- •Методические указания для студентов к практическому занятию
- •Санитарная микробиология пищевых продуктов, санитарный контроль бактерионосительства у персонала пищеблоков. Микробиология холеры и галофилезов»
- •Владивосток – 2013 г.
- •2. Мотивация изучения темы.
- •3. Цели занятия.
- •4. Задания для самостоятельной подготовки к практическому занятию:
- •4.1. Перечень контрольных вопросов для самоконтроля знаний.
- •I раздел:
- •II раздел:
- •4.2. Задания для срс во внеучебное время
- •Методические указания по выполнению практической работы с полным регламентом протокола занятия и его оформлением
- •5.3. Задания для самоконтроля подготовки к практическому занятию.
- •6. Этапы проведения практического занятия.
- •7. Ориентировочная основа действия (оод) для проведения самостоятельной работы студентов в учебное время (курация, выполнение лабораторной работы и т.Д.).
- •9. Учебно-материальное обеспечение:
- •9.1 . Литература:
- •9.2. Базы данных, информационно-справочные и поисковые системы:
- •Методы исследования пищевых токсикоинфекций:
- •Внутрибольничный сальмонеллез
- •Бактериологическое исследование
- •2. Микроскопия (1, 2 делают для того, чтобы убедиться в чистоте культуры)
- •Методы дополнительного тестирования и диагностики
- •Материал исследования
- •Микробиологическая индикация ботулизма у больных и пищевых объектах:
- •Токсинообразование у бацилл ботулизма:
- •Сальмонеллезных токсикоинфекций
- •Сальмонеллезов
- •Объекты и материал для диагностики
- •Мероприятия, направленные на предупреждение заноса инфекции в стационары и возникновение госпитальных сальмонеллезов:
- •Классификация семейства Vibrionaceae
- •V.Harveyi V.Marinus
- •V.Parahaemolyticus V.Minicus
- •Основные дифференциальные признаки возбудителей холеры
- •Развернутая дифференциальная характеристика холерных 01 и основных видов холерных не 01 вибрионов
- •Бактериологического исследования (начальный этап)
- •Ускоренный метод диагностики холеры
- •I этап:
- •Экспресс-методы диагностики вибрионов
- •Особенности иммунолюминисцентной диагностики холеры – риф и рниф
- •Питательные среды
- •Фаготипирование холерными диагностическими бактериофагами хдф холерных вибрионов Эль-Тор с одновременной дифференциацией их патогенности
- •Фаготипирование энтеротоксигенных неагглютинирующих вибрионов (наг) не 01 группы типовыми бактериями тэпв к энтеропатогенным вибрионам
- •Характеристика генетической основы патогенности
- •Галофильные вибрионы
- •Основные свойства некоторых морских галофильных и не галофильных вибрионов, патогенных для человека
Экспресс-методы диагностики вибрионов
Люминесцентно-серологический (РИФ, РНИФ).
Иммобилизация вибрионов типовыми сыворотками.
Иммобилизация вибрионов типовыми бактериофагами.
Развернутая реакция агглютинации в бульоне.
Метод микроагглютинации материала.
Выявление вибрионов в воде реакцией агглютинации.
Исследование воды путем подращивания на мембранных фильтрах с помощью люминесцентной микроскопии.
Особенности иммунолюминисцентной диагностики холеры – риф и рниф
РИФ – реакция прямой иммуно-флюоресценции при холере ставится по классической методике путем микроскопического выявления возбудителя в зафиксированном и обработанном ФИТЦ – препаратом мазке. Эта особенность (обязательная фиксация) связана с эпидемической опасностью работы с ООИ.
РНИФ – непрямая реакция иммунофлюоресценции ставится в случае отсутствия меченой ФИТЦ противохолерной иммунной сыворотки, но при наличии специфической не меченой и меченой противоиммуноглобулиновой видовой к белкам того вида животного, который использован для получения иммунных противохолерных антител. Эта реакция разработана Кунсом. Она выявляет антитела к Ig в иммунной сыворотке, среагировавшие в мазке с возбудителем.
Приложение №11
Питательные среды
Жидкие среды обогащения:
1% пептонная вода.
Пептонная вода с теллуритом калия.
Плотные среды:
Щелочной агар (рН = 8-8,2).
Щелочной агар с теллуритом калия.
Желточно-солевой агар (ЖАС).
Среда Дьедонне (щелочной МПА с дефибринированной кровью быка или барана).
Среда Монсура (таурохолат-теллуритовая).
Среда Аронсона (щелочной агар с сахарозой, сернокислым натрием, фуксином). Холерные вибрионы дают розовые колонии.
Среда Оттоленги (щелочной МПБ с бычьей желчью).
Теллурит-калиевая среда.
Висмут-сульфитная среда Рида.
Висмут-сульфитная среда с маннозой Вильсона и Рейли, рН-8,8.
Консервирующие среды:
Среда Венкатрамена и Рамакришнона (щелочной бульон с морской солью).
2% раствор поваренной соли (морская соль).
1% пептонная вода.
Приложение №12
Фаготипирование холерными диагностическими бактериофагами хдф холерных вибрионов Эль-Тор с одновременной дифференциацией их патогенности
Серотип |
Вирулентность |
Чувствительность к монофагам |
Гемолиз эритроцитов барана | ||
ХДФ-3 |
ХДФ-4 |
ХДФ-5 | |||
Огава, Гикошима |
Высокая |
+ + - + |
+ + + - |
+ - + + |
- - - - |
Слабая |
+ + + - |
+ + - - |
+ - + + |
+ + +(-) +(-) | |
Авирулентные |
- + - |
- - + |
- - - |
+(-) +(-) +(-) | |
Инаба |
Высокая |
+ + - - + |
+ + + - - |
+ - + + - |
- - - - - |
Слабая |
+ + - + - + |
+ + + - - - |
+ - + + + - |
+ + + + + + | |
Авирулентные |
- - |
- + |
- - |
+(-) +(-) |
Примечание: ХДФ – холерный диагностический фаг.
Фаготипирование энтеротоксигенных неагглютинирующих вибрионов (наг) не 01 группы типовыми бактериями тэпв к энтеропатогенным вибрионам
Фаготипы вибрионов НАГ |
Типирующие фаги | ||||||
ТЭПВ - 1 |
ТЭПВ - 2 |
ТЭПВ - 3 |
ТЭПВ - 4 |
ТЭПВ - 5 |
ТЭПВ - 6 |
ТЭПВ - 7 | |
1 |
+ |
|
|
|
|
|
|
2 |
|
+ |
|
|
|
|
|
3 |
|
|
+ |
|
|
|
|
4 |
|
|
|
+ |
|
|
|
5 |
|
|
|
|
+ |
|
|
6 |
|
|
|
|
|
+ |
|
7 |
|
|
|
|
|
|
+ |
Примечание: ТЭПВ – типовые фаги к энтеропатогенным вибрионам НАГ. Типируют методом агаровых слоев.
Методика: испытуемую культуру засевают в пробирку с 4 мл МПБ, инкубируют при + 37о С в течение 3 часов. Затем 0,3 мл бульонной культуры вносят в пробирку с 4 мл. 0,7% расплавленного и остуженного до + 45оС МПА, перемешивают и выливают вторым тонким слоем в стерильную чашку с первым застывшим слоем 2% МПА, после этого на поверхность МПА петлей или каплей из пипетки наносят типовые бактериофаги в цельном виде, а при необходимости – в разведении от 10-1 до 10-4. Каплям фага дают подсохнуть, впитаться, после чего пробы помещают в термостат при +37оС на 4-18 часов. Контроль – физ.раствор.
Учет результатов ведут при наличии стерильных пятен в связи с лизисом чувствительных к фагу культур. В контроле и при нечувствительности культуры лизиса нет.
Ускоренный метод. Из подготовленной бульонной культуры делают штриховой высев на 8 секторов МПА, а сверху наносят бактериофаг. Режим инкубации и учет результатов те же.
Приложение №13