Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
biokhimiya_labi.pdf
Скачиваний:
9
Добавлен:
19.03.2020
Размер:
488.94 Кб
Скачать

розбавляти зовсім.

У разі зникнення забарвлення в межах3 – 5 хв проби відбирають кожні 15 с; 5 – 10 хв – кожні 30 с; а понад 10 хв – кожну хвилину.

Скляну паличку після кожної проби промивають дистильованою водою і витирають чистим некрохмаленим рушником.

Розрахунок АЗ проводять за формулою:

 

 

 

АЗ =

0,2 ×60 ×1

=

12

,

 

 

 

 

(5.1)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

a ×t

 

 

a ×t

 

 

 

 

 

 

 

 

де 0,2 – кількість крохмалю в реакційній суміші, г; 60 – коефіцієнт перерахунку

 

на 1 год; а – кількість ферментного препарату, введеного в реакційну суміш,

 

грами повітряно–сухої речовини або мілілітри рідинних об’єктів; t

час,

за

 

який пройшло розщеплення крохмалю до нездатних забарвлюватися йодом

продуктів, хв; 1 – перерахунок

на 1 г

повітряно–сухого

препарату

або1 мл

 

розчину.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Приклад розрахунку. Для аналізу беруть5 мл ферментного розчину при

 

розбавленні

1:2000,

що

відповідає 0,0025

г

препарату (1·5/2000)=0,0025

г).

 

Забарвлення

з

йодом

зникає

6,5черезхв,

тоді

за

 

формулою

АЗ=12/0,0025·6,5=740.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Аналізують одержані результати, складають висновки і рекомендації.

 

 

 

5.5. Визначення протеолітичної активності

 

 

 

 

 

Важливим етапом технології багатьох харчових виробництв є біохімічні

 

перетворення білків, які відбуваються під дією протеолітичних ферментів. В

 

основі визначення протеолітичної активності лежать різні принципи: зміна

 

фізико–хімічних властивостей субстратів; визначення зменшення кількості

 

субстрату; облік кількості продуктів протеолізу.

 

 

 

 

 

 

 

 

Контроль за зменшенням кількості субстрату

дає

змогу

судити

про

активність

протеїназ,

оскільки

при

цьому

визначається

кількіст

непрогідролізованого

 

білка. Тому

метод

можна

використовувати

для

препаратів, які застосовуються в різних галузях промисловості.

 

 

 

 

 

Мета роботи: засвоїти методику визначення протеолітичної активності

 

ферментного препарату.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Завдання на виконання роботи: визначити протеолітичну активність

 

ферментного препарату дією його на розчин казеїну.

 

 

 

 

 

 

 

Апаратура: водяна баня.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Лабораторний посуд: мірні колби місткістю100 мл; піпетки; лійки для

 

фільтрування; скляні палички; крапельниці.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Матеріали і реактиви: 5 %–й лужний розчин казеїну: 50 г (за сухою

 

речовиною) технічного подрібненого казеїну вносять у склянку, додають для

 

набрякання 50 мл дистильованої води та залишають на30 хв, потім склянку

 

розміщують

у водяній

бані

з температурою65 –

70

°С. Поступово

при

 

ретельному помішуванні скляною паличкою, додають 50 мл 1 н розчину натрій гідроксиду. У процесі розчинення казеїну додають невеликими порціям воду(5

– 6 разів по 50 – 80 мл), нагріту до температури 65 – 70 °С, та витримують у водяній бані до зникнення грудочок. Після розчинення казеїну та охолодження об’єм розчину доводять в мірній колбі до1 л, фільтрують через чотири шари

45

марлі; 0,1 н розчин хлоридної кислоти в 7,5 %–му розчині натрій сульфату; 0,1

н розчин натрій гідроксиду; фільтрувальний

папір; індикатор – 0,5 %–й

спиртовий розчин крезолроту; розчин технічного протосубтиліну (1:100).

 

Принцип

методу

полягає

в

гідролізі

казеїну

відомою

кількістю

ферментного

препарату

і

визначенні

ступеню

розщеплення

білка

зменшенням кількості хлоридної кислоти, що зв’язується непрогідролізованим

казеїном.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Хід роботи. У колбу(плоскодонну чи

конічну)

місткістю 100

мл

набирають піпеткою 20 мл розчину

казеїну і

занурюють

у водяну

баню з

температурою 30 °С (± 0,2°). Через 10 хв наливають

при

помішуванні10 мл

ферментного розчину. Весь об’єм (казеїн і ферментний розчин) має становити

30 мл. Якщо на аналіз береться менше 10 мл ферментного розчину, об’єм, якого

не достає до 30 мл, заповнюють дистильованою водою, яку приливають перед введенням ферменту.

Через 1 год у колбу приливають (теж при помішуванні) піпеткою 20 мл 0,1 н розчину хлоридної кислоти в7,5 % натрій сульфаті та фільтрують до повної прозорості (повертаючи фільтрат на фільтр).

Контрольний дослід ставлять таким же чином, тільки до

введення

ферментного розчину додають суміш хлоридної кислоти7,5 з%

натрій

сульфатом і колбу не витримують у водяній бані, а відразу фільтрують.

 

У 20 мл фільтрату контролю та досліду відтитровують0,1 н розчином натрій гідроксиду надлишок хлоридної кислоти. Титрують у присутності двох краплин 0,5 %–го спиртового розчину крезолроту до червоного забарвлення. Різниця титрувань (дослід – контроль), перерахована на 10 мл фільтрату, може становити 0,4 – 2,5 мл. Якщо вона менша за0,4 чи більша 2,5 мл, то аналіз повторюють з більшим чи меншим дозуванням ферменту, змінюючи кількість ферментного розчину чи його розбавлення.

Розрахунок активності. За різницею титрувань досліду і контролю в мл

0,1 н натрій гідроксиду, яку перераховують на10 мл фільтрату,

знаходять

 

одиниці

активності

за табл. 5.1. У таблиці

наведено

також значення

протеолітичної активності за умов, що на аналіз було взято 10 мл ферментного

 

розчину в розбавленні 1:100 чи 1:50.

 

 

 

 

 

 

 

Для

інших

кількостей

ферментного

розчину

чи

інших

розведе

протеолітичну активність перераховують за формулою:

 

 

 

 

 

 

ПА =

е

,

 

 

(5.2)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

а

 

 

 

 

де е – кількість одиниць, знайдена за табл. 5.1 згідно з результатами титрування; а – наважка препарату (г, мл), яка відповідає 10 мл фільтрату (1/5 всієї кількості, взятої на аналіз).

Приклад розрахунку. 1. Для аналізу брали10 мл ферментного екстракту 1:50. На титрування досліду витратили 4,2 мл 0,1 н розчину натрій гідроксиду, на титрування контролю– 2,0 мл. Різниця титрувань перерахована на10 мл фільтрату (4,2 – 2,0) : 2 = 1,1 мл 0,1 н розчину натрій гідроксиду. Величина 1,1 відповідає, за табл. 5.1, ПА = 1,868.

2. Для аналізу брали 5 мл розчину очищеного препарату1:1000. Різниця

46

титрувань досліду і контролю дорівнює 1,8 мл 0,1 н розчину натрій гідроксиду. Величина 1,8 відповідає, за табл. 5.1, 0,1353 од.

У 5 мл розчину 1:1000 міститься 0,005 г ферменту. Ці 0,005 г містяться в 50 мл реакційної суміші, а в 10 мл ферменту – 0,001 г:

ПА = 0,1353 =135,3 0,001

Таблиця 5.1

Протеолітична активність (перерахунок на повітряно-суху речовину)

0,1 н. NaOH, мл,

Одиниці

ПА при введенні 10 мл розчину

на 10 мл фільтрату

протеолітичної

при розбавленні

 

активності, е

 

 

 

1:100

1:50

 

 

1

2

3

4

0,30

0,0123

0,615

0,300

0,35

0,0167

0,835

0,418

0,40

0,0203

1,015

0,508

0,45

0,0243

1,215

0,608

0,50

0,0283

1,415

0,708

0,55

0,0320

1,600

0,800

0,60

0,0360

1,800

0,900

0,65

0,0393

1,965

0,982

0,70

0,0433

2,165

1,082

0,75

0,0473

2,365

1,182

0,80

0,0513

2,565

1,282

0,85

0,0550

2,750

1,375

0,90

0,0590

2,950

1,475

0,95

0,0627

3,135

1,573

1,00

0,0667

3,335

1,663

1,05

0,0700

3,500

1,750

1,10

0,0747

3,735

1,868

1,15

0,0787

3,935

1,968

1,20

0,0827

4,135

2,068

1,25

0,0867

4,335

2,168

1,30

0,0907

4,535

2,268

1,35

0,0950

4,750

2,375

1,40

0,0990

4,950

2,475

1,45

0,1033

5,165

2,582

1,50

0,1080

5,400

2,700

1,55

0,1123

5,616

2,808

1,60

0,1167

5,835

2,918

1,65

0,1213

6,065

3,032

1,70

0,1260

6,300

3,150

1,75

0,1307

6,535

3,266

1,80

0,1353

6,765

3,382

1,85

0,1400

7,000

3,500

47

 

 

 

Закінч. табл. 5.1

1

2

3

 

4

1,90

0,1453

7,265

 

3,632

2,00

0,1500

7,500

 

3,750

2,05

0,1556

7,780

 

3,890

2,10

0,1603

8,015

 

4,008

2,15

0,1653

8,265

 

4,132

2,20

0,1707

8,035

 

4,268

2,25

0,1817

9,085

 

4,542

2,30

0,1873

9,365

 

4,632

2,35

0,1933

9,665

 

4,832

2,40

0,1993

9,965

 

4,982

2,45

0,2053

10,265

 

5,182

2,50

0,2113

10,565

 

5,232

 

 

 

 

 

Аналізують одержані результати, складають висновки і рекомендації.

5.6. Визначення активності пероксидази

Ферменти пероксидази окиснюють певні сполуки за допомогою гідроген пероксиду або органічних пероксидів. Із гідроген пероксидом пероксидази утворюють комплексну сполуку, в результаті пероксид активується і набуває здатність діяти як акцептор водню.

Пероксидази містяться в організмах тварин, рослин, молоці. Реакцією на пероксидазу визначають ефективність високотемпературної пастеризації молока.

Мета роботи: засвоїти методику визначення активності пероксидази. Завдання на виконання роботи: визначити активність пероксидази у

молоці та молокопродуктах. Апаратура: газовий пальник.

Лабораторний посуд: пробірки; піпетки.

Матеріали і реактиви: молоко і молочні продукти; розчин йодистокалієвого крохмалю (3 г крохмалю змішують із невеликою кількістю холодної води. Окремо в колбі доводять до кипіння100 мл води і при безперервному перемішуванні приливають воду до розведеного крохмалю. Одержаний розчин кип'ятять протягом 1 – 2 хв. Після охолодження до розчину додають3 г калій йодистого і перемішують. Розчин нестійкий, тому його готують у невеликій кількості і зберігають у темному, прохолодному місці); 0,5 %-ний розчин гідроген пероксиду.

Принцип методу: Пероксидаза, що міститься в молоці, каталізує реакцію окиснення КJ гідроген пероксидом:

2КJ + Н2О2 → 2КОН + J2

При взаємодії молекулярного йоду з крохмалем у молоці з’являється синє забарвлення.

Хід роботи. У пробірки наливають по5 мл молока або кисломолочних

продуктів. Додають по 5 краплин

розчину

йодистокалієвого

крохмалю

і по5

краплин 0,5 %-ного розчину

гідроген

пероксиду. Вміст

пробірок

після

48

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]