3. Диагностика, дифференциальная диагностика и организация лечебно-профилактических мероприятий респираторных заболеваний птицы.

Грипп

Диагноз. На основании эпизоотологических особенностей проявления гриппа, характерных клинических признаков и патологоанатомических изменений можно пос­тавить лишь предположительный диагноз. Для окончательного диагноза необходимо провести лабораторные исследования патологического материала (легкие, печень, головной мозг и др.), взятого от павших птиц в острую стадию болезни. Трупный материал должен быть свежим или законсервированным холодом ( — 60 °С), или 50 %-ным р-ром глицерина. Для серологических исследований от кур берут парные сыворотки крови в раз­личные периоды развития болезни.

Вируссодержащий материал подготавливают обычным способом на буферном растворе, добавляют к 1 мл жидкости по 5 тыс. ЕД стрептомицина и пенициллина и проводят заражение 9 —12-дневных куриных эмбрионов в аллантоисную полость. Через 48 ч после заражения берут аллантоисную жидкость и исследуют ее на наличие вируса в реакции гемагглютинации. Так же используют многослойные культуры клеток куриного эмбриона для изучения ЦПД, возникающего через 36 ч после заражения. Для биологической пробы используют 2 —4-месячных цыплят, которым внутримышечно вводят 0,5—1 мл суспензии.

Через 3 — 5 дней при наличии вирулентного вируса у цыплят возникают респираторные симптомы болезни, иногда со смертельным исходом Если вирус слабо­вирулентный, единственным доказательством его наличия служит выявление нарастания титра антител, появляющихся на 4—10-й день после заражения. Из серологических методов можно использовать РЗГА, РП, РСК. В практических условиях обычно используют наиболее простую и доступную при массовых исследованиях — РЗГА. У переболевшей гриппом птицы эту реакцию можно применить для ретроспективной диагностики.

Дифференциальный диагноз. Генерализованную септическую форму гриппа необходимо дифференцировать от ньюкаслской болезни, респираторную форму — от инфекционного бронхита, микоплазмоза, ларинготрахеита и других респираторных болезней

Лечение не разработано. Лечить больную птицу нецелесообразно. Ввиду опасности распространения вируса больную птицу уничтожают.

Профилактика и меры борьбы. Необходимо обособленно размещать различные возрастные группы птиц на территории, соблюдая при этом необходимые зооветеринарные разрывы. Комплектование птичников и зон проводят только одновозрастной птицей. В межцикловой профи­лактический перерыв помещения тщательно очищают и трехкратно дезинфицируют. Систематически контролируют благополучие хозяйств по гриппу, из которых завозят инкубационные яйца, проводят дезин­фекцию транспорта, оборотной тары и строго выполняют ветери-нарно-санитарные правила для птицеводческих хозяйств. При подозрении на возникновение гриппа птиц срочно уточняют диагноз лаборатор­ным исследованием.

При возникновении болезни хозяйство карантинируют. Если уста­новлен грипп в одном птичнике, то больную и подозрительную по заболеванию птицу убивают бескровным методом и уничтожают, остальную условно здоровую убивают на мясо. Проводят тщательную дезинфекцию помещения. При появлении болезни в нескольких птичниках проводят тщательную ежедневную выбраковку и убой больной и ослаб­ленной птицы. При наличии патологоанатомических изменений (перито­ниты, кровоизлияния в груднобрюшной полости, синюшность мышечной ткани) тушки вместе с органами направляют на техническую утили­зацию.

При отсутствии изменений проводят полное потрошение тушек, внутренние органы утилизируют, а тушки проваривают и используют для пищевых целей. Яйца, полученные от больной птицы, провари­вают в течение 10 мин. Яйца, заложенные в инкубатор из неблаго­получных птичников, утилизируют или уничтожают.

Для дезинфекции птичников применяют 3%-ный р-р едкого натра (16 — 20°С), экспозиция 7 ч; 3%-ный горячий (70 — 80°С) раствор едкого натра, экспозиция Зч; 1 %-ный р-р формальдегида, экспозиция 1 ч; осветленный р-р хлорной извести с содержанием 3% активного хлора, экспозиция 3 ч; 1 %-ный р-р надуксусной кислоты при экспозиции 6 ч. Дезинфекцию можно проводить также аэрозолями 38—40%-ного р-ра формальдегида (15 мл/м3) или 20%-ного р-ра надуксусной кислоты (20 мл/м3), экспозиция 6 ч.

Для дезинфекции тары в хозяйствах и на складах строят камеры объемом от 100 до 500 м3 и оборудуют их вентилятором для удаления газа. Аэрозоли из раствора формальдегида получают с помощью форсунки ПВАН и сжатого воздуха при рабочем давлении 3—4 атм или с помощью генератора АГУД-2.

Яйца для инкубации завозят из хозяйств, благополучных по гриппу. Каждую партию выведенного молодняка выращивают в пол­ностью освобожденном о г птицы изолированном помещении, располо­женном в оздоравливаемой зоне. По достижении 45-дневного возраста цыплят вакцинируют инактивированной вакциной.

Пух, перо, полученное от убоя условно здоровой птицы, просу­шивают в сушильных установках при температуре 85 — 90 °С в течение 15 мин. При отсутствии сушильной установки пух и перо дезинфи­цируют в любых приспособленных емкостях 3 %-ным горячим (45 — 50 °С) раствором формальдегида в течение 30 мин и затем сушат.

Респираторный микоплазмоз.

Диагноз на респираторный микоплазмоз ставят комплексно на основании эпизо-отологических, клинических и патологоанатомических данных с учетом результатов лабораторного исследования. Для выделения микоплазм делают посевы на агар и бульон Эдварда, заражают куриные эмбрионы, ставят биопробу на цыплятах. Для диагностики микоплазмоза птиц можно использовать сывороточно-капельную реакцию агглютинации. Серологическому обследованию подлежит 5—10% стада кур или индеек в возрасте от 2 мес и старше.

Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить колисептицемию, гемофилез, хронический пастереллез, аспергиллез, инфекционный ларинготрахеит и бронхит.

Лечение. Специфических средств лечения нет. Наиболее эффективны антибиотики широкого спектра действия (стрептомицин, хлортетрациклин, эритромицин). В последние годы испытаны спектам, тилозин, фармазин, фрадизин. Наибольшее распространение получили методы группового использования препаратов в присутствии птиц. Их лучше применяют аэрозольно, однократно в течение 4 — 5 дней. Эффективной мерой считается введение раствора аскорбата эритро­мицина внутрь инкубационных яиц в условиях перепада давления. Препарат подавляет развитие микоплазм.

Иммунитет не изучен, специфических биопрепаратов нет.

Профилактика и меры борьбы. Профилактика респираторного микоплазмоза рсновывается на комплексе общих мероприятий по предупреждению заноса возбудителя в хозяйство и повышению естест­венной резистентности птицы. Соблюдают строго изолированное содер­жание разновозрастных групп птиц. При поточной системе выращивания необходимо предусмотреть перерыв после каждой выращиваемой партии, достаточный для трехкратной дезинфекции и подготовки помещения к приему новой партии. Помещения, инвентарь и оборудование дезинфицируют 2 %-ным подогретым раствором едкого натра. Клеточ­ные батареи и инвентарь моют горячей водой, стены и потолки белят 20 %-ным р-ром свежегашеной извести. Заключительную дезинфекцию проводят парами формальдегида из расчета 20 мл формалина на 1 м3 помещения. Важное значение имеет кратность воздухообмена в птичниках. Завезенные в хозяйство племенные яйца инкубируют в отдельном инкубаторе, выведенный молодняк выращивают изолирован­но до 6-месячного возраста.

При установлении микоплазмоза необходимо наложить ограничи­тельные мероприятия (запрещают вывоз птиц и яиц для племенных целей и перемещение птиц из неблагополучного птичника). Степень распространения микоплазмоза определяют серологическими исследо­ваниями 5 — 10% птиц неблагополучной группы. Особенно важно иссле­довать кур родительского стада с тем, чтобы исключить трансо-вариальный путь распространения возбудителя микоплазмоза.

Больную птицу убивают и сжигают; условно здоровую птицу можно оставлять для получения пищевых яиц и мяса. В дальнейшем необходимо убить всех птиц неблагополучной группы. Помет и под­стилочный материал из неблагополучных птичников обеззараживают биотермически. Чтобы признать хозяйство оздоровленным от мико­плазмоза, необходимо после проведения комплексных оздоровительных мероприятий получить и вырастить здоровый молодняк.

Инфекционный бронхит кур.

Диагноз. На основании эпизоотологических данных, клинических признаков и патологоанатомических изменений можно поставить лишь предварительный диаг­ноз на инфекционный бронхит кур. Решающее значение имеет проведение ла­бораторных исследований — выделение и идентификация вируса и обнаружение спе­цифических антител в парных пробах сыворотки крови птиц. Для выделения и идентификации вируса заражают 8 —10-дневные куриные эмбрионы в аллантоисную полость тканевой суспензией из легких, трахеи и бронхов от убитых больных птиц. Гибель зараженных эмбрионов обычно проявляется на 1 — 3-м пассаже через 36 — 48 ч. Одновременно с выделением вируса проводят экспериментальное воспроизведение болезни на 4 — 6 цыплятах 10 —20-дневного возраста, полученных из хозяйств, благополучных по инфекционному бронхиту; им вводят интратрахеально тканевую суспензию в дозе 0,5 мл. При положительной биопробе через 18 — 36 ч у цыплят развиваются клинические признаки болезни.

Выделенный вирус идентифицируют с помощью специфических иммунных сывороток в РН, РИГА, РДП и РИФ. Вируснейтрализующие антитела в основном накапливаются с 11- по 36-й день и сохраняются в сыворотках крови цыплят 483 дня.

С помощью РИГА антитела выявляются в течение 187 дней после заболевания. РДП особенно ценна для быстрой диагностики острых случаев болезни, так как антитела можно обнаружить лишь между 7- и 21-м днями после начала заболе­вания. Однако с помощью РДП антитела к инфекционному бронхиту выявляются лишь в 10—50% случаев.

Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить инфекционный ларинготрахе-ит, ньюкаслскую болезнь, оспу, грипп, инфекционную бурсальную болезнь, рес­пираторный микоплазмоз, гемофилез.

Лечение при инфекционном бронхите не разработано.

Иммунитет. Переболевшая птица устойчива к инфицированию гомологичными штаммами вируса. В сыворотке крови антитела сохра­няются длительное время, но прямой зависимости напряженности имму­нитета от уровня вируснейтрализующих антител нет. Для профилак­тики болезни за рубежом применяют живые аттенуированные и инакти-вированные вакцины.

Профилактика и меры борьбы. Необходимо комплектовать хо­зяйства клинически здоровой птицей. Для инкубации нужно брать яйца, полученные от птиц, в сыворотке крови которых не выявлены специфические антитела. Инкубационные яйца дезинфицируют до заклад­ки в инкубатор в течение 30 мин парами формальдегида (25 — 30 мл формалина, 17 — 20 г перманганата калия, 12—15 мл воды на 1 м3 камеры). Птицеводческие помещения перед посадкой птицы подвергают дезинфекции растворами формальдегида (1 %-ный), едкого натра (2%-ный), хлорной извести, содержащей 2% активного хлора. Можно проводить дезинфекцию и в присутствии птицы. Для этого исполь­зуют аэрозоли молочной кислоты, 20%-ного водного раствора резор­цина или триэтиленгликоля из расчета 0,025 г препарата на 1 м3 воздуха помещения 2 — 3 раза в день с интервалом 2 ч; распыляют не более 15 — 20 мл р-ра в минуту.

При установлении диагноза на инфекционный бронхит хозяйство (отделение, ферма) объявляют неблагополучным и вводят ограничения. Запрещают вывоз яиц, эмбрионов и живой птицы, перемещение пти­цы, кормов, инвентаря внутри хозяйства; ввоз птицы из других хозяйств и комплектование стада переболевшей птицей.

При возникновении болезни в отдельном птичнике больных, слабых и некондиционных птиц убивают на санитарной бойне и подвергают технической утилизации или уничтожают. Остальных птиц отправляют для убоя на птицеперерабатывающее предприятие. При возникновении заболевания в нескольких помещениях в хозяйстве про­водят ежедневно тщательную выбраковку и убой больных и слабых птиц на санитарной бойне с последующей переработкой на мясо- ' костную муку.

Реализацию яиц через торговую сеть проводят после их дезин­фекции парами формальдегида, а тушки убитой птицы направляют на промпереработку или в сеть общественного питания. Помет и глубокую подстилку обеззараживают биотермически. Проводят тща­тельную механическую очистку и дезинфекцию инкубаторов, птичников, оборудования, инвентаря 2%-ным горячим раствором едкого натра (экспозиция 2 ч) и территории 3%-ным р-ром едкой щелочи с добав­лением 1 %-ного р-ра формалина. Помещение дезинфицируют через каждые 2 — 3 дня, а территорию — раз в неделю.

Орнитоз.

Диагноз ставят на основании клинико-эпизоотологических данных, результатов патологоанатомического вскрытия и обязательно лабораторных исследований, включая микроскопию мазков (обнаружение элементарных телец) и биопробу на белых мышах и куриных эмбрионах В лабораторию посылают труп птицы, завернутый в несколько слоев марли, смоченной 5 %-ным р-ром лизола или фенола С целью подавления бактериальной микрофлоры суспензию патологического материала (1 10) обрабатывают стрептомицином (50 мкг) и пенициллином (по 1000 ЕД/мл).

Для диагностики латентных форм орнитоза исследуют сыворотку крови птиц, в РСК. В благополучных хозяйствах у птиц нет комплементсвязывающих антител. Массовые исследования проводят путем внутрикожного введения орнитозного аллергена уткам в межчелюстное пространство, курам — в сережку Через 36—48 ч у уток на месте введения аллергена появляется крарное пятно с плотным бледным инфильтра­том в центре, у кур — воспалительная реакция сережки, продолжающаяся 3 — 7 дней.

Дифференциальный диагноз орнитоза необходимо проводить в отношении респи­раторного мйкоплазмоза, вирусного синусита, гриппа и сальмонеллеза уток, нью-каслской болезни и многих других инфекционных болезней.

Лечение не проводят.

Иммунитет. После переболевания орнитозом возникает нестериль­ный слабовыраженный и непродолжительный иммунитет. Вакцины не разработаны.

Профилактика и меры борьбы. На птицефермах необходимо сие тематически проводить отпугивание дикой птицы, залетающей на тер риторию хозяйства. Вентиляционные каналы и окна производственны: помещений должны быть закрыты металлической сеткой. Выгулы дл: водоплавающей птицы огораживают. Постоянно контролируют зооги гиенические условия содержания птицы и полноценность рациона При необходимости в критические периоды технологии выращивать птицы применяют лечебно-профилактические премиксы, содержащие под титрованные антибиотики и сульфаниламидные препараты. Вновь за везенную птицу карантинируют на 3 месяца.

При подозрении на заболевание орнитозом в хозяйстве век больную и подозрительную по заболеванию птицу немедленно изолирую: и принимают меры к уточнению диагноза. Птичники, выгульны! дворики и помещения, в которых находилась больная птица, тщатель но очищают и проводят влажную дезинфекцию осветленным растворох хлорной извести, содержащей 5 % активного хлора, 10 %-ным р-ро.\ лизола, формалин-ксилонафтовой смесью (3:1) из расчета 1 л ш 1м2 поверхности. Можно использовать аэрозоль 40 %-ного р-ра фор мальдегида из расчета 10-15 мл р-ра на 1 м3 помещения.

При установлении диагноза на орнитоз в хозяйстве вводя! ограничения. Всю птицу неблагополучных птичников необходимо убип и потрошить на месте. Мясо больных птиц после термической обра­ботки используют в пищу; пух и перо тщательно собирают и сжига­ют. Благополучные птичники дезинфицируют без вывода птицы аэро­золем молочной кислоты. Ограничения с хозяйства снимают чере: 6 мес после последнего случая выделения больной орнитозом птиць и проведения заключительной очистки и дезинфекции в птичниках.

Инфекционный ларинготрахеит.

Диагноз. Наличие характерных клинико-эпизоотологических данных и патологсшь. томических изменений позволяет лишь заподозрить возникновение инфекционного Jb. ринготрахеита, окончательный диагноз устанавливают на основании результатов лаборь торных исследований, включающих: а) выделение вируса из содержимого траяя больных кур на куриных эмбрионах или в культуре тканей; б) биологичесг пробу на восприимчивых цыплятах; в) обнаружение внутриядерных включений в гмс~ срезах и в мазках соскобов, взятых со слизистой оболочки трахеи; г) бактерие--логическое исследование для исключения смешанных инфекций; д) реакции нейтрали­зации, длительной преципитации и преципитации с вируссодержащей жидкостью Вс-~ можна ретроспективная диагностика в реакции нейтрализации с сывороткой крс*п переболевшей птицы. Вирус болезни, как правило, не вызывает гибели куриь^ эмбрионов, и поэтому учет реакции проводят по специфическим поражениям хорр аллантоисной оболочки

Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить инфекционный бронхит tamo. гиповитаминоз А, респираторный микоплазмоз, оспу, заразный насморк.

Лечение. Специфических средств лечения нет. Для предупреждения осложнений рекомендуется применять аэрозоли йодистых препаратов, хлорскипидара, антибиотики широкого спектра действия.

Иммунитет. После переболевания куры приобретают невосприим­чивость к последующему заражению. Сывороточные антитела появля­ются через 14—20 дней после заражения или вакцинации и сохра­няются 2 — 3 мес.

В СССР для специфической профилактики рекомендованы сухие вирусвакцины из штамма ЦНИИПП (С. П. Щенников и Е. А. Пет­ровская) и из штамма ВНИИБП. Вакцины применяют в неблагопо­лучных хозяйствах методом втирания в слизистую оболочку верхнего свода клоаки. Иммунитет наступает через 7—10 дней после введения вакцин и сохраняется у большинства птиц в течение всего срока и\ использования. Разработан аэрозольный метод вакцинации против инфек­ционного ларинготрахеита, а также комплексная иммунизация против инфекционного ларинготрахеита, ньюкаслской болезни, оспы.

Профилактика и меры борьбы. С целью недопущения заноса вируса болезни комплектуют хозяйство птицей и завозят инкубацион­ные яйца и суточных цыплят только из благополучных хо­зяйств; суточных цыплят выращивают изолированно от основного пти-цепоголовья. Всю оборотную тару внутри хозяйства обязательно мар­кируют, моют и дезинфицируют после каждого использования.

Перед размещением очередной партии птицы помещение тщатель-нЬ дезинфицируют, просушивают и оставляют свободным не менее чем на 10 дней при клеточном и на 14 дней при напольном содержании. Один раз в году делают профилактический перерыв на 27 дней. Ежедневно контролируют воздухообмен и микроклимат в птичниках; концентрация аммиака не должна превышать 0,01 мг/л, сероводорода — 0,006 мг/л, углекислоты — 0,2 %, при относительной влажности воздуха не выше 60-70%.

При установлении инфекционного ларинготрахеита проводят огра­ничительные мероприятия. В неблагополучном хозяйстве всю больную и подозреваемую по заболеванию птицу убивают, тщательно дезин­фицируют птичник и убойный цех подогретым до 45 °С 2 %-ным р-ром едкого натра, 2 %-ным р-ром хлорной извести, содержащим 2 % ак­тивного хлора, 10 %-ным р-ром кальцинированной соды при темпера­туре 60 СС.

Ограничения с хозяйства снимают через 2 мес после ликвидации инфекционного ларинготрахеита, и проведения всех оздоровительных мероприятий.

Инфекционный синусит утят.

Диагноз. При постановке диагноза необходимо учитывать эпизоотологические, клинические и патологоанатомические данные, а также результаты лабораторных исследований, включая биопробу на восприимчивых утятах Заражают их в подглаз­ничный синус. При положительной биопробе у утят через 5 — 7 дней возникают клинические признаки синусита. При постановке диагноза необходимо провести бакте­риологические исследования по выделению и типизации возбудителей условнопатоген-ной микрофлоры .

Дифференциальный диагноз. Исключают сальмонеллез, пастереллез, незаразный аэроцистит, вирусный гепатит.

Лечение. В опытах И. К. Кравец (1960) применение йодистых препаратов с питьевой водой и одновременное добавление в корм биоветина в начальной стадии заболевания приводило к выздоровлению утят. Йод добавляли в разведении 1 : 10000 ежедневно однократно в течение пяти дней; биоветин — по 15 мг на утенка 2 раза в день в течение пяти дней. Курс лечения повторялся через 3 дня. Для превентивной терапии синусита утятам 3 — 6-недельного возраста добав­ляют в корм биомицин в дозе 10—15 мг на утенка.

Иммунитет. После переболевания утята приобретают нестерильный иммунитет. У утят, вакцинированных живым вирусом, обнаруживают в течение четырех месяцев сывороточные антитела. Доказана возмож­ность трансовариальной передачи антител в течение 12 мес после им­мунизации живым ослабленным вирусом.

Профилактика и меры борьбы. Не разрешается вывозить инкуба­ционные яйца из хозяйства, неблагополучного по вирусному сину­ситу. Необходимо содержать уток в сухих, хорошо вентилируемых помещениях на глубокой несменяемой подстилке, которую наслаивают по мере загрязнения. Размещают уток не больше 3 — 4 голов на 1 м2 площади пола. В зимнее время на водоемах вокруг прорубей насти­лают сухую солому. В теплое время года при температуре воздуха не ниже 15 — 20°С утят с 7—10-дневного возраста выпускают на сухой выгул. На водный выгул выпускают их в хорошую погоду с 15 — 20-днев­ного возраста при температуре воды не ниже 15°С.

С первого дня жизни утятам дают полноценную мучную смесь в виде рассыпчатой влажной мешанки с добавлением 10—15% свежей зелени. Каждую новую партию утят помещают в дезинфицированное помещение с подстилкой из опилок, торфа, соломы. Температура воздуха в первый день жизни возле источника обогрева должна быть не ниже 28 °С.

При появлении болезни необходимо устранить неблагоприятные факторы. Больных утят изолируют, ежедневно проводят дезинфекцию проходов в птичниках и выгульных площадок 2 %-ным р-ром едкого натра. К питьевой воде добавляют формалин 1 : 10000. После прекра­щения заболевания оставшуюся птицу выращивают изолированно и сдают на птицекомбинат. Птичники, выгульные дворики дезинфицируют после каждой партии утят и перед снятием ограничительных мероприя­тий.