Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Незаразные болезни.doc
Скачиваний:
1062
Добавлен:
30.05.2014
Размер:
5.54 Mб
Скачать

6. Переливание крови у животных. Группы крови, стабилизаторы.

При потере большого количества крови введение изотонических жидкостей недостаточно; в таких случаях кровяное давление после кратковременного повышения вновь катастрофически падает. В подобных условиях эффективным является переливание крови.

До начала XX века попытки воспользоваться кровью донора с целью возмещения кровопотерь предпринимались многократно и результаты их в условиях эксперимента на собаках были много­обещающими; у человека же в результате переливания крови наступали тяжелые осложнения, часто заканчивавшиеся смертью. Такие же явления наблюдали при гемотрансфузии у лошадей. Было также выяснено, что дефибринирование крови не устраняет эти осложнения.

Причины неудач переливания крови стали ясными при исполь­зовании на практике учения об агглютинации. Подобно тому, как сыворотка иммунных животных склеивает в комки соответствую­щие бактерии, кровь животного одного вида склеивает эритроци­ты животного другого вида. Это явление, именуемое гетерогемо-агглютинацией, в последующем было установлено и в пределах одного вида (изогемоагглютинация). После склеивания в комки эритроциты растворяются в сыворотке (гемолиз).

Ландштейнер (1901) различал три группы крови. Позже (1907 г.) Янский выделил четвертую, характеризующуюся тем, что ее сы­воротка не агглютинирует эритроциты остальных групп, ее же эритроциты агглютинируются сыворотками всех групп. Наличие четырех групп крови было самостоятельно установлено также Моссом (1910). Дунгерн и Гиршфельд (1911) пришли к выводу, что для объяснения факта существования четырех групп крови допускать наличие двух агглютининов (а,Р) в сыворотке мух агглютининогенов (А, В) в эритроцитах. У лошади и крупного рогатого скота, согласно имеющимся И1.Ш, практически применимо такое же деление групп крови

Л. Герман, В. Н. Чередков и др.). Агглютинация эритроцитов разных групп крови сыворотками

(ставлена в следующей таблице.

1) кровь первой группы можно переливать животным всех остальных групп, так как ее эритроциты не агглютинируются и*с сыворотками;

2) сыворотка крови четвертой группы лишена способности агглютинировать эритроциты: животным с кровью этой группы можно переливать кровь всех остальных групп;

3) кровь второй группы можно переливать животным с кровью второй и четвертой групп;

4) кровь третьей группы можно переливать животным с кровью третьей и четвертой групп.

Допустимость переливания крови разных групп наглядно пред­ставлена на схеме рисунка 2.

Необходимо учитывать возможность агглютинации эритроци­тов переливаемой крови сывороткой реципиента. Меньшее зна­чение имеет обратное явление — агглютинация эритроцитов реци­пиента сывороткой донора, так как разведение сыворотки донора в крови реципиента ослабляет ее агглютинационную способность. Сыворотка крови лошади и крупного рогатого скота в срав­нении с сывороткой крови человека обладает слабо выражен­ными агглютинационными свойствами.

У собак, групповые различия крови отсутствуют. Поэтому у них допустимо однократное переливание кро­ви без ограничений, обуслов­ленных изогемоагглютинанацией. Повторные гемотрансфузии от одного и того же донора у животных всех видов сопро­вождаются сравнительно часто тяжелыми, иногда со смертель­ным исходом, анафилактоидными реакциями. Несовместимость крови, возникающая после первой гемогрансфузии, объясняет­ся появлением в плазме реципиента изоиммунных антител. Они образуются в качестве ответной реакции организма на введе­ние крови как специфического изоантигена. Посттрансфузионные осложнения наблюдаются также при переливании крови другого донора. Определение совместимости крови.

Совместимость крови донора и реципиента можно установить путем перекрестной агглютинации. Из вены до-пора и реципиента берут tf разные пробирки по 10 мл крови и дают ей отстояться до полного свертывания. Отделившуюся сыворотку сливают в другие пробирки, а из сгустков крови после прибавле­ния некоторого количества физиологического раствора взбалтыва­нием готовят взвеси эритроцитов. Полученные сыворотки и взвеси аритроцитов проверяют на взаимную агглютинацию. Для этого на предметное стекло помещают отдельно по две капли сыворотки, прибавляют к ним перекрестно по маленькой капле взвеси эритро­цитов, смешивают стеклянной палочкой или покачиванием, лег­ким встряхиванием и в течение 5 минут наблюдают за ходом реак­ции.

Агглютинация отсутствует в обеих пробах, когда донор и реци­пиент принадлежат к одной группе. Наличие агглютинации в сы­воротке реципиента при отсутствии ее в сыворотке донора слу­жит противопоказанием к переливанию. При отрицательной ре­акции в сыворотке реципиента и положительной реакции в сыво­ротке донора переливание допустимо в ограниченных количествах.

В практике переливания крови у животных возможна также прямая проба. При этом описанным выше способом смеши­вают две капли сыворотки реципиента с каплей крови, взятой из уха намечаемого донора. Положительная реакция указывает на необходимость подобрать в качестве донора другое животное.

Определение групп крови с помощью стандартных сы­вороток имеет значительные преимущества, позволяя свое­временно выделять животных-доноров, удовлетворяющих всем тре­бованиям практики. В СССР такие сыворотки для лошадей впер­вые приготовил В. А. Герман (1935).

Для определения групповой принадлежности крови достаточ­но иметь стандартные сыворотки второй (А) и третьей (В) групп. На предметном стекле, белой тарелке или блюдце на некотором отдалении одна от другой ставят пометки — II, III. У этих поме­ток наносят по две капли соответствующих сывороток. Затем к последним прибавляют по маленькой (с булавочную головку) кап­ле исследуемой крови. При покачивании стекла кровь смешивает и с сывороткой, придавая ей равно­мерно красный огтенок. Через 20— 'О, секунд появляются признаки итлютинации в одной из сывороток или в обеих, или же агглютинация от­сутствует (окучивания эритроцитов не наблюдается). Отсутствие агглю-iинации в обеих сыворотках указы-иает на принадлежность крови к пер-пой (0 оф) группе, агглютинация в обеих сыворотках — на кровь четвер-юй (АВО) группы, агглютинация юлько в сыворотке третьей группы — на кровь второй (А(3) группы, агглю-!инация только в сыворотке второй i руппы — на кровь третьей (Ва) ™ i руппы (рис. 3). Реакцию ставят при измпературе воздуха в пределах 15—20°. За ходом реакции наблю­дают не меньше Г) минут. Возмож­ные ошибки при пользовании двумя (ыворотками надежно устраняются дополнительной контрольной реакцией с сывороткой первой группы: когда в последней агглютинация отсутствует, ее не должно быть и в обеих других.

Псевдоагглютинация напоминает истинную за­метным просветлением сыворотки, возникающим в обычный срок. Она сравнительно часто наблюдается у животных, характеризует­ся скучивлнием эритроцитов в монетные столбики и особенно резко выражена у лошадей, что объясняют (И. П. Власовский и др.) малым содержанием в их крови лецитина. Распознавать псевдо­агглютинацию нетрудно: при сотрясении капли или прибавлении к ней физиологического раствора сыворотка вновь становится рав­номерно красной. Применение разведенных эритроцитов обычно предупреждает псевдоагглютинацию.

П а и а г г л ю т и н а ц и я возникает большей частью, если реакцию ставят при низкой температуре. В этом случае сыворотка агглютинирует эритроциты крови всех групп, в том числе и своей; реакция протекает до 30 минут. Иногда трудно отличить ее от истинной агглютинации.

В практике удобно пользоваться универсальными •донорами, то есть животными с кровью первой (Ооф) группы. При гемотрансфузии средних доз от таких доноров редко на-блкГдаются осложнения (при необходимости переливания боль­ших количеств крови донор и реципиент должны быть одной группы).

В выборе доноров строго соблюдают условия, исключающие перенос с кровью инфекционных заболеваний.

Способы переливания крови

Переливание крови осуществляется или непосредственно от донора реципиенту (прямой метод), или обычным способом внутривенных вливаний стабилизированной крови (непрямой метод).

Прямой метод гемотрансфузии путем сообщения вен донора и реципиента через специальные аппараты (рис. 4) прост. Система трубок аппарата промывается жидким вазелиновым мас­лом и 4%-ным раствором лимоннокислого натрия, чем в известной мере предотвращается травмирование кровр и образование сгуст­ков.

У крупных домашних животных удобоприменим способ соеди­нения вен донора и реципиента резиновой трубкой с оливой (рис. 5), снабженной иглами на концах. Донора помещают на возвышенную площадку. В его яремной врне пелотом, наложенным у основания шеи, создается повышенное давление крови (рис. 6). Пункцию ве­ны делают одновременно у обоих животных. В этот момент система трубок должна быть разобщена у иглы реципиента, а свободный конец трубки опущен вниз. Когда кровь начинает вытекать равно­мерной струей, этот конец трубки присоединяют к игле, и кровь поступает в вену реципиента. Чтобы знать дозировку переливаемой крови, необходимо предварительно определить пропускную спо­собность собранной системы. При условии, что в течение 1 минуты

через систему протекает 100 мл крови, для переливания 2 л потребуется 20 минут.

Трубку стерилизуют кипячением в собранном виде, затем внутренние стенки ее смачивают стерильным вазе­линовым или камфорным маслом. Смы­вающийся со стенки канала иглы, трубки и оливы остаток масла уносит­ся током первых порций крови, выте­кающей до момента соединения труб­ки с иглой реципиента. За током крови можно следить на стенке косо поставленной оливы.

Место пункции вен при продол­жительных вливаниях обезболивают (инфильтрационная анестезия).

При непрямом методе кровь поступает из вены донора в сосуд, где смешивается для предот­вращения свертывания со стабили­затором — лимоннокислым натрием: 4%-ный раствор его, приготовлен­ный на дважды дистиллированной воде, наливают в сосуд из расчета 100 мл на 1 л крови, получаемой от донора. В этом сосуде, помещенном в теплую (37—40°) воду и равномерно покачиваемом, кровь смешивают со ста­билизатором. Реципиенту ее вводят внутривенно. Цитрированная кровь, сохраняемая при температуре 4°, не свертывается в течение 7—10 дней. В таком виде ее можно транспортиро­вать на значительные расстояния, что представляет большое преимущество не­прямого метода гемотрансфузии.

Рис. 4. Прибор для прямого переливания крови. Рис. 5. Трубочная системадля прямого переливания крови у животных по И. Е. Поваженко: а — игла для пункции вены донора, *б — игла для пункции вены реципиента, виг — рези­новые трубки, д — стеклянная олива.

В ветеринарной практике в качестве кратковременного стабилизатора ис­пользуют хлористый кальций (150 мл 10%-ного раствора на 1 л крови лоша­ди). Он у крупного рогатого скота как и 10%-ный раствор салициловокислого натрия, менее пригоден для гемотранс­фузии; требуется сравнительно высокая концентрация (2 : 10, 3 : 10) препарата в крови.

Перед переливанием крови обяза­тельна биологическая проба. Она заключается в инфузии неболь­шого количества (200—300 мл для ло­шади) крови с последующим наблюде­нием за реципиентом в течение 10 ми­нут. При несовместимости крови у него возникают симптомы гемолитического шока; нормальное состояние его в течение этого

срока окончательно подтверждает совместимость крови. Намеченное количество ее вводят медленно, не больше 100 мл в 1 минуту.

Механизм действия перелитой крови

Положительное влияние пере­литой крови сказывается незамед­лительно. Вместе с ней в организм реципиента вводятся ферменты, гормоны, белки, органические соли. При значительной кровопотере одни эритроциты в физиологиче­ском растворе, как и другие изо­тонические жидкости, не способны поддерживать жизнь,тогда как сыворотка совместимой крови без эритроцитов оказывает такое же благотворное влияние, как и цельная кровь.