны 2 формы активного вторичного транспорта: сочетанный (симпорт) и встречный (антипорт) (см. рис. 2–6).
Симпорт — сочетанный перенос (котранспорт, сочетанный транспорт) — движение двух веществ сквозь мембрану при помощи одного и того же переносчика (симпортёра).
Антипорт — одновременное трансмембранное перемещение двух веществ, но в противоположном направлении (встречный транспорт) при помощи одного и того же переносчика (антипортёра, обменника).
Симпорт реализуют интегральные мембранные белки. Перенос вещества Х против его электрохимического градиента (mХ) в большинстве случаев происходит за счёт поступления в цитозоль из межклеточного пространства по градиенту диффузии ионов натрия (т.е. за счёт DmNa), а в ряде случаев — за счёт поступления в цитозоль из межклеточного пространства по градиенту диффузии протонов (т.е. за счёт DmH). В итоге и ионы (Na+ или H+), и вещество Х (например, глюкоза, аминокислоты, неорганические анионы, ионы калия и хлора) перемещаются из межклеточного вещества в цитозоль.
Всасывание глюкозы происходит через верхушечные поверхности клеток, окаймляющих просвет проксимальных извитых канальцев почки и тонкого кишечника при помощи сочетанного транспорта с ионами Na+. Разные изоформы транспортёра переносят Na+ и глюкозу в соотношении 1:1 или 2:1. Расчёты показывают, что максимальная концентрация глюкозы в клетке может в 100 или в 104 раз превышать её концентрацию в плазме крови.
При стехиометрии 1:1 движущая сила равна сумме разностей электрохимического потенциала для Na+ (DmNa) и химического потенциала для глюкозы (Dmглюкоза). Равновесие достигается, когда DmNa в одном направлении становится равным Dmглюкоза в противоположном направлении:
Уравнение 2–5
–DmNa = Dmглюкоза
Выражая «DmNa» через концентрации Na+ снаружи (сн) и изнутри (вн) мембраны и МП (Vm), а «Dmглюкоза» через концентрации глюкозы снаружи (сн) и изнутри (вн) мембраны, можно вычислить максимально возможный трансмембранный градиент концентрации глюкозы:
Уравнение 2–6
Для эпителиальной клетки градиент концентрации Na+ десятикратен (это соответствует десятикратному градиенту концентрации глюкозы), а значение МП для внутренней поверхности мембраны –60мВ (это соответствует ещё десятикратному градиенту концентрации глюкозы).
При стехиометрии 2:1:
Уравнение 2–7
2DmNa = –Dmглюкоза
получаем максимальный теоретический трансмембранный градиент концентрации глюкозы в 104.
Всасывание аминокислот эпителиальными клетками проксимальных извитых канальцев нефрона и энтероцитами тонкого кишечника происходит при сочетанном транспорте вместе с Na+.
Неорганические анионы (фосфаты, сульфаты, бикарбонаты) транспортируют разные переносчики в сочетании с транспортом Na+.
Калий и хлор. Известно несколько Na+‑котранспортёров K+ и Cl–. В частности, в плазмолемму свободной поверхности эпителия восходящего отдела петли Хенле встроены ингибируемые фуросемидом (петлевой диуретик) переносчики (все 3 иона транспортируются в цитозоль). В то же время выход K+ и Cl– из клетки осуществляет не зависящий от Na+ K+,Cl–‑котранспортёр.
Разные протонные котранспортёры осуществляют одновременный с H+ перенос в цитозоль олигопептидов (эпителий проксимальных извитых канальцев почки), лактата и пирувата (многие клетки), дивалентных металлов (например, Fе2+ в канальцах нефрона и тонком кишечнике).
Антипорт (встречный, или обменный транспорт), как правило, перемещает анионы в обмен на анионы и катионы в обмен на катионы. Движущая сила обменника формируется за счёт поступления в клетку Na+.
Na+-Ca2+-обменник вмонтирован в плазмолемму всех клеток и вместе с Ca2+‑насосом плазмолеммы приводит к практически полному удаление Ca2+ из цитозоля (в обмен на поступление в цитозоль 3 ионов натрия). Эта стехиометрия обмена (3:1) обеспечивает трансмембранную разницу (DmCa) на 4 порядка величин.
Na+-H+-обменник осуществляет обмен внеклеточного Na+ на внутриклеточный H+ в соотношений 1:1, что важно для поддержания внутриклеточного pH, объёма клеток, секреции кислот (H+) и абсорбции Na+.
Na+-Cl–-HCO–3-обменник электронейтрален и сочетает однонаправленный вход в клетку 1 Na+ и 2 HCO–3 и транспорт из клетки 1 Cl–. Как и Na+-H+-обменник, этот транспортёр сдвигает значение внутриклеточного pH в щёлочную сторону.
Cl–-HCO–3-обменник (обменник анионов) функционирует независимо от потока Na+. Направленный внутрь клетки градиент Cl– одновременно транспортирует НСО–3 из клетки. Этот анионный обменник важен для обеспечения функции дыхания: через обменник в лёгких НСО–3 поступает в эритроциты, тогда как в тканях НСО–3 выходит из эритроцитов. Потоки НСО–3 важны для регуляции внутриклеточного pH, а потоки Cl– для регуляции клеточного объёма.
Обменники органических анионов обеспечивают поглощение гепатоцитами билирубина и жёлчных кислот, различными клетками — простаноидов (ПгE2, ПгF2a, тромбоксана B2), клетками почечных канальцев — органических анионов, антибиотиков, парааминогиппуровой кислоты.
