Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Технология гидролизных производств учебник

..pdf
Скачиваний:
37
Добавлен:
27.10.2023
Размер:
20.8 Mб
Скачать

с белками, образуя нуклеопротеиды. Особенно велика биологиче­ ская роль нуклеиновых кислот в синтезе белков клетки и в пере­ даче наследственных признаков и свойств в потомстве. Знание состава и структуры этих соединений имеет большое значение для изучения эволюции жизни на нашей планете.

Название нуклеиновых кислот происходит от слова n u c l e u s — ядро, так как они впервые были обнаружены в ядре клетки. Нуклеиновые кислоты являются высокополимерными соединениями. Молекулярная масса их достигает нескольких миллионов. Молекулы нуклеиновых кислот построены из нескольких много­ кратно повторяющихся мономеров, называемых нуклеотидами. Каждый нуклеотид состоит из трех основных частей: углевода (пентозы), азотистого гетероциклического основания (пуринового или пиримидинового) и остатка фосфорной кислоты. Отдельные нуклеотиды, соединяясь между собой, образуют длинную цепочку. Нуклеиновые кислоты различаются по составу, химическому строе­ нию, по местоположению в клетке и по их биологической роли. Существуют два типа нуклеиновых кислот: дезоксирибонуклеино­ вая кислота (сокращенно ДНК) и рибонуклеиновая (РНК). ДНК содержится преимущественно в ядре клетки и в ядерных элемен­ тах (нуклеоидах бактерий), а РНК — в цитоплазме клетки и

вразличных ее включениях. Особенно много ее в рибосомах.

Всостав ДНК входит сахар дезоксирибоза, остаток фосфорной кислоты и азотистые основания: пуриновые — аденин (А) и гуанин

(Г) и пиримидиновые — тимин (Т) и цитозин (Ц). Соединения, в которых дезоксирибоза связана с каким-либо из азотистых оснований, называются нуклеозидами. Нуклеозиды, соединяясь с остатками фосфорной кислоты, образуют нуклеотиды, которые являются мономерами макромолекулы ДНК. Связи между отдель­ ными нуклеотидами осуществляются за счет остатков фосфорной кислоты, соединяющих 3-гидроксил дезоксирибозы одного нуклео­ зидною остатка с 5-гидроксилом дезоксирибозы соседнего нуклео­ зидною остатка (рис. 52). Молекула ДНК может иметь до 100 тыс. нуклеотидов и более. В каждой ДНК нуклеотиды следуют в строго определенном и всегда постоянном порядке.

Рентгеноструктурный анализ молекул ДНК, проведенный Д. Уот­ соном и Ф. Криком в 1953 г., показал, что ДНК представляет собой спираль, состоящую из двух комплементарных (взаимно дополняющих) цепей, имеющих описанное выше строение. Две полинуклеотидные цепи-спирали соединены водородными связями, возникающими между азотистыми основаниями. Соединение цепей происходит таким образом, что пуриновое основание нуклеотида 'одной цепи соединено с пиримидиновым основанием другой. Химическое строение азотистых оснований позволяет им соеди­ няться друг с другом только в комбинациях аденин с тимином и гуанин с цитозином. Между аденином и тимином образуются две водородные связи, а между гуанином и цитозином — три. Расстоя­ ние между основаниями постоянно и составляет 2,8—3,0 А. Спиральная структура молекулы ДНК представлена на рис. 53.

240

Образование пар между

А и Т и Г и Ц

приводит

к

тому,

что

в двойной спирали ДНК

количество А и Т всегда одинаково, как

и количество Г и Ц. Последовательность

оснований

вдоль одной

 

 

 

 

о

 

 

 

 

0

 

ч

с

 

 

 

 

н о -

Р

-

о —

 

- У

' Ü X

 

1

.

А

/

\

3

 

Н О - р - о с и , Н с

7i a W H

йденин

о

N H »

Н О — - - - р-о с 2н

НС'%

 

-------II I

 

н с ч

с .

 

 

 

V

м \

 

 

 

 

 

Ц и т о з и н

 

о с 2н

 

о

 

 

 

(5)

N

І

 

 

 

 

"O' ІУН

I

 

>

Н

С

I I

 

н N

А . А

\ін2

 

 

/г) N V

 

 

 

 

гуанин

 

• —

О О Н ,

 

 

 

 

 

(5)

 

 

 

 

Рис. 52. Соединение нуклеотидов в цепочке ДНК

полинуклеотидной цепи может значительно изменяться, но по­ следовательность их в другой цепи должна быть комплементарна ей. Благодаря такому комплементарному строению двойная цепь способна точно воспроизводить себя. При этом образуются две

16 З а к а з Кя 449

241

Рис. 53. Спиральная структура молекулы ДНК:

Две спирали — полинуклеотидные цепи; горизонтальные линии — пары азотистых оснований — аденин, Т — тимин, Г — гуанин, Ц — цитозин), связывающие обе цепи водородными связями

идентичные двойные цепи ДНК. Этот процесс носит название репликации (самоудвоения) ДНК. Синтез новых молекул ДНК, происходящий при размножении клеток, основан на способности мо­ лекул ДНК к репликации. Одна цепь в каждой образовавшейся молекуле ДНК происходит из пер­ воначальной молекулы, а другая строится вновь из элементов, синтезируемых клеткой. Этим объяс­ няется передача наследственных признаков и свойств от материнской клетки к дочерним. По сов­ ременным представлениям, ДНК является основ­ ным хранителем наследственных особенностей орга­

низма, которые в процессе размножения через нее передаются потомкам. Таким образом, ДНК определяет наследственность орга­ низмов. Синтез ДНК является ферментативным процессом и ката­

лизируется ферментом ДНК — полимеразой.

Рибонуклеиновые

кислоты — полимеры.

Основным структурным

элементом

РНК

является нуклеотид,

который отличается от

нуклеотида

ДНК

только лишь заменой

дезоксирибозы на рибозу

и тимина

(Т) на

урацил (У). В молекуле РНК нуклеотиды связаны между собой так же, как и в молекуле ДНК- В отличие от ДНК РНК не имеет двойной комплементарной структуры спирали. Поэтому соотноше­ ние азотистых оснований в РНК не подчиняется правилу равенства содержания комплементарных оснований, например аденина может быть больше, чем урацила, а гуанина больше, чем цитозина.

Молекула РНК состоит из одиночной спирали. Длина ее цепи короче и молекулярная масса меньше, чем у ДНК. Но есть данные, указывающие на то, что молекулы РНК могут быть двуспираль­ ными. Основная функция рибонуклеиновых кислот — это обеспе­ чение биосинтеза белков, а следовательно, и роста клеток. В жи­ вой клетке любых организмов содержится РНК трех основных видов: 1) высокомолекулярная рибосомальная РНК, 2) информа­ ционная, или матричная, РНК, 3) транспортная, или растворимая, РНК.

Высокомолекулярная рибосомальная РНК находится в рибосо­ мах; в клетках микроорганизмов она составляет 80—90% от всей РНК. Информационная, или матричная, РНК (И-РНК, или м-РНК) составляет 3—5% от всей РНК; по нуклеотидному составу она комплементарна ДНК; И-РНК может иметь различную молекуляр­ ную массу в соответствии с разными размерами синтезируемых в клетке белков. Информационная РНК синтезируется в ядре клетки и затем поступает в цитоплазму. Синтез И-РНК проис­ ходит под влиянием ДНК ядра благодаря комплементарное™

242

азотистых оснований. В синтезе И-РНК важную роль играет РНКполимераза. Информационная РНК передает генетическую инфор­ мацию от ДНК рибосомам, где происходит синтез белка. Информа­ ционная РНК связана с процессом размножения и роста орга­ низма. Активно размножающиеся дрожжевые клетки характери­ зуются высоким содержанием РНК (11,7% от сухого вещества); транспортная, или растворимая, РНК (Т-РНК) — низкомолекуляр­ ная, составляет 10—20% от всей РНК клетки, находится в цито­ плазме. Имеет спирально закрученную молекулу. В состав некоторых Т-РНК, кроме нуклеотидов, содержащих обычные азотистые основания аденин, гуанин, цитозин и урацил, в неболь­ шом количестве входят и так называемые минорные нуклеотиды. Они содержат необычные азотистые основания: дигидроурацил, метилинозин и др. Транспортная РНК обладает специфической биологической активностью. При участии соответствующих фермен­ тов она способна присоединять к себе активированные амино­ кислоты и переносить их в рибосомы.

Специфичность и разнообразие химических и биологических свойств нуклеиновых кислот определяются рядом факторов: струк­ турой их макромолекулы, различным содержанием азотистых осно­ ваний, последовательностью расположения нуклеотидов в молекуле, а также их количественным соотношением.

Биосинтез белка. Важнейшим достижением биологии и биохимии конца 50-х и начала 60-х годов XX в. является решение вопроса о синтезе белковой молекулы. В основе биосинтеза белка лежит генетическая информация (наследственность), закодированная в молекулах ДНК в виде определенной последовательности азоти­ стых оснований. Сущность кода ДНК состоит в том, что каждой аминокислоте синтезируемого белка соответствует участок цепи ДНК из трех рядом стоящих нуклеотидов (триплеты). Например, участок, состоящий из А — А — Ц, соответствует аминокислоте лейцину. Таким образом, структура ДНК, состоящая из нескольких тысяч последовательно расположенных четырех нуклеотидов, пред­ ставляет код (шифр), определяющий структуру белка. Информа­ ция,'записанная в генетическом коде ДНК, передается рибосомам, где происходит синтез белка. Переносчиками информации о струк­ туре белка от молекул ДНК, находящихся в клеточном ядре, в рибосомы служат молекулы информационной РНК. Вследствие того, что последовательность азотистых оснований в И-РНК опре­ деляется последовательностью оснований в ДНК, информация ДНК переносится на И-РНК. Биосинтезом молекул И-РНК управляет ДНКИнформационная РНК синтезируется на ДНК. Цепь И-РНК имеет строение, комплементарное одной из цепей ДНК. Одно­ временно с И-РНК в рибосому из цитоплазмы поступает Т-РНК. Транспортная РНК является переносчиком активированных амино­ кислот. Активация их происходит под действием особых фермен­ тов. Каждой из 20—25 аминокислот соответствует своя Т-РНК. Молекула И-РНК так же, как и ДНК, разбита на участки из трех нуклеотидов.

16*

243

Кодовые сочетания нуклеотидов называются кодонами. В рибосо­ мах против соответствующего кодона И-РНК располагается комплементарный участок — кодовый триплет Т-РНК (антикодон). На другом конце Т-РНК находятся аминокислоты. Оказавшись в определенном порядке, аминокислоты соединяются между собой. Свободная от аминокислоты Т-РНК удаляется из рибосомы в цитоплазму. Затем новая Т-РНК, расположенная протай сосед­ него кодона И-РНК, дает возможность своей аминокислоте вклю­ чаться в строящуюся белковую цепь. Следовательно, И-РНК опре­ деляет порядок расположения транспортных РНК, каждая из ко­ торых связана с одной из аминокислот, необходимых для синтеза белка. Когда И-РНК пройдет рибосому полностью, закончится синтез белковой цепочки, структура которой точно соответствует информации, содержавшейся в И-РНК. В настоящее время уста­ новлено, что каждая молекула И-РНК связана с несколькими рибосомами.

В процессе синтеза белка его полипептидная цепочка строится так, что ее образование начинается в одной рибосоме, продолжа­ ется во второй, третьей и т. д. Удлинение полипептидной цепочки происходит под влиянием одной и той же информационной РНК,

но с последовательным

участием

.разных рибосом.

Рибосомы,

активно синтезирующие

белок, обычно объединены в

группы —

полисомы. Соединение

рибосом

в полисомы происходит под

влиянием различных факторов, но особенно под влиянием ионов

Mg-

По окончании синтеза белковая цепочка сворачивается, причем последовательность аминокислот определяет характер объемной структуры белковой молекулы. А поскольку последовательность аминокислот записана в виде кодонов ДНК и соответствующей И-РНК, то можно сказать, что последовательность и состав нуклео­ тидов в ДНК определяет пространственную структуру, природу и функции белков.

Все реакции белкового синтеза катализируются специальными ферментами. Синтез белка в микроорганизме происходит за счет энергии, выделяющейся при дыхании и брожении и аккумулиро­ ванной в АТФ.

Список литературы

1. Федоров М. В. Микробиология. М., 1963, 447 с.

2.

Коновалов С. А. Биохимия бродильных производств. М., 1967, 310 с.

3.

Работнова И. Л. Общая микробиология. М., 1966, 270 с.

Глава X

ПОЛУЧЕНИЕ ЭТИЛОВОГО СПИРТА И ЖИДКОЙ УГЛЕКИСЛОТЫ ИЗ ГИДРОЛИЗАТОВ

ИСУЛЬФИТНЫХ ЩЕЛОКОВ

1.т е х н о л о г и я сп и рт о в о го бро ж ен и я

Превращение древесного сахара, содержащегося в сусле, в эти­ ловый спирт осуществляется путем сбраживания его различными расами дрожжей. На этиловый спирт перерабатываются только гексозы. Содержание их в гидролизатах, получаемых при гидро­ лизе разбавленными кислотами, колеблется в пределах 2—3%. Дрожжи, применяемые для полученгія этилового спирта, относятся к родам сахаромицетов и шизосахаромицетов. Ранее на гидролиз­ но-спиртовых заводах применялся периодический метод брожения, состоявший из следующих технологических операций: смешения сусла с. дрожжами («складка»), брожения, сгонки бродильного чана, мойки его и подготовки к следующей складке. Сам процесс брожения происходит в три стадии: взбраживание — заключается в активации дрожжей, без видимых признаков брожения; главное брожение — характеризуется быстрым потреблением сахара, ин­ тенсивным выделением углекислоты и образованием 80—85% всего спирта; дображивание — происходит усвоение трудносбраживае­ мой галактозы, по мере использования питательных веществ и на­ копления продуктов брожения скорость процесса замедляется, дрожжи оседают. При периодическом брожении все три стадии протекают последовательно в одном и том же бродильном чане. Периодический метод брожения имеет ряд недостатков, основными из них являются длительность процесса (3—4 суток) и его трудо­ емкость.

В настоящее время в гидролизной промышленности для сбра­ живания древесного сусла применяют непрерывный метод броже­ ния с возвратом отсепарированных дрожжей в бродильную батарею, состоящую из головных и дображивающих чанов. На рис. 54 представлена технологическая схема сепарационного ме­ тода брожения.

Подготовленное сусло из сборника 1 непрерывно перекачива­ ется насосом 2 в дрожжанку 3. Сюда же самотеком с сепарато­ ров 9 поступает дрожжевая суспензия, отделяемая от бражки. Концентрация дрожжевой суспензии составляет 90— 120 г прессо­ ванных дрожжей (с содержанием 75% влаги) в 1 л. На каждый кубометр дрожжевой суспензии подается 8—40 м3 сусла. Смесь сусла и дрожжей из дрожжанки непрерывно насосом 4 подается в головной чан 5 бродильной батареи, где происходит главная ста­ дия спиртового брожения. Ферменты, содержащиеся в дрожжах, катализируют расщепление гексоз, при этом образуется этиловый

245

спирт и углекислый газ. Этиловый спирт переходит в окружающую жидкость, а углекислота сорбируется на поверхности дрожжевых клеток в виде пузырьков, которые поднимаются к верху чана, ув­ лекая дрожжи. При соприкосновении с поверхностью жидкости пузырьки углекислоты лопаются, а дрожжевые клетки, плотность которых (1,1 г/см3) больше, чем сусла (1,02 г/см3), опускаются вниз, затем, сбродив очередную порцию сахара, снова подни­ маются выделяющейся углекислотой на поверхность. Такое непре­ рывное движение дрожжей способствует перемещению жидкости в бродильном чане, создавая брожение-. Бродящее или сброженное сусло носит название бражки. Из головного бродильного чана бражка самотеком поступает в хвостовой чан 6. В процессе дображивания происходит усвоение дрожжами наиболее трудносбражи-

9

Рис. 54. Технологическая схема сепарационного метода брожения:

1 — сборник сусла; 3 — дрож ж анка;

5 — головной

бродильный

чан;

6 — хвостовой бродиль­

ный чан; 8 — фильтр; 9 — сепаратор;

10 — сборник

бражки; 2,

4, 7,

11 — насосы

ваемых сахаров, например галактозы, и завершение цепи промежуточных реакций спиртового брожения. Концентрация дрожжей

вбродильной батарее составляет 17—25 г/л. Продолжительность брожения 5—7 ч, температура 32—33° С. По окончании брожения бражка из дображивающего чана насосом 7 перекачивается через сетчатый фильтр 8 на сепараторы 9. В фильтре происходит улав­ ливание частиц лигнина, коры и случайных предметов, попавших

вбражку. На сепараторах под влиянием центробежной силы и вследствие разности плотностей происходит разделение бражки на два потока: дрожжевую суспензию и отсепарированную спиртовую бражку. Последняя собирается в сборнике 10, откуда насосом 11 подается в брагоректификационное отделение, а дрожжевая сус­ пензия самотеком поступает в дрожжанку 3, где снова смешива­ ется со свежим суслом. Таким образом дрожжи повторно исполь­ зуются для сбраживания сусла.

Выделяющаяся в процессе спиртового брожения углекислота при избыточном давлении газа в бродильных чанах отводится по трубопроводу в углекислотный цех для получения жидкой и твер­ дой углекислоты или выпускается в атмосферу. Бродильные чаны представляют собой вертикальные цилиндрические сосуды емко­ стью 200—500 м3, снабженные штуцерами, соединяющими их с не­

246

обходимой коммуникацией. В верхней части чана или в его крышке находится штуцер для подачи сусла, в нижней части, на высоте 0,9— 1,2 м от дна, штуцер для отвода бражки. Для исполь­ зования углекислоты бродильные чаны делают герметически за­ крытыми. Они представляют собой цилиндрические емкости с ко­ ническим дном и сферической или плоской крышкой. Внутри в центре чана установлен вертикальный вал, который приводится во вращение электродвигателем с редуктором (размещаются на крышке чана). Внизу вал снабжен мешалкой со скребками. При его движении шлам, состоящий из лигнина, гуминовых коллоидных веществ, мертвых дрожжей и кристаллического гипса, передвига­ ется к центру дна и через штуцер спускается в канализацию. Бро­ дильные чаны изготовляются из листовой стали или из железобе­ тона. Внутренняя поверхность чйна должна быть гладкой, без трещин, легко поддаваться чистке, мойке и противостоять корро­ зии. Для этого чаны изнутри покрывают кислотоупорными лаками (этинолем) или покрытиями (асбовинилом, эпоксидной смолой), а железобетонные чаны футеруют керамическими плитками.

Аналогично бродильным чанам изготовляются и дрожжанки, сборники сусла, бражки.

Дрожжанки представляют собой емкости 100—200 м3. Они снаб­ жены мешалкой для принудительного перемешивания жидкости и барботером для подачи воздуха в случае ослабления бродильной активности дрожжей. Дрожжанка служит также для хранения дрожжей и консервации их на период планово-предупредительного или капитального ремонта. Описание устройства и работы сепара­ торов приведено на стр. 282. Производительность их 35—50 м31ч.

При спиртовом брожении происходит следующая реакция:

С6Н120 6= 2 С 2Н50Н + 2С02+ 5 6 ккал.

гексоза этиловый спирт углекислота

Как видно из этого уравнения, теоретический выход этилового спирта из 100 кг сбраживаемых моносахаридов составляет 51,14 кг, или 64,794 л, и 48,86 кг углекислоты. Однако часть сахара тратится на процессы жизнедеятельности дрожжевых клеток, размножение, дыхание, на образование побочных продуктов брожения. Поэтому практический выход спирта из 100 кг сбраживаемых сахаров гид­ ролизного сусла составляет 56—59 л. Для получения хороших вы­ ходов спирта необходимо поддерживать дрожжи в активном со­ стоянии. Для этого следует строго соблюдать технологический режим процесса брожения — температуру, pH, чистоту сусла, а также оставлять в бражке, идущей на сепараторы, небольшое количество гексоз (0,1 %) •

2.ХАРАКТЕРИСТИКА СПИРТОВОЙ БРАЖКИ

Взависимости от происхождения спиртовая бражка, полученная из гидролизатов растительного сырья, содержит от 0,5 до 1,5% этилового спирта. Например, бражка из гидролизного сусла со­ держит от 1 до 1,5%, а из сульфитных щелоков от 0,5 до 1%

247

этилового спирта. При переработке гидролизатов, полученных с применением концентрированных минеральных кислот, концен­ трация этилового спирта в бражке достигает 6% и более.

Отделение этилового спирта от бражки основано на его лету­ чести с водяным паром. Однако необходимо учитывать, что при постепенном повышении концентрации спирта в растворе давление паров над ним будет непрерывно возрастать до тех пор, пока в жидкости концентрация спирта не достигнет 95,57%. При даль­ нейшем повышении концентрации спирта упругость паров начнет падать. Точке наибольшей упругости пара отвечает наиболее низ­ кая температура кипения жидкости, равная 78,15° С при парциаль­ ном давлении. Чистый этиловый спирт в этих условиях кипит при 78,3° С.

В точке наибольшей упругости пара состав смеси в парах и в жидкости одинаков. При перегонке такой жидкости состав кон­ денсата не будет отличаться от состава жидкости, и дальнейшее укрепление спирта ректификацией становится невозможным. Такая смесь получила название нераздельнокипящей, или азеотропной. Это свойство спиртовых растворов необходимо учитывать при их укреплении методом ректификации. Одновременно с этиловым спиртом водяным паром уносится ряд других веществ, также об­ ладающих летучестью в этих условиях.

Для получения чистого этилового спирта его приходится отде­ лять от воды и других летучих веществ. Состав последних зависит от происхождения бражки и характера брожения. Так, при отде­ лении этилового спирта из гидролизной бражки с ним отгоняются содержавшиеся в исходном гидролизате метанол, фурфурол, тер­ пеновые углеводороды, ацетон, акролеин и, частично, уксусная и масляная кислоты. При перегонке сульфитной бражки к этим при­ месям присоединяются еще сернистый ангидрид и сероводород.

Кроме этих соединений, в бражке присутствуют некоторые ле­ тучие органические вещества, образовавшиеся в процессе броже­ ния. К числу их относится фурфуриловый спирт, получающийся из фурфурола, уксусный альдегид, являющийся промежуточным про­ дуктом спиртового брожения, а также высшие спирты (н-пропило- вый, бутиловый, изобутиловый, амиловые), образующиеся при брожении из аминокислот при отнятии у них дрожжами атомов азота, а также масляная, валериановая и изовалериановая кис­ лоты. При кипячении бражки, содержащей взвешенные дрожжи, от присутствующих в них азотистых веществ в небольших количе­ ствах отщепляется аммиак и другие летучие азотистые вещества, которые также попадают в этиловый спирт.

При последующем концентрировании этилового спирта эти при­ меси частично взаимодействуют и образуют ряд вторичных летучих продуктов. К числу их относятся: диэтиловьій эфир, метил- и этилацетат, метилпропионат и др. Протеканию реакций этерификации способствует слабокислая реакция дистиллятов, обусловленная наличием в них органических кислот, а при перегонке сульфитной бражки, кроме того, и сернистой кислоты.

248

Присутствующий в дистиллятах из сульфитной бражки серово­ дород, вступая во взаимодействие с присутствующими органиче­ скими веществами, образует неприятные по запаху и вкусу веще­ ства. Например, взаимодействуя с уксусным альдегидом, серово­ дород образует тиоальдегидгидрат:

.ОН H2S + СН3СНО — СН3—С—н

\ SH

Последний легко конденсируется в эфироили сульфидоподоб­ ные соединения, которые в свою очередь участвуют в образовании гидроксимеркаптосоединений различного состава. Присутствием этих соединений объясняется наличие органически связанной серы в сульфитном спирте. Затруднения при очистке спирта от примесей вызывает также образование ацеталя из двух молекул этилового спирта и одной молекулы уксусного альдегида:

1. СН3 • CHO + C2H5OHi±CH3CH(OH) • ОС2Н5;

альдегид

спирт

< полуацеталь

2. СН3СН(ОН) • ОС2Н5+ С 2Н5О Н ^С Н 3 • СН • (0С2Н5)2+ Н 20 .

ацеталь

Образующийся в начале реакции малоустойчивый полуацеталь переходит в более устойчивый ацеталь. Эта реакция катализиру­ ется ионами водорода и смещается в сторону образования ацеталя в области высоких концентраций спирта и при нагревании.

Температура кипения уксусного альдегида равна 20° С, ацеталя 102°С и этилового спирта 78,5°С. Такое распределение температур кипения затрудняет в производственных условиях отделение аце­ таля от этилового спирта. Ацеталь в бражке практически не содер­ жится, во избежание реакции его образования в ректификацион­ ных колоннах необходимо создавать на тарелках слабощелочную среду.

Присутствие всех этих примесей в товарном этиловом спирте нежелательно, при последующей его очистке они должны быть от­ делены.

Освобожденная от летучих компонентов спиртовая бражка но­ сит название барды. Гидролизная барда обычно содержит 1,5—2% сухих веществ, состоящих из пентозных сахаров, солей минераль­ ных и органических кислот и лигногуминовых веществ. Сульфитно­ спиртовая барда, кроме пентозных сахаров и солей уксусной и муравьиной кислот, содержит в значительных количествах раство­ римые лигносульфонаты и минеральные соли. Гидролизная и суль­ фитно-спиртовая барда обычно используется как источник пентоз­ ных сахаров и органических кислот при производстве кормовых дрожжей.

Этиловый спирт из бражки отгоняется водяным паром, при этом часть пара конденсируется и вследствие этого объем барды

249

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ