test_obschaya_khirurgia_miniekzamen_1

Асептика.

1. Асептика, это:

1) система мероприятий, направленных на предупреждение микробной контаминации организма больного;

2. Выделяют следующие пути микробной контаминации ран:

1)эндогенный;

2)экзогенный;

3. Пути эндогенной микробной контаминации ран:

1)гематогенный;

2)контактный;

3)лимфогенный;

4. Пути экзогенной микробной контаминации ран:

1)контактный;

2)имплантационный;

3)воздушно-капельный;

5. Пути эндогенной микробной контаминации ран:

1)микрофлорой желудочно-кишечного тракта;

2)через бактериально контаминированный экссудат брюшной полости;

3)с током лимфы или крови из гнойно-воспалительного очага.

1)инфицирование операционной раны при вскрытии полости абсцесса;

2)наличие у больного несанированного очага хронической инфекции;

3)бактериальная контаминация мочевыводящих путей больного.

9. Борьба с экзогенным контактным путем контаминации операционных ран включает:

1)стерилизацию белья;

2)стерилизацию хирургического инструментария;

3)обработка рук хирурга;

10. К основным мероприятиям асептики относят:

1)организационные;

2)обеззараживающие;

3)специальные хирургические приемы;

4)санация очагов эндогенной инфекции;

11. Организационные мероприятия асептики включают:

1)использование одноразового белья, шовного материала, инструментария;

2)выявление среди медицинского персонала бактерионосителей;

1)газовая стерилизация;

2)гамма-излучение;

3)стерилизация в спиртовом растворе хлоргексидина.

15. К средствам «холодной» стерилизации относятся:

1)ультрафиолетовое облучение;

2)ионизирующее излучение;

3)ультразвуковая кавитация;

4)газовая стерилизация;

16. Специальная обработка рук хирурга перед операцией состоит из следующих этапов:

1)механическая очистка;

2)дезинфекция;

17. Для обработки рук хирурга перед операцией используют:

1)первомур;

2)стерилиум;

3)0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата;

18. Для обработки рук хирурга перед операцией не используют:

1)повидон-йод;

2)96% этиловый спирт;

3)5% спиртовой раствор йода.

19. Обработка рук хирурга 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата длится: 1) 3 минуты;

20. Обработка рук хирурга 96% раствором этилового спирта длится: 1) данный препарат для обработки рук хирурга не используется.

21. Обработка рук хирурга первомуром длится:

1) 1 минуту;

22. Обработка рук хирурга стерилиумом длится:

1) 5 минут;

23. Обработка рук хирурга йодонатом длится:

1) данный антисептик для обработки рук хирурга не используется.

24. Для обработки операционного поля используют:

1)первомур;

2)йодопирон;

3)0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата;

4)лизанин;

5)повидон-йод.

25. Для обработки операционного поля не применяется:

1)5% спиртовой раствор йода;

2)96% раствор этилового спирта;

3)метод УЗИ кавитации операционного поля.

26. Обработка операционного поля 0,5% спиртовым раствором гибитана длится: 1) 3 минуты;

27. Обработка операционного поля лизанином длится:

1) 3 минуты;

28. Обработка операционного поля 5% спиртовым раствором йода длится: 1) данный антисептик для обработки рук хирурга не используется.

29. Подготовка операционного поля к плановой операции включает:

1)мытье тела с мылом накануне операции;

2)бритье операционного поля непосредственно перед операцией;

30. К методам контроля стерильности относятся:

1)взятие бактериального посева с простерилизованных объектов;

2)определение температуры стерилизации по достижении точки плавления индикаторных веществ;

3)определение температуры стерилизации по смене окраски индикаторного вещества;

Антисептика

31. Антисептика, это:

1) система мероприятий, направленная на снижение микробной контаминации в ране или воспалительном очаге;

32. Выделяют следующие виды антисептики:

1)хирургическая;

2)химиотерапевтическая;

3)смешанная.

33. К хирургической антисептике относится:

1)дренирование раны посредством гигроскопической марли;

2)проточно-промывное дренирование раны;

3)вакуумирование раны.

34. К химиотерапевтической антисептике относится:

1)санация раны раствором эффективного антисептика;

2)эндолимфотическое введение антибиотиков;

3)введение в рану сорбентов;

4)внутривенное введение иммуноглобулинов.

35. Протеолитические ферменты, введенные в полость гнойной раны, вызывают:

1)лизис некротизированных тканей;

2)фибринолиз;

3)потенцирование действия антибиотиков;

44. К йодофорам относятся:

1)йодонат;

2)йодопирон;

3)повидон-йод;

45. К комплексным антисептическим препаратам относятся:

1)йодопирон;

2)стерилиум;

46. К антисептическим лекарственным средствам, влияющим на иммунитет, относятся:

1)иммуноглобулины;

2)сыворотки

3)вакцины;

47. Выделяют следующие виды дренирования ран:

1)проточно-промывное;

2)активное;

3)пассивное;

48. Пассивное дренирование раны проводят посредством:

1)полосок латексной резины;

2)дренажных трубок;

3)марлевых салфеток и турунд.

49. Активное дренирование раны проводят посредством:

1) вакуумной аспирации через дренажную трубку.

50. Понятие первичная хирургическая обработка раны включает:

1)иссечение краев раны;

2)остановка кровотечения;

3)удаление из раны инородных тел;

4)удаление девитализированных тканей;

5)иссечение дна раны;

6)иссечение стенок раны.

51. Первичная хирургическая обработка раны производится:

1) до развития в ране инфекционных осложнений;

52. Вторичная хирургическая обработка раны производится: 1) при наличии в ране гнойно-воспалительного процесса;

53. Ранняя первичная хирургическая обработка раны производится:

1) в течение 24 ч после получения травмы;

54. Отсроченная первичная хирургическая обработка раны производится: 1) в течение 24 - 48 ч после получения травмы;

55. Поздняя первичная хирургическая обработка раны производится:

1) спустя 48 ч после получения травмы;

56. Показанием к проведению антимикробной терапии служит:

1)доказанный диагноз инфекционного заболевания;

2)высокий уровень прокальцитонина в крови.

57. Эффективная концентрации антибиотика в тканях достигается при введении препарата:

1)внутривенно;

2)перорально;

58. При проведении антимикробной терапии хирургических инфекций соблюдают следующие принципы:

1)при установлении диагноза «инфекционное заболевание» антибактериальная терапия должна быть назначена незамедлительно;

2)рациональная антибиотикотерапия возможна только при установлении истинного возбудителя инфекции и его чувствительности к антимикробным препаратам;

3)антибиотик должен обладать свойством проникать в пораженные ткани;

4)должны быть строго соблюдены сроки лечения;

5)обязателен учет возможных побочных и токсических эффектов препаратов.

59. Показателем эффективности антибактериального лечения служат:

1)снижение температуры тела;

2)уменьшение лейкоцитоза;

3)снижение уровня прокальцитонина;

60. Курс антимикробной терапии прекращают:

1)при стойком регрессе местных симптомов инфекции;

2)при стойком регрессе признаков системной воспалительной реакции.

2)стандартных эритроцитов;

3)моноклональных антител анти-А и анти-В;

13. Для определения группы крови по системе АВ0 оптимальной является температура:

1) от +15 до + 25 °С;

14. Для определения группы крови по системе АВ0 стандартными изогемагглютинирующими сыворотками необходимы:

1)сыворотка 0(I) группы;

2)сыворотка А(II) группы;

3)сыворотка В(III) группы;

4)физиологический раствор;

5)кровь реципиента;

15. Для определения группы крови по системе АВ0 с помощью моноклональных антител необходимы:

1)моноклональные антитела анти-А;

2)моноклональные антитела анти-В;

3)физиологический раствор;

4)кровь реципиента;

16. Для определения группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных эритроцитов необходимы:

1)стандартные эритроциты 0(I) группы;

2)стандартные эритроциты А(II) группы;

3)стандартные эритроциты В(III) группы;

4)физиологический раствор;

5)сыворотка реципиента;

17. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных изогемагглютинирующих сывороток контроль за реакцией осуществляется в течение:

1) 5-ти минут.

18. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью моноклональных антител контроль за реакцией осуществляется в течение:

1) 3-х минут;

19. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных эритроцитов контроль за реакцией осуществляется в течение:

1) 5-ти минут.

20. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью цоликлонов агглютинация отсутствует с обоими реагентами (анти-А и анти-В). Какой группы исследуемая кровь?

1) 0(I);

21. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью цоликлонов агглютинация наблюдается с цоликлонами анти-А и отсутствует с цоликлонами анти-В. Какой группы исследуемая кровь?

1) А(II);

22. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью цоликлонов агглютинация наблюдается с цоликлонами анти-В и отсутствует с цоликлонами анти-А. Какой группы исследуемая кровь?

1) В(III);

23. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью цоликлонов агглютинация наблюдается с цоликлонами анти-А и анти-В. Какой группы исследуемая кровь?

1) АВ(IV);

24. При определении группы крови по системе АВ0 стандартными изогемагглютинирующими сыворотками признаков агглютинации не дает ни одна из трех сывороток. Какой группы исследуемая кровь?

1) 0(I);

25. При определении группы крови по системе АВ0 стандартными изогемагглютинирующими сыворотками реакция агглютинации выявлена с сыворотками 0(I) и В(III) групп и отсутствует с А(II). Какой группы исследуемая кровь?

1) А(II);

26. При определении группы крови по системе АВ0 стандартными изогемагглютинирующими сыворотками реакция агглютинации выявлена с сыворотками 0(I) и А(II) групп и отсутствует с В(III). Какой группы исследуемая кровь?

1) В(III);

27. При определении группы крови по системе АВ0 стандартными изогемагглютинирующими сыворотками реакция агглютинации выявлена со всеми тремя сыворотками. Какой группы исследуемая кровь?

1) АВ(IV);

28. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных эритроцитов реакция агглютинации выявлена с эритроцитами А(II) и В(III) групп и отсутствует с 0(I). Какой группы исследуемая кровь?

1) 0(I);

29. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных эритроцитов реакция агглютинации выявлена с эритроцитами В(III) группы и отсутствует с 0(I) и А(II). Какой группы исследуемая кровь?

1) А(II);

30. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных эритроцитов реакция агглютинации выявлена эритроцитами А(II) группы и отсутствует с 0(I) и В(III). Какой группы исследуемая кровь?

1) В(III);

31. При определении группы крови по системе АВ0 с помощью стандартных эритроцитов признаков агглютинации с эритроцитами 0(I), А(II) и B(III) групп не выявлено. Какой группы исследуемая кровь?

1) АВ(IV);

32. Резус принадлежность человека определяется по наличию антигенов:

1)С;

2)D;

3)Е;

Переливание компонентов крови.

1. Признаками пригодности компонентов крови к трансфузии являются:

1) герметичность упаковки;

2)наличие сведений о дате заготовки;

3)наличие сведений о группе крови по системе АВ0 и резус-фактору;

4)наличие сведений о вирусологическом обследовании;

5)отсутствие взвеси и хлопьев.

2. Транспортировка компонентов крови из одного лечебного учреждения в другое может быть осуществлена:

1) специализированным медицинским персоналом, несущим ответственность за соблюдение правил транспортировки;

3. Источниками крови и ее компонентов могут быть:

1)донорская кровь;

2)резервированная аутокровь;

3)кровь, собранная во время операций с целью реинфузии.

4. Внутрикостное переливание компонентов крови производят в:

1)гребень подвздошной кости;

2)пяточную кость;

3)грудину;

5. Показанием к трансфузии эритроцитарной массы является острая кровопотеря, сопровождающаяся снижением гемоглобина:

1) ниже 70 – 80 г/л.

6. Показаниями к трансфузии эритроцитарной массы служат:

1)тяжелый геморрагический шок;

2)острая массивная кровопотеря;

7. Абсолютным противопоказанием к переливанию эритроцитарной массы (при отсутствии кровотечения) являются:

1)отек легких;

2)свежий инфаркт миокарда;

8. Относительным противопоказанием к переливанию эритроцитарной массы являются:

1)свежие тромбозы и эмболии;

2)септический миокардит;

3)пороки сердца;

4)гипертоническая болезнь 3 стадии;

5)тяжелая почечная недостаточность.

9. Показаниями к трансфузии свежезамороженной плазмы являются:

1)ДВС-синдром;

2)дефицит компонентов плазменного звена гемостаза;

3)острая массивная кровопотеря с развитием геморрагического шока;

10. Показаниями к трансфузии свежезамороженной плазмы является:

1)значительная плазмопотеря при ожоговой болезни;

2)коагулопатии вследствие болезни печени;

3)передозировка антикоагулянтов непрямого действия;

4)выполнение терапевтического плазмафереза.

11. К средствам вирусной инактивации плазмы относят:

1)карантинизация плазмы в течение 3 - 6 месяцев;

2)обработка плазмы детергентами;

12. Показанием к трансфузии раствора альбумина является:

1)снижение уровня альбумина плазмы ниже 25 г/л;

2)плазмопотеря вследствие ожоговой болезни;

3)проведение плазмафереза.

13. Перед проведением трансфузии альбумина необходимо:

1) провести пробу на биологическую совместимость;

14. Показаниям к трансфузии лейкоцитарного концентрата является снижение количества

гранулоцитов менее:

1) 0,5 х 109/л;

15. Перед проведением трансфузии лейкоцитарного концентрата необходимо:

1)учесть групповую принадлежность по системе АВ0;

2)учесть групповую принадлежность по системе резус-фактора;

3)учесть совместимость по HLA-антигенам;

4)провести пробу на биологическую совместимость;

16. Перед проведением трансфузии тромбоцитарного концентрата необходимо:

1)учесть групповую принадлежность по системе АВ0;

2)учесть групповую принадлежность по системе резус-фактора;

3)проверить герметичность контейнера и его маркировку.

17. Эритроцитарная масса хранится при температуре:

1) от + 4 до + 6 °С;

18. Лейкоцитарный концентрат хранится при температуре:

1) от + 20 до + 24 °С;

19. Свежезамороженная плазма хранится при температуре:

1) минус 30 °С;

20. Максимальная продолжительность хранения лейкоцитарного концентрата составляет:

1) 24 часа;

21. Максимальная продолжительность хранения свежезамороженной плазмы составляет:

1) 3 года.

22. Максимальная продолжительность хранения раствора альбумина составляет:

1) 3 года;

23. Проба на индивидуальную совместимость на плоскости проводится между: 1) сывороткой реципиента и эритроцитами донора;

24. Какие компоненты используют при проведении пробы на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента на плоскости:

1)сыворотку реципиента;

2)эритроциты донора

3)физиологический раствор.

25. При проведении пробы на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента на плоскости, результат учитывают спустя:

2) 5 минут;