4. Антраксин

I. Диагностический

II. Содержит аллерген

III. Получение: представляет собой гидролизат вегетативных форм сибиреязвенных бацилл.

IV. Применение: выявляет ГЗТ в кожно-аллергической пробе

V. Кожная доза

Вариант 6

1 Возбудитель чумы (до факторов патогенности)

Таксономия:Y.pestis вызывает чуму; отдел Gracilicutes, семейство Enterobacteriaceae, род Yersinia. Возбудитель – Yersinia pestis.

Морфологические свойства: грамотрицательные палочки, овоидной формы, окрашиваются биполярно. Подвижны, имеют капсулу, спор не образуют.

Культуральные свойства.

Факультативные анаэробы. Температурный оптимум +25С. Хорошо культивируются на простых питательных средах. Ферментируют большинство углеводов без образования газа. Психофилы - способны менять свой метаболизм в зависимости от температуры и размножаться при низких температурах. Вирулентные штаммы образуют шероховатые (R) колонии, переходные (RS) и сероватые слизистые гладкие авирулентные(S) формы.

Два типа колоний - молодые и зрелые. Молодые с неровными краями. Зрелые колонии крупные, с бурым зернистым центром и неровными краями. На скошенном агаре черед двое суток при +28 С образуют серовато - белый налет, врастающий в среду, на бульоне - нежную поверхностную пленку и хлопковидный осадок.

Биохимические свойства: фенментативная активнсть высокая: ферментация до кислоты ксилозу, синтез плазмокоагулазы, фибринолизина, гемолизина, лецитиназу, сероводород. Рамнозу, мочевину не ферментирует.

Антигенная структура.

Группа белково - полисахаридных и липополисахаридных антигенов: термостабильный соматический О-антиген и термолабильный капсульный V,W антигены. С W-антигеном связывают вирулентность бактерий. Продуцирует факторы патогенности: фибринолизин, плазмокоагулазу, эндотоксин, экзотоксин, капсулу, V,W антигены.

Резистентность: чувствителен к антибиотикам (особенно стрептомицин), нестоек к окружающей среде при высокой температуре

2. Дифференциальная диагностика возвратного эпидемического и эндемического тифов

При диагностике эндемического возвратного тифа учитывают данные эпидемиологического анамнеза (пребывание больного в эндемическом очаге) и обнаружение следов укуса клеща. Лабораторная диагностика включает бактериоскопическое исследование крови, взятой во время приступа. Мазки для микроскопии окрашивают по Романовскому-Гимзе.

Биологический метод диагностики состоит в заражении морских свинок кровью больного. При положительном результате через 5-7 дней в крови животных в большом количестве обнаруживаются боррелии. Из серологических методов применяют реакцию непрямой иммунофлюоресценции (РНИФ) и иммуноферментный анализ (ИФА).

Диагностика клещевого боррелиоза основывается на данных эпидемиологического анамнеза, клинической картине заболевания и результатах лабораторных исследований. В первую очередь учитывают пребывание больного в эндемичных по клещевому боррелиозу районах и факт присасывания клеща. Для лабораторной диагностики используются бактериоскопический, культуральный, серологический методы и ПЦР в зависимости от стадии заболевания. Материалом для исследования служат биоптаты кожи, синовиальная жидкость, ликвор, сыворотка крови. На 1 стадии заболевания проводится бактериоскопическое исследование биоптатов кожи из краевой зоны эритемы и биологических жидкостей для обнаружения возбудителя и выделения чистой культуры. Однако количество клеток возбудителя в тканях и жидкостях организма незначительное .

При исследовании гистологических препаратов применяют импрегнацию серебром (окраска по Левадити). В таких препаратах боррелии окрашиваются в бархатно-черный цвет. Метод темнопольной микроскопии применяют для определения инфицированности клещей боррелиями. Однако микроскопические методы не позволяют определять видовую принадлежность боррелий и их патогенные свойства.

Культуральные методы применяют для выделения возбудителя из любого инфицированного материала. Жидкие образцы предварительно концентрируют методом центрифугирования. Однако техника выращивания боррелий трудоемкая и длительная, поэтому культуральный метод имеет низкую диагностическую ценность.

Чаще всего используют серологические методы диагностики (реакцию непрямой иммунофлуоресценции - РНИФ, иммуноферментный анализ - ИФА, иммуноблоттинг), а также метод ПЦР. На ранних стадиях инфицирования выявляют антитела на белок р41 и белок ospC. На 2 стадии заболевания выявляют IgМ, а затем нарастание титра IgG в сыворотке крови, цереброспинальной и синовиальной жидкостях. Метод ПЦР обладает высокой чувствительностью, так как он позволяет установить наличие возбудителя на 7-14 день после укуса.

Наиболее распространенным методом диагностики иксодового клещевого боррелиоза является РНИФ. При проведении этой реакции специфические антитела исследуемой сыворотки связываются с антигеном боррелий, а сформированный комплекс выявляют с помощью меченных флюорохромом сывороток против глобулинов человека. Зеленая флюоресценция большинства микробных клеток рассматривается как положительный результат. Иммуноферментный анализ проводится с использованием сывороток против глобулинов (анти-антител), меченных ферментом (щелочной фосфатазой или пероксидазой). Ферментную метку при этом методе обнаруживают по цветной реакции.

Метод иммуноблоттинга позволяет выявлять специфические антитела к определенным белкам боррелий, которые предварительно разделены с помощью электрофореза.