Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
лабораторный практикум Ихтиопатология.doc
Скачиваний:
139
Добавлен:
14.05.2015
Размер:
816.64 Кб
Скачать

Тема «паразитологические исследования рыб»

Цель занятия: научится проводить полное и неполное паразитологическое исследование рыб.

Задания для практической работы: Провести неполное паразитологическое исследование разных видов рыб.

При паразитологические исследованиях клиническому осмотру подвергают не менее 100 рыб из каждого пруда, паразитологическому вскрытию — мальков 25 экз., годовиков 10—15, рыб старших возрастов 5—10 экз.

Порядок полного паразитологического исследования рыбы

Полное паразитологическое исследование рыб проводят по мето­дикам, разработанным В. А. Догелем, Э. М. Ляйманом, А. П. Маркевичем.

Для полного паразитологического исследования жела­тельно брать еще живую или только что «уснувшую» рыбу (вполне свежую), не помятую, не подсушенную и наименее поврежденную рыболовными орудиями.

Полное паразитологическое исследование производится по установленному плану ,в определенной последователь­ности изучения поверхности тела и отдельных органов вскрытой рыбы. Сначала рыба измеряется и взвешивается (измерение и взвешивание нужно производить возможно более быстро, следя за тем, чтобы рыба не подсыхала),а затем подвергают клиническому осмотру. Тогда же берется чешу, для определения возраста. Затем производится обследование жабер и ротовой полости. После этого следует приступать к полному паразитологическому вскрытию. Кровь и сердце надлежит исследовать у возможно более свежей рыбы, т. е. мазок крови делается перед наружным осмотром, сердце иссле­дуется после вскрытия рыбы, в первую очередь. Полость тела обследуется как сразу по вскрытии ее, так и по мере просмотра отдельных органов, так как паразиты, находя­щиеся на поверхности органов, в жировой ткани и брюшине, относятся к полостным паразитам.

Органы и ткани следует осматривать всегда в одной и той же последовательности. Только тогда будет исключена возможность того, что какой-то участок окажется «забытым» и пропущенным. Исходя из топографического расположения органов, большинство ихтиопаразитологов принимает сле­дующую очередность в исследовании: 1) сердце, 2) мочевой пузырь, 3) желчный пузырь, 4) печень, 5) селезенка, 6) жиро­вая ткань, 7) брюшина, 8) кишечник, 9) половые железы, 10) плавательный пузырь, 11) почки, 12) глаза, 13) головной мозг, 14) спинной мозг, 15) мускулатура.

При изоляции отдельных органов друг от друга нужно остерегаться повреждения их стенок, чтобы паразиты из одного органа через порез не могли попасть в другой или быть утерянными. При дальнейшем исследовании следует оберегать как вскрытую рыбу, так и извлеченные из нее органы от подсыхания, для чего их можно покрывать кус­ками мокрой, фильтровальной или газетной бумаги или ткани.

Для избежания переноса паразитов из одного места в дру­гое и могущей возникнуть путаницы в отношении правиль­ности определения локализации паразитов, во все время вскрытия следует тщательно мыть инструменты и пипетки (особенно тщательно и отдельно промывается снятая рези­новая груша пипетки).

Каждый исследуемый орган должен быть внимательно осмотрен снаружи на предмет обнаружения на нем парази­тов полости тела (личинок ленточных червей, сосальщиков, круглых червей и скребней), при снятии которых обязательно отмечается, с какого именно органа они сняты. При внутрен­нем исследовании органа (особенно это относится к кишеч­нику) все крупные, видимые простым глазом паразиты отбираются пинцетом или иглами и помещаются в чистую воду, затем орган просматривается по частям компрессорным методом под лупой при увеличении X 10 и X 20 для обна­ружения мелких паразитов.

Компрессорный метод широко применяется советскими гельминтологами. Он состоит в том, что части органов или тканей или целые органы, если они не велики, а также соскобы со стенок кишечника или его содержимое неболь­шими частями закладываются между двумя стеклами (жела­тельно размером 6X12 см) толщиной 3—4 мм и при неко­тором добавлении воды расплющиваются до прозрачности образовавшегося тонкого слоя. При последовательном про­смотре стекол под лупой (продвигая стекло слева направо) можно обнаружить даже весьма мелких паразитов. Затем производится подсчет паразитов по систематическим группам и, под контролем глаза, одно стекло постепенно сдвигается с другого. Паразитов снимают с обоих стекол иглой или тонко оттянутой пипеткой и помещают, по группам же, в солонки с водой или с физиологическим раствором. При снятии паразитов следует все время следить, чтобы поверхность стекол не подсыхала.

Для исследования жабер на моногенетических сосальщиков компрессорный метод мало пригоден, так как найти и снять паразитов после сдвигания стекла с раздавленной ткани очень трудно.