Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Тюкавкина Н.А. Хроматография на полиамидных сорбентах в органической химии

.pdf
Скачиваний:
8
Добавлен:
24.10.2023
Размер:
9.58 Mб
Скачать

Хёрхаммер и сотр. [444] показали, что полиамидный поро­ шок обладает высокой разделяющей способностью по отно­ шению к оксиантрахинонам Rheum palmatum. В колонку с полиамидом вносили метанольную вытяжку и элгоцию про­

изводили водой,

затем смесью воды и метанола и, наконец,

0,5 н. раствором

КОН. При этом удалось получить фракции,

содержащие по

одному компоненту. Позднее эти вещества

были выделены хроматографией на полиамиде и идентифици­ рованы как фнсционин (I), алоэ-эмодинглюкозид ( I I ) , хризофанеин ( I I I ) , реум-эмодинглюкозпд (IV), реин-8-глюкозид (V) и, кроме того, были обнаружены дпгликозиды хризофанола (VI), алоэ-эмодина ( V I I ) и репна ( V I I I ) [686].

В дальнейшем были проведены специальные работы по син­ тезу антрахпионовых гликозидов и доказана структура фпсционина (I), алоэ-эмодпн-8-(3-1)-глюкозида ( I I ) [462 , 464] и хри- вофанол-І-рЧО-глюкозпда ( I I I ) [465].

I

R i = H , іи=гліокозпл илп

Кі==глюкозпл, R 4 = H ; R-> = CH3,

II

R3=OCH3

 

 

 

R i = H , R 2 =CH 2 OH, R3=H, R4 =nnoK03ira

III

Ri=niK>K03ira, R2

= CH3 , R3 = R4 = H

IV

R^=CH3 , R3=OH,

R i = H , Н4=глк>козші или Ri=nnoK03iui, R4 = H

V

R , = H , R2 =COOH, R3=H,

Н4=глюкозпл

VI R I = R 3 = R 4 = H , R, = CH3

 

VII

R 1 = R 3 = R 4 = H ,

R,=CH 2 OH

VIII

R , = R 3 = R 4 = H ,

R 2 =COOH

,

IX R , = R 2 = R 3 = R 4 = H

 

X

Ri = R3 = R4=H,

R2—CH3

 

XI

R! = R4=H, R 2 = C H 3 , R3=OH

В ходе этих работ полиамид был'использован^как для вы­ деления природных образцов, так и для очистки синтетических гликозидов.

Вагнер и Хёрхаммер [692] предложили использовать тонко­ слойную хроматографию на полиамиде для контрольного ана­ лиза состава экстрактов ревеня, используемых в медицинской практике и имеющих иногда примесь истизина ( I X ) . Для этого из 1 г ДЛеыто-экстракта приготавливают водную вытяжку, из которой агликоны экстрагируют эфиром. Сконцентрирован­ ный эфирный раствор наносят на пластинки, после прохода растворителя (метанол—бензол, 8:2) проявляют их парами

аммиака и просматривают в УФ-свете. При этом истизин хорошо отделяется от природных антрахинонов экстракта ревеня:

Истизші (IX)

0,53

Фисцион (X)

0,30

Хризофанол

(VI)

0,47

Реум-эмодин (XI)

0,12'

Ллоэ-эмодиц

(VII) 0,44—0,47

Рейн (VIII)

0,03

Романова и Баньковскии [171—173] использовали колоночпую хроматографию на полиамиде для разделения антра­ хинонов ревеня. Чумбалов и Нургалиева [236] выделили из листьев и семян ревеня татарского хризофанеин, хризофано­ вую кислоту, эмодпн и глюкоэмодин.

Разделение антрахинонов крушины с помощью колоночпой хроматографии па полиамиде впервые осуществлено Ковале­ вым [79—85]. Из коры Rhamnus frangula были выделены фрапгулаэмодпн, глюкофрангулпн и франгулпн и доказана их структура. Изолирование веществ в индивидуальном состоя­ нии позволило установить, что биологическое действие в основ­ ном обусловлено глюкофрангулпном. На этом основании была разработана технология получения антрахинонового препарата «кофраиал», обогащенного глюкофрангулпном [84].

Дальнейшее

исследование

антрахинонов Rhamnus

frangula

было проведено

Хёрхаммером

с сотр. [460, 687]. При

обследо­

вании метанольных экстрактов коры методом тонкослойной хроматографии на кнзельгеле или полиамиде [460] было обна­ ружено 6 антрахштоиовых соединений, которые до того времени не были описаны в литературе. Методом колоночной хрома­ тографии на полиамиде удалось часть из них выделить в инди­ видуальном состоянии, среди которых были ранее известные франгулпн и глюкофрангулин. Важным экспериментальным достижением явилось то, что хроматография на полиамиде позволила разделить франгулин и глюкофрангулин на состав­ ляющие их оптические изомеры, наличие которых ранее только предполагалось [83, 460, 541]. Структура [3-изомеров франгулииа п глюкофрангулнна подтверждена синтезом [687].

Кора Rhamnus fallax часто применяется как заменитель коры крушины ломкой. Методом колоночной хроматографии

Вайсгербер и др. [720] выделили из этого сырья

глюкофрангу­

лин, франгулин, эмодпн, фисцион, хризофанол,

апоэ-эмодин

и ряд биозидов. Кроме того, из Rfiamnus purshiana

D . С. выде­

лены алоэ-эмодин-8-б-глюкозид, хризофанол-глюкозид и реум- эмодин-глюкозид, а тонкослойной хроматографией обнару­ жены франгулин и фисцион-глюкозид [460].

Широко применяется полиамидный порошок при исследо­ вании различных сортов алоэ, содержащих антроновые про­ изводные [446, 456, 457]. Хёрхаммер, Вагнер и Фекин [446] предложили количественно выделять алоин из экстрактов

6 Закаа J * 5Н

81

алоэ элюцней его метанолом с полиамида. При этом показано, что алопн практически полностью десорбируется с колонки. Измерение концентрации алойна строится на окислении ало­ йна ( X I I I ) в алоэ-эмодин (VII) ацетоновым раствором FeCJ3 n ко­ лориметрическом определенииэкстинкцин в растворе СоС12 . Об определении алопна в экстрактах алоэ с использованием полиамидного порошка сообщается и в другпх работах [205, 299, 490].

При хроматографированпи метанольного экстракта Aloe perryi Baker на полиамидной колонке последовательной элюциеи водой, водным метанолом и метанолом выделены два но­ вых глпкозпда: алоэ-эмодин-9-антрон-10-С-1)-глюкозил-11-а-Л- рамнозпд и алоз-змодин-И-а-і-рамнозид (алоинозиды В и Л) [461]. Полиамидный порошок был также исиользовап для вы­ деления продуктов расщепления алоинозида В в случае кислого и алопнозпда А в случае щелочного гидролиза. Идентифика­ цию алопнозпдов А и В, а также алойна осуществляли на тон­ ком слое полпампда в метаноле.

Романова и Баньковский [174—176] хроматографией на капроне метанольного экстракта листьев кассии остролистной Cassia acutifolia Del. выделили реин, репн-8-6-£-глюкозпд, эмодин и алоэ-эмодпн-8-р-.0-глгокозид. Стихии, Баньковский и Перельсоп [190, 191] из этанольного экстракта корней марены иберийской Rubia iberica (Fisch. ex D . С.) С. Koch, после мно­ гостадийного фракционирования и хроматографии на капроне выделили пберицин, имеющий строение 1,3-диоксн-4-этплен- этоксиантрахинона, н луцидинпримверозпд.

Рашея и Кочмарек [613], используя полиамид тарнамид,

выделили нз водного экстракта корней Rubia

tinctorum

L . ру-

берптриновую

кислоту

элюцпей водой.

 

 

 

 

Журавлев

и Борисов [63,

64] разделили антрахнноны,

со­

держащиеся в свежих корнях Galium

dasypodum

K l o k . ,

на эфи-

рорастворимые

(агликоны) и

водорастворимые

(гликозиды).

При хроматографированпи агликонов

выделили 5 соединений —

иберицин, рубиадин,

1-метоксирубиадин,

лицидин

и

али­

зарин, осуществляя последовательную элюцию петролейним эфиром; петролейным эфиром, насыщенным этанолом; эфиром; этанолом и ацетоном. Гликозиды элюировали водой и водноспиртовыми смесями и получили примверозиды луцидина, 1-метоксирубиадина и рубиадина.

Багрий [7, 10] при систематическом исследовании щавелей конского, кислого и водяного методом колоночной хроматогра­ фии иа полиамиде выделил хризофановую кислоту. Злюентолі являлся петролейный эфир. Тараскина и др. [204] пз метаноль­ ного экстракта корней и семян щавеля Рехингера элюцией колонки водным метанолом получили антрахпноновые краси­ тели хризофанеин и глгокофрангулаэмодпп.

 

 

 

 

Т а б л и ц а 27

Тонкослойная хроматография антрахионов (Rf ) [600]

 

 

 

 

Бензол —

Ацетон уксус­

 

 

 

ная кислота

 

 

 

этилацетат—

 

(9:1)

Аптрахнноны

Положение заместителей

уксусная

 

кислота

 

Ацетпли-

 

 

 

(8:1:1),

Поли-

 

 

 

силикагель

.амид

рованньШ

 

 

 

 

 

полиамид

Фпсцпоп

1,8-дн-ОН; 6-ОСНз; 3-СН3

0,88

0,80

0,60

Фаллацнпол

1,8-дн-ОН; 6-ОСНз;

0,35

0,67

0,55

Фаллацпналь

3-СН2ОИ

 

1,8-дн-ОН; 6-ОСНз; 3-СНО

0,76

0,80

0,60

Парпетииовая

 

 

 

 

 

кислота

1,8-дн-ОН; 6-ОСНз; 3-СООН

0,35

0,36

0,30

Эмодин

1,6,8-три-ОН; 3-СНз

0,39

0,36

0,30

Цптреорозепн

1,6,8-три-ОН;

3-СН2ОН

0,13

0,30

0,22

Эмоднновая

 

 

 

 

 

ішслота

1,6,8-трп-ОН;

3-СООН

0,10

0,08

0,08

При исследовании фенольных соединений в надземной части Digitalis canariensis L . с помощью полиамида Пари [580] вы­ делил фракцию антрахиноновых веществ. Имре и др. [483, 484], продолжая исследование видов наперстянки, охарактеризо­ вали два компонента как 1,6-(или 1,7)-диокси-3-метилантра- хинон и 2-окси-(1,6)-или (1,7)-диметокситриметплантрахинон.

Запесочная и др. [67] при исследовании зверобоя пятнисто­ го отделили диантроновые вещества гиперицин и псевдогиперицин от флавоноидных соединений, элюируя колонку 80—

90%-ным

этанолом.

 

 

 

 

 

 

Аутерхоф [262] использовал полиамидный слой для разде­

ления азометииов, образующихся при реакции

между

оксиан-

тронами

и 4-нитрозодиметиланилином.

В системе

пиридин—

этанол — циклогексан (5:5:40) хорошо

разделяются

азомети-

новые производные реина, хризофанола и алоэ-эмодина.

Стенсио и Вахмейстер

[642] анализировали

гексано.вый"

экстракт

лишайника

Laurera

purpurina

(Ngl.) Zahlbr. на тон­

ком слое полиамида в системе метанол—вода

(4:1)

и обнару­

жили 6

соединений

антрахиноновой природы. Смесь разде­

ляли на колонке последовательной элюцией метанолом, хло­ роформом и уксусной кислотой. Из хлороформного элюата был"

выделен

1, 5, 8-триокси-6-метокси-3-метилантрахинон, а' из

уксуснокислого элюата — его 6-дезоксипропзводное.

Пиателли и др. [600] выделили сумму антрахинонов из

лишайника

Xanthoria parientina

п разделили ее на тонких

слоях силикагеля и полиамида

(табл. 27).

Как видно из табл. 27, повышение степени гидроксилйрс"-

вания антрахинонов и введение

в их молекулу первичноспирто-'

 

 

 

 

т а

блиц а 28

вых

и

 

карбоксильных

Сравнение хроматографического

пове­

групп приводит к повыше­

дения

липохинонов

на

целлюлозе

нию их сорбциоиной актив­

 

 

и полиамиде

[353]

 

 

 

ности как в случае сили-

 

 

 

 

 

 

 

 

кагеля,

так

и

в

случае

 

Вещества

 

1

 

 

з

полиалшдов.

В

приведен­

 

 

 

 

 

 

ном

примере

поведение

 

 

 

 

 

 

 

 

Витамаи К1

 

0,38

0,56

0,72

замещенных

 

антрахино-

 

нов

на

ацетплированном

Битам пн К230

0,39

0,51

0,69

и

обычном

полиамиде

Витамин Ко35

 

0,31

0,46

0.65

 

аналогично

 

их

поведению

Витамин К345

 

0,18

0,35

0,65

 

 

в условиях адсорбционной

Пластохннон

45

0,18

0,41

0,68

хроматографии

на

силн-

Пластохннон 50

0,12

0,35

0,63

кагеле.

 

 

 

 

 

 

Убпхгшон 3d

 

0,58

0,68

0,83

 

 

 

 

 

 

 

В целом можно

 

отме­

Убпхинол 40

 

0,44

0,56

0,75

 

Убпхипон 50

 

0,30

0,45

0,74

тать,

что в

области антра-

 

П р и м е ч а н и е .

1 — целлюлоза,

им-

хинопов

применение

хро­

npermipoRami.iH

парафиновым

маслом;

аце­

матографии

 

па

полиамиде

тон — метанол

( 2 : 1), 2% воды; 2 — полиа­

оказалось

исключительно

нид;

метанол — метплэтилкетоп — вода

( 1 0 :

: 5 :

1);

3—полиамид; метанол — метилотил-

успешным.

 

Во-первых, па

кетон - ( 2 : 1).

 

 

 

 

 

 

деление антрахпноновых гликозидов

полиамиде

возможно

раз­

очень близкой

структуры,

отличающихся только заместителями У С:1- или Св -атомов

молеку­

лы. Например, четко были разделены 8-О-глюкозидырениа, реумэиодина, фисциона, алоэ-эмодпиа и хризофаиола [363]. Во-вто­

рых, впервые были

выделены

многие

природные аптрахиноны

в кристаллическом

состоянии

за счет

высокой степени очист­

ки от полимерных

примесей

[459].

 

Довольно большую группу природных хинонов составляют липохиноны (витамин К, убихиноны, пластохипоны и др.). Впервые возможность разделения этих соединений на полиа­ мидном сорбенте была показана Лихтенталером [532] и Эндресом с сотр. [363, 404]. Более детальное исследование было про­ ведено Эггером и Клейнигом [353]. Полученные ими резуль­ таты отражены в табл. 28.

Как видно из табл. 28, хроматографическое поведение липохинонов на полиамиде аналогично их поведению в условиях обращенно-фазового процесса на целлюлозе. Наращивание боковой цепи и усиление лилофильного характера ведет к сни­ жению значений Rf. Следовательно, в полярных системах раст­ ворителей разделение липохинонов на полиамиде происходит по распределительному механизму.

Анализируя приведенный выше материал по хроматографическому поведению хинонов, можно отметить, что если не­ замещенные хиноны, содержащие электрофильные карбониль­ ные группы, сорбируются за счет их взаимодействия с концевы­ ми аминогруппами полиамида, то у природных хинонов, отли­

чающихся многофункциональностью, характер сорбции из­ меняется.

Например, с введением нуклсофильных гидроксильных групп и увеличением их числа начинает проявляться сорбция за счет образования водородных связей с амидиылпс группи­ ровками полиамидной цепи. С увеличением углеводородной доли в молекуле хиионов становится возможным использовать для их разделения распределительную хроматографию.

Полиспирты и углеводы

Ранее было показано, что на полиамидах хорошо разделя­ ются соединения с феиольными окснгруппами. Хроматографическое поведенпо соединений с алифатическими гидроксилами почти ие исследовано.

Киаппе, Петерп и Родевальд [502] применили тонкослой­ ную хроматографию на кизельгуре, импрегнированиом поли­ амидом (6 : 1), в хлороформе для идентификации полиспиртов, употребляющихся в лаковой промышленности и промышлен­ ности искусственных смол. Кизельгур без импрегнирования

полиамидом не давал

положительных результатов.

 

Полиспирты

 

л /

Полиспирты

 

Rf

Пентаэритрит . . .

.

0,00

Трпэтплеигликоль . . . 0,94

Глицерин

 

0,16

1,6-Гександиол

. . . .

0,68

Тетраметнлолциклоге-

 

0,09

1,3-Бутандиол

. . . .

0,84

Триметилолэтан

.

Неопентенилгликоль

 

0,19

(2,2-диметил-1,3-пропап-

0,80

Триметллолпродан

.

0 52

Диол)

 

0,29

Дтшроппленгликоль . .

0,91

1,3-Пропандпол . . .

.

0,55

1,2,6-Гексантрнол . . .

0,62

Диэтилентликоль . .

.

0,92

Гексилентлігколь (2-ме-

0,93

1,4-Бутанднол . . .

.

0,45

тил-2,4-пентандиол)

1,2-Пропандпол . . .

.

0,72

 

 

 

Вхлороформе получается не только хорошее распреде-

ление Rf (0,00—0,94), но и полное разделение критических пар пентаэритрит — глицерин и триметилолэтан—триметилол-

пропан.

Мараис [548] описал процесс разделения различных углево­ дов на полиамидных слоях и показал, что возможно полное их разделение с высокой нагрузкой сахарозы, глюкозы и фрукто­ зы (до 120 мкг каждого), значительно превосходящей обычную

вметодах тонкослойной хроматографии на целлюлозе. Ниже приведены значения Rf углеводов на полиамидных

слоях в системе этилформиат—метанол ( 8 : 1 )

[548]:

 

 

18°С

23°С

 

18°С

23°с

мальтоза

0,12

0,15

фруктоза . .

0,38

0,52

сахароза . .

0,15

0,23

арабиноза .

0,47

0,59

глюкоза . .

0,28

0,39

ксилоза . .

0,48

0,61

галактоза .

0,26

0,37

рибоза . . .

0,64

0,79

манноза . .

0,27

0,38

 

 

 

Хаас и Зелнгер [413] приводят результаты разделения на полиамиде фенилозазонов триоз, тетроз, пентоз, метилпентоз и гексоз, которые движутся в системе диметплформамид—бен­ зол (7 : 93), и отмечают, что разделение достигается только между группами. Фенилозазоны олигосахаров при этом оста­ ются на старте. Отделение фенилозазонов олпгосахаров от фенилозазонов моносахаридов возможно в системе пиридинвода (15 : 85), в которой последние остаются на старте.

Возможность разделения моносахаридов и особенно полпспиртов на полиамидах раскрывает перспективы более широ­ кого использования этого метода в структурном анализе гли­ козидов, олигосахаров и полисахаридов.

Кислоты

Наличие карбокспльиой группы в молекуле способствует возможности хроматографированпя кислот на полиамидном сорбенте. Эндрес [359] считает, что электровалентным взаимо­ действием кислот с концевыми амшгаымп группами полиамида можно пренебречь ввиду незначительного количества этих кон­ цевых групп. Сорбция кислот на полиамиде рассматривается как результат образования водородной связи между гидроксильной группой карбоксила и ампдной группой полиамида [359, 362, 500].

Кареллн [310] разделял смесь трех алифатических кислот: проппоновой, масляной: и капроновой. Прп элюции их цикло­ гексаном сорбционные свойства этих кислот увеличивались в ряду: капроновая <^ масляная <^ проппоновая. Ванг [699] использовал циклогексан как подвижную фазу прп хроматографировании карбоновых кислот и их амндов на пмпрепгарованной полиамидом бумаге. Значения Rf кислот в циклогекса­ не (1) и их амидов в этплацетате (2) приведены ниже [699]:

муравьиная . .

і

2

каприловая . .

1

2

0,01

0,14

0,71

0,86

уксусная .

. .

0,19

0,20

каприновая . .

0,83

1,0

проппоновая .

.

0,27

0,31

лаурпновая . .

0,87

1,0

масляная .

.

.

0,35

0,40

мпрпстпновая

.

0,87

1,0

валериановая . .

0,45

0,52

лальмптпновая .

0,87

1,0

капроновая . .

0,54

0,64

стеариновая . .

0,87

1,0

гептановая .

.

0,63

0,72

 

 

 

 

С повышением молекулярного веса кислоты, т. е. с усилени­ ем липофильности молекулы, возрастают значения Rf в циклогексановой системе, что совпадает со случаем распределитель­ ной хроматографии.

При хроматографировании одноосновных кислот в воде и водно-метанольных системах порядок значений Rf обратный получаемому в циклогексане (табл. 29) [359].

Т а б л и ц а 29 Значения R / алифатических кислот на полиамиде [359]

Кислоты

Вода

Метанол—

Ацетон—

Метанол

•Ацетон

вода, 1:1

вода, 1:1

Проппоновая

1,00

1,00

 

 

 

Масляная

0,95

1,00

Капроновая

0,92

0,96

Стеариновая

і ,00

Янтарная

0.86

1,00

0,96

• 1,00

1,00

Глутаровая

0,71

0,88

0,74

1,00

1,00

Адшшповая

0,67

0,83

0,69

1,00

1,00

Глюконовая

0,82

0,90

0,89

1,00

1,00

Винная

0,90

1,00

0,95

1,00

1,00

Копиус-Пиеребум [318] разделил на полиамидном слое в сис­ теме метанол—ацетон—вода (40 : 40 : 20 или 30 : 10 : 10) кап­ роновую, лауриновую, мирнетиповую, пальмитиновую, стеари­ новую и арахииовую кислоты, а также их метиловые эфиры. Значения Rf у кислот повышаются с уменьшением длины цепи. Интересно отметить, что если блокировать карбоксильную груп­ пу в этпх соединениях и хроматографировать их в виде метило­ вых эфиров, то порядок значений Rf остается таким же, хотя по абсолютной величине они возрастают. Это свидетельствует о том, что в данном случае хроматографнческое разделение представляет собой обращенно-фазовый процесс.

Эндрес, Грасман и Оппельт [359] кроме одноосновных кар­ бонових кислот исследовали двухосновные и оксикарбоновые кислоты. Дикарбоиовые кислоты в водных системах обладают большим сродством к полиамиду по сравнению с соответст­ вующими монокарбоновыми кислотами. Дпкарбоновые кисло­ ты могут сорбироваться активнее, чем монокарбоновые, за счет того, что они способны «сшивать» амидные группы не только двух соседних полиамидных цепей, но, начиная с определенной длины цепи, взаимодействовать с соседними амидными груп­ пами внутри одной макромолекулы. Различить эти два вида взаимодействия в экспериментальных условиях невозможно.

Кнаппе и Родевальд [504] хроматографировали дикарбоио­ вые кислоты в системе диизопропиловый эфир—петролейный эфир — СС14— муравьиная кислота — вода (50 : 20 : 20 : 8 : 1). В этой системе порядок сорбционной активности дикарбоновых кислот меняется на обратный и сорбционные свойства ослабе­ вают с возрастанием длины алифатической цепи. Значения Rf для некоторых окси- и дикарбоновых кислот приведены ниже:

винная

0,04

лимонная

0,04

ifMc-акопитовая . . .

0,04

тартроновая . . . .

0,07

нзолимонная . . . .

0,04

щавелевая

0,09

яблочная . . . .

0,11

малоновая

0,22

трикарбаллитовая

0,11

янтарная

0,33

и-кртоглутароиая .

0,15

фумаровая

0,47

мллепионая . . .

0,18

пироннлоградная .

0,52

Следует

отмстить, что первые 4 кислоты

неотделимы

друг

от друга. Не разделяются также яблочная и

трикарбаллиловая

кислоты.

 

 

 

Кнаппе

н Родевальд [503] представили

большой экспери­

ментальный

материал по разделению 30 дикарбоновых

кис­

лот па полиамиде, кнзельгеле и импрегнпрованном полиэтиленглпколем кизельгуре G в различных системах.

Введеппе алифатических гидроксильных групп в молекулу карбоновых кислот снижает их сорбцнонную активность в вод­ ных системах и повышает — в неполярных системах.

Все рассмотренные выше работы свидетельствуют о том, что разделение алифатических карбоновых кислот происходит по закономерностям но адсорбционного, а распределительного процесса. Несмотря на то, что хроматография на полиамиде дала очень хорошие результаты при разделении карбоновых кислот, широкого развития этот способ не получил, так как

существует гораздо более продуктивный метод

разделения и

идентификации

их с помощью газожидкостной хроматографии.

 

Ароматические карбоиовые кислоты по сравнению с алифа­

тическими обладают более

высокой

сорбционной активностью

к

полиамиду.

Бензойная

кислота

в системе

метанол—вода

(1

: 1) имеет значение R;

(0,56), сравнимое с

фенолом (0,66),

что может свидетельствовать об одипаковой активности феноль­ ного гндроксила и гпдрокспла карбоксильной группы к амидо­ группам полиамидного сорбента. Натриевые соли ароматиче­ ских кислот движутся с фронтом водного растворителя. У фенольных кпслот, как и у фенольиых о-диоксисоединений, про­ является влияние внутри молекулярного связывания: фтале­ вая и салициловая кислоты ведут себя не как соединения, об­

разующие две водородные связи, а имеют значения Rf,

соответ­

ствующие бензойной кислоте

(табл. 30). И, наоборот,

п-окси-

 

 

 

Т а б л и ц а 30

Зиаченпя R /

некоторых ароматических кпслот на полиамиде [359]

Кислоты

Метанол—вода,

Ацетон—во-

Метанол

Ацетон

i : i

да, 1:1

Фенилуксусная

0,67

0,71

1,00

1,00

Бензойная

0,56

0,65

0,85

0,90

а-Нафтоловая

0,27

0,32

0,36

0,50

Салициловая

0.60

0,58

0,87

0,92

л-Оксибензойная

0,34

0,44

0,72

0,59

Фталевая

0,60

0,74

0,95

0,95

бензойная кислота элюируется значительно медленнее бензой­ ной, так как оба заместителя могут вступать во взаимодействие с амидпыми группами полиамида.

При переходе к многоядерным ароматическим системам, на­ пример при переходе от бензойной кислоты к нафтоловой, на­ блюдается сильное возрастание сродства к полиамиду. Эндрес и соавт. [359] считают, что высокая активность многоядерных ароматических: производных объясняется возникновением дополнительных вап-дер-ваа'льсовых сил.

Производные бензойной и ге-оксибеизойной кислот исполь­ зуются для консервирования пищевых продуктов. В связи с этим аналитический контроль за качеством и количеством этих веществ в продуктах предложено проводить с помощью хроматографии на полиамиде [546].

Сало и Салминен [620] изучили хроматографическое пове­ дение га-окспбеизойной кислоты и целого ряда ее эфиров на ста­ ционарной фазе ацетилированная целлюлоза—полиамид (1 : 1).

Кавчич [500] разделял на полиамидных слоях перокснбензойные кислоты, которые невозможно хроматографировать на силикагеле, так как они при этом разлагаются. В системах раст­ ворителей, содержащих уксусную кислоту, диметилформамид и спирт, пероксибензойные кислоты дают четкие пятна, в то время как в системе ацетон—уксусная кислота—вода такого четкого деления нет. Кавчич [500] пришел к выводу, что при хроматографировании на полиамиде пероксибензойных кислот важную роль играет образование водородных связей. Если в случае фенолов существует возможность образования только одной водородной связи, то у пероксикпслот можно ожидать образования двух видов связей:

/ N \ Аг

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ