Ход работы.

Спинальную лягушку (лягушка с удаленным головным и сохраненным и спинным мозгом) кладут на дощечку брюшком кверху и фиксируют при помощи лигатур. Вскрывают грудобрюшную полость и обнажают сердце. Подсчитывают ЧСС. Ручкой пинцета наносят несколько резких ударов по брюшку лягушки. Сердечные сокращения замедляются или останавливаются в диастоле, с момента нанесения раздражения подсчитывают число сокращений сердца за 1 минуту.

После того, как сердце придет в нормальный ритм, нанести на него несколько капель 0,1 % раствора атропина (можно разрушить спинной мозг), подсчитать ЧСС, затем вновь ручкой пинцета нанести несколько резких ударов по брюшку лягушки. Подсчитать число сокращений за 1 минуту.

Результат:

ЧСС

исход

раздражение рецепторов

спинной мозг разрушен

раздражение рецепторов

После разрушения спинного мозга остановка и замедление частоты сердечных сокращений отсутствуют.

Отмечают рефлекторную дугу этого рефлекса - рецепторы кишечника, центростремительные нервы (по чревному нерву в спинной мозг), ядро блуждающего нерва продолговатого мозга, центробежные волокна и сердце.

Объясните полученные данные и зарисуйте все звенья рефлекторной дуги этого рефлекса.

Вывод:

РАБОТА № 2. Влияние некоторых гуморальных факторов на деятельность сердца.

Цель работы: Убедиться в наличии гуморальной регуляции деятельности сердца.

Оборудование: Препаровальный набор, кюветка с салфеткой, кимограф, серфинка, сердечная канюля, штатив с рычажком Энгельмана. Растворы:Рингера,адреналина, ацетилхолина, кальция хлорида, калия хлорида.

Объект исследования: лягушка.

Ход работы.

Декапитированную лягушку с разрушенным спинным мозгом кладут на дощечку брюшком кверху. Вскрывают грудобрюшную полость и обнажают сердце. Осторожно снимают перикард, перерезают сердечную уздечку. Подводят при помощи маленького пинцета лигатуру под венозный синус. Слегка надрезают венозный синус, вставляют в него сердечную канюлю, заполняют ее раствором Рингера, закрепляют на синусе, затягивая и завязывая лигатуру. Большими ножницами вырезают сердце из организма, канюлю закрепляют в штативе. За верхушку сердца закрепляют серфинку, которую при помощи лигатуры соединяют с рычажком Энгельмана. Перфузируют сердце раствором Рингера и на барабане кимографа записывают исходную экзокардиограмму.

Затем начинают действовать на сердце раствором Рингера с добавлением испытуемых веществ 2-3 капли (после действия каждого из применяемых веществ сердце тщательно отмывают раствором Рингера).

Результат:

Полученные экзокардиограммы зарисовать в тетради.

Вывод:

ЗАНЯТИЕ № 4.

Тема: Законы гемодинамики. Функции сосудистого русла.

Физиологическое назначение сосудистой системы сводится к распределению крови в тканях и органах для обеспечения адекватного кровообращения, как основного условия для поддержания гомеостаза. Кровь это жидкая среда, движущаяся по законам реологии, которые основаны на законах гидродинамики.

Гемодинамика - это наука, изучающая движение крови по сосудам.

ОСНОВНЫЕ ЗАКОНЫ ГЕМОДИНАМИКИ.

1. Непрерывность тока крови.

2.Количество крови поступающей в сосуды под высоким давлением равно количеству крови возвращающейся к сердцу из сосудов с низким давлением.

3.Во всех случаях за исключением обменных сосудов, движение крови одностороннее.

4.Движение крови осуществляется по градиенту давления.

5.Закон сохранения крови при ее перераспределение.

6.Закон сохранения энергии. Вся энергия, нагнетаемая в сосудистое русло, расходуется на продвижение крови и преодоление резистентности сосудов.

В 1959 году выдающимся шведским физиологом Бьерном Фолковым впервые была предложена функциональная классификация системы кровообращения:

1.Генератор давления- насос (сердце)

2.Сосуды “котла” (сосуды высокого давления) - аорта и ее ветви.

3.Резистивные сосуды- артериолы.

4.Прекапиллярные сфинктеры- сосуды распределители кровотока.

5. Капилляры (обменные сосуды).

6.Посткапиллярные резистивные сосуды (аккумулирующие).

7.Сосуды возврата крови- полые вены.

8.Шунтирующие сосуды (артерио- венозные анастомозы).

9.Резорбтивные сосуды (лимфатические сосуды).

Основной функцией сердечно-сосудистой системы является поддержание определенного оптимального уровня обменных процессов в органах и тканях организма.

Первый этап - доставка крови (макроциркуляция).

Второй этап - распределение кислорода и питательных веществ через стенку капилляра и вынос продуктов метаболизма (микроциркуляция).

К микроциркуляторному руслу относятся: терминальная артериола, метартериола, прекапиллярные сфинктеры (способны регулировать количество функционирующих капилляров),капилляры, посткапиллярная венула, вена и лимфатический сосуд.

Особенность строения и функции микроциркуляторного русла являются: очень большая обменная поверхность, медленная скорость кровотока (1мм. в секунду) и особое строение стенок капилляров.

Транскапиллярный обмен - процессы обмена жидкостью и растворенными в ней веществами между кровью и тканями. Обеспечивается диффузией, фильтрацией-реабсорбцией и микропиноцитозом. Фильтрационно-реабсорбическое равновесие, это динамическое равновесие между процессами фильтрации в артериальном конце капилляра и реабсорции в венозном конце капилляра.

Цель: 1. Изучить законы гемодинамики на теоретических основах гидродинамики, взаимодействие факторов, определяющих характер и интенсивность кровоснабжения.

2. Получить представление о механизмах транскапиллярного обмена, микроциркуляции.

Домашнее задание: 1. Нарисовать кривые изменения давления крови, линейной скорости кровотока и суммарного просвета сосудистого русла в разных его участках.

2. Дать функциональную классификацию сосудов.

Практические работы:

1. Наблюдение капиллярного кровотока у лягушки под микроскопом:

а) в плавательной перепонке

б) в брыжейке

в) в языке.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Основные законы гидродинамики и использование их для объяснения движения крови по сосудам.

2. Функциональная классификация сосудов.

3. Факторы, обуславливающие объемную и линейную скорость кровотока и уровень давления крови в сосудах: а) нагнетательная деятельность сердца; б) функциональное состояние сосудов;

в) реологические свойства крови.

4. Капиллярный кровоток и его особенности.

5. Микроциркуляция и ее роль в механизме обмена жидкости и различных веществ между кровью и тканями.

6. Почему неодинакова скорость движения крови в различных участках кровеносного русла и какое это имеет значение?

7. Какая скорость движения крови в артериях, капиллярах, венах?

8. Как влияет на просвет кровеносных сосудов нервных и гуморальных факторы?

9. Какие функции выполняют артерии, вены, капилляры?

10.Почему кровь движется с различной скоростью по оси и у его стенок?

Литература:

1. Георгиевский В.И. стр. 207-209

2. Сысоев А.А., Битюков И.П., стр. 106-109

3. Федий Е.М., Науменко В.В., стр. 83-84

РАБОТА № 1. Наблюдение капиллярного кровотока у лягушки под микроскопом.

Цель работы: Выяснить особенности кровотока в сосудах капиллярного русла.

Оборудование: микроскоп, раствор Рингера, дощечка, препаровальный набор, лигатуры, иголочки.

Объект исследования: лягушка.

Ход работы.

Наблюдение кровообращения в плавательной перепонке.

Лягушку фиксируют при помощи лигатур на дощечке спиной вверх. Плавательную перепонку одной из задних лапок (между 2 и 3 пальцами) при помощи булавок растягивают над отверстием в дощечке. Во избежании остановки кровообращения сильно растягивать перепонку не рекомендуется. Ставят дощечку с лягушкой под микроскоп, над отверстием устанавливают тубус микроскопа и при малом увеличении рассматривают. В поле зрения находятся артериолы, венулы, капилляры; наблюдают за движением эритроцитов. Зарисовать.

Наблюдение кровообращения в брыжейке.

Лягушку кладут на дощечку спинкой вверх. Сбоку делают небольшой надрез кожи и вскрывают брюшную полость. Осторожно извлекают петлю тонких кишок вместе с брыжейкой. Смачивают брыжейку раствором Рингера и распределяют над отверстием в дощечке, вкалывая булавки в кишку.

Отмечают скорость течения крови в различных участках кровеносной системы: в артериолах наблюдается осевой и пристеночный ток крови. В артериолах движение эритроцитов более быстрое, чем в венулах. Зарисовать.

Наблюдение кровообращения в языке.

При помощи марлевой салфетки извлекают у лягушки из ротовой полости язык и растягивают его над отверстием, рассматривают под микроскопом. Смазывают язык раствором адреналина (1: 100) - наблюдаем расширение артерий. Зарисовать.

Вывод:

Занятие № 5

Тема: Внешнее проявления и методы исследования деятельности сердца и сосудов.

Работа сердца сопровождается механическими (сердечный толчок), звуковыми (сердечные тоны), электрическими (электрокардиография) и другими явлениями. Эти показатели дают количественную и качественную характеристику функций сердца и широко используются в клинической практике.

Сердечный толчок проявляется в виде сотрясения переднего участка грудной клетки при сокращении сердца (форма сердца при этом изменяется от элипсоидной до круглой) сердечные толчки хорошо ощущаются рукой при прикладывании ладони или пальцев к груди у крупного рогатого скота в области третьего - четвертого, у лошадей - четвертого - пятого межреберных промежутков слева.

Изменение контуров сердца и аорты хорошо видны на экране рентгеновского аппарата (рентгеноскопия).

Выброс крови из желудочков и ее движение по крупным сосудам вызывают колебания (микроперемещение) всего тела. Регистрация этих перемещений с целью оценки силы и координированности сердечных сокращений называется баллистокардиографией.

Тоны сердца - это высокочастотные звуковые колебания, возникающие при работе сердца и регистрируемые на поверхности грудной клетки. Тоны сердца можно выслушать с помощью фонендоскопа (аускультация) или записать на приборе (фонокардиография).

Различают два тона, которые прослушиваются. Первый, или систолический тон - глухой, низкий и протяжный. Второй, или диастолический - более высокий и отрывистый.

Электрокардиография - метод регистрации электрических явлений, возникающих в сердце во время сердечного цикла. Установлено, что возбужденный участок живой ткани становится электроотрицательным по отношению к невозбужденному. Таким образом, сердце в процессе своей деятельности является источником электрических токов, распространяющихся по телу в различные его участки, которые в течение сердечного цикла меняют потанцеал относительно друг друга. Отражением электрических явлений, происходящих в сердце, является характерная кривая- электрокардиограмма, которая обычно состоит из трех направленных вверх положительных и двух направленных вниз отрицательных зубцов.

Телеэлектрокардиография - дистационные наблюдение за функцией сердца используется для постоянного контроля за тяжелобольными, для изучений реакций на физические нагрузки в спорте и т.д. Этот метод позволяет так же ввести наблюдение за физиологическими функциями человека и животных, находящихся в естественных условиях, в период разнообразной деятельности. Принцип этого метода состоит в том, что биоэлектрический потанциалы усиливаются до 100- 200 мв. усилителем и излучаются передающей антенной.

Векторкардиоскопия - распространение возбуждения по сердцу сопровождается распространением биотока в окружающие ткани. Этот объемный ток создает на поверхности тела свою разность потенциалов, величина и направление которых определяются пространственными взаимоотношениями возбужденных и невозбужденных участков сердечной мышцы. С помощью этого метода можно наблюдать, как в течении сердечного цикла изменяются величина и направление равнодействующих всего электрического поля сердца в проекции на плоскость данных отведений (проекция - фронтальная, сагиттальная, горизонтальная).

Кровяное давление - это давление крови на стенку кровеносного сосуда. Движение крови по кровеносным сосудам большого и малого кругов кровообращения обусловлено работой сердца и эластичностью крупных кровеносных сосудов. Давление повышается при систоле желудочков и снижается во время их диастолы. Различают систолическое (максимальное) и диастолическое (минимальное) давление. Кровяное давление определяют прямым (кровавым) и косвенным (бескровным) методами.

Цель занятия:

1. Получить понятие о внешних проявлениях деятельности сердца и сосудов.

2. Ознакомиться с современными методами исследования сердечной деятельности.

3. Овладеть методикой регистрации и анализа ЭКГ.

Домашнее задание:

1. Написать в тетради показатели нормального артериального давления у сельскохозяйственных животных.

2. Зарисовать ЭКГ крупного рогатого скота.

3. Объяснить происхождение тонов сердца.

Практические работы:

1. Измерение кровяного давления по методу КоротковаН.С. (Непрямой метод)

2. Запись ЭКГ у человека.

3. Прослушивание (аускультация) тонов сердца у человека и животного.

4. Исследование артериального пульса у исследуемого животного.

5. Исследование сердечного (верхушечного) толчка у животных.

Вопросы для подготовки к занятию.

1. Что такое пульс?

2. Как и почему изменяется частота пульса во время глубокого вдоха, выдоха и при физической нагрузки.

3. Что такое анакрота и катокрота?

4. Как будет выглядеть сфигмограмма в результате повреждения аортальных клапанов.

5. Почему аускультативный метод Короткова наиболее удобен для измерения АД крови?

6. Какие факторы влияют на величину АД?

7. Гуморальные влияния на кровяное давление.

8. Сосудодвигательный центр, его локализация и значения для кровяного давления.

9. Значение рефлексогенных зон в регуляции кровяного давления.

10. На каких артериях и в каких участках тела определяют пульс у крупных и мелких животных.

11. Что такое кровяное давление?

Литература:

1. Георгиевский В.И. стр. 195- 198, 209- 220.

2. Сысоев А.А., Битюков И.П., стр. 99- 106, 109- 111.

3. Федий Е.М., Науменко В.В. стр. 79- 82, 84-88.

Работа № 1. Измерение кровяного давления по методу КоротковаН.С. (Непрямой метод)

Цель работы: Ознакомиться с клиническим методом определения артериального давления по Короткову.

Оборудование: сфигмоманометр, фонендоскоп, спиртовые тампоны.

Объект исследования: человек.

Ход работы.

На обнаженное плечо исследуемого наложить резиновую манжетку. Фонендоскоп устанавливают на плечевой артерии ниже манжетки (на локтевом сгибе). Нагнетают в манжетку воздух до тех пор пока исчезнет пульс, т.е. создаем в манжетке давление выше максимального. Затем слегка открыть винтовой клапан и выпускать воздух из манжетки и одновременно прослушивать тоны в артерии.

Момент появления первого звука соответствует систолическому давлению в мм рт. столба. При дальнейшим снижении давления тоны усиливаются, а затем исчезают - показание манометра в этот момент соответствует величине диастолического давления.

В норме у здорового человека максимальное давление 110-140мм рт. столба, минимальное - 60-80мм рт. столба. Разница между ними составляет величину пульсового давления.

Измерение кровяного давления у животных. Артериальное и венозное давление у животных в практике измеряют осциллометрическим методом с помощью прибора флебоосциллометра. Принцип метода основан на измерении величины колебаний (осцилляций) артериальной стенки. Появление и исчезновение пульсовых волн определяется при этом по колебанию столбика ртутного манометра.

Лучшем местом для определения артериального давления у взрослого крупного рогатого скота и лошадей является хвостовая артерия, у телят до 1 года и у овец - срединная артерия, у свиней и собак - артерия сафена.

Результат:

Вывод:

Работа №2. Запись и анализ ЭКГ у человека.

Цель работы: Записать ЭКГ у человека и сделать ее анализ.

Оборудование: электрокардиограф, спиртовые тампоны, салфетки смоченные физиологическим раствором.

Объект исследования: человек.

Ход работы.

Впервые запись токов действия сердца была произведена Эйнтховеном с помощью специально сконструированного струнного гальванометра. Эйнтховен предложил три стандартных отведения:

1- правая рука, левая рука; П- правая рука, левая нога; Ш - левая рука, левая нога.

В настоящее время в клиники, кроме этих стандартных отведений, принято делать дополнительные, располагая один электрод на левой ноге, а второй - на различных точках груди и спины. Для записи электрокардиограммы можно пользоваться электрокардиографами различных систем или осциллографом.

Электрокардиограмма представляет собой характерную кривую с пятью зубцами - P ,Q, R, S, T. Из них три зубца P, Q, T направлены вверх и два зубца Q, S - вниз. Зубец Р характеризует процесс возбуждения предсердий и называется предсердным комплексом. Зубцы Q, R, S составляют желудочный комплекс. Указанные потенциалы представляют собой алгебраическую сумму токов действия возникающих при возбуждении отделов сердца.

У животных, чтобы зарегистрировать ток действия сердца, электроды прикладывают в области пястья передних конечностей и в области плюсны задней конечности.

I - на пястья передних конечностей;

II - на пястья правой передней конечности и плюсну левой задней конечности;

III - на пястья левой передней конечности и на плюсну задней левой конечности.

Результат:

Вывод:

Работа №3. Прослушивание (аускультация) тонов сердца у человека и животного.

Оборудование: фонендоскоп, спиртовые тампоны, матерчатая салфетка.

Объект исследования : человек, кролик или другое животное.

Ход работы.

Аускультация тонов сердца у животного. Производят при помощи фонендоскопа, при вытянутой вперед левой грудной конечности животного. К поверхности к грудной клетки в области 3-5 межреберных промежутков прикладывают фонендоскоп, предварительно накладывают на это место матерчатую салфетку. Отмечают два тона - систолический и диастолический.

Выслушивание тонов сердца у человека. Проводят так же при помощи фонендоскопа, который прикладывают в 5 межреберном промежутке, на 1-1,5 см. внутрь от среднеключичной линии. При выслушивании обращают внимание на ясность тонов, частоту, ритм, отсутствие шумов.

Результат:

Вывод:

Работа № 4.

Исследование артериального пульса у человека и животных.

Цель работы: Провести пальпацию и подсчет пульса у человека и животного.

Исследование пульса у животных. Пульс у крупного рогатого скота определяют на хвостовой и наружной лицевой артериях, у лошадей - на наружной челюстной артерии в сосудистой выемке нижней челюсти, можно исследовать пульс так же на височной и поперечной лицевой артериях. У мелких животных (овец, коз, телят, собак)- на сосудах бедра или предплечья.

У человека пульс исследуют пальпацией на лучевой артерии.

Ход работы.

Животное фиксируют. Производят пальпацию пульса, т.е. прощупывание артерии двумя пальцами правой руки. При этом следует установить: 1) частоту пульса - учащение, замедление и количество ударов в минуту, 2) ритмичность, т.е. правильное чередование ударов, 3) напряжение сосудистой стенки (твердый или мягкий пульс), 4) величину и форму пульсовой волны.

Результат:

Вывод:

Работа № 5. Исследование сердечного (верхушечного) толчка у животных.

Цель работы: Определить границу сердечного толчка у животного.

Сердечный толчок - у лошадей, крупного и мелкого рогатого скота сердечный толчок боковой, а у собак и кошек верхушечный.

Ход работы.

У животного левую переднюю конечность отводят вперед. Ладонь руки исследователь прикладывает в области 4-5 межреберного промежутка и определяет сердечный толчок (по содроганию грудной стенки и движению волосяного покрова). Обратить внимание на частоту, ритм, силу и место возникновения сердечного толчка.

Результат:

Вывод:

Раздел: Физиология крови.

Занятие № 1.

Тема: Физико - химические свойства крови и плазмы.

Кровь - разновидность соединительной ткани, составляющая вместе с лимфой и тканевой жидкостью внутреннюю среду организма. Кровь и органы, в которых происходит образование и разрушение кровяных телец (костный мозг, печень, отчасти лимфоидные органы), объединяют в единую систему крови, деятельность которой регулируется нейрогуморальными механизмами. Значения крови в организме многообразно. Она выполняет транспортную функцию- доставляет к тканям необходимые питательные вещества и кислород и выводит продукты обмена. За счет крови создается оптимальная физико-химическая среда, необходимая для жизнедеятельности тканей, а также поддерживается постоянство температуры тела животных.

Кроме того, она выполняет защитную и коррелятивную функцию, изменяет объем органов, участвует в поглощении фиолетовой и ультрафиолетовой части солнечного спектра, за счет чего повышается ее химическая активность.

Исследование различных показателей крови широко применяется для характеристике физиологического состояния животного.

Объектом исследования крови может быть любой вид сельскохозяйственных лабораторных животных и птиц.

У крупного рогатого скота, коз, овец, лошадей получают кровь из яремной вены с помощью стерильной кровопускательной иглы, которую вводят в вену на границе верхней и средней трети шеи. Перед взятием крови животное фиксируют, шерсть на месте укола выстригают, кожу протирают спиртом или эфиром для удаления кожного сало и для дезинфекции. Место укола должно быть сухим, иначе кровь будит растекаться. Пальцем прижимают центральный отрезок вены и прокалывают набухший сосуд под углом 45, которую вводят против тока крови. После взятия крови обрабатывают это место настойкой йода. В небольших количествах кровь получают из ушной вены.

У собак , кроликов, морских свинок кровь берут из ушной вены. У свиней для взятие крови отрезают кончик хвоста в последующим хвост перевязывают. У птиц кровь берут из подкрыльцовой вены.

У человека обычно кровь берут из мякоти 3 и 4 пальца левой руки. У маленьких детей кровь берут из пятки или из мочки уха.

Кровь состоит из плазмы и взвешенных в ней форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов).

Плазма крови содержит в среднем до 8 % белков (альбумины, глобулины, фибриноген), остаточный азот- 0,02 - 0,03 %, углеводов до 120 мг%, жиров 0,15 %, солей 0,9 %, а также гормоны, витамины, ферменты и антитела.

Кровь в организме животного находится в жидком состоянии. При нарушении целостности кровеносного сосуда вытекаемая кровь свертывается и образовавшийся на месте раны сгусток препятствует дальнейшему ее вытеканию. Свертывание крови может произойти и в кровеносном сосуде. При этом образуется сгусток- тромб, который закупоривает сосуд.

Механизмы, препятствующие этому процессу, относятся к фибринолитической противосвертывающей системе. Эти две взаимосвязанные реакции свертывания крови и фибринолитическая система поддерживают кровь в жидком состоянии и тем самым обеспечивают ее гемостатическое равновесие.

Если из сосуда выпустить кровь в пробирку, она свернется и образуется кровяной сгусток. Через некоторое время сгусток сжимается, уплотняется (ретракция) из него высвобождается соломенно-желтого цвета жидкость - сыворотка.

Если получаемую от животного кровь помешивать метелочкой, то вокруг нее образуются нити. Это свернулся белок - фибриноген. Его удаляют и оставшуюся часть крови, состоящую из сыворотки и форменных элементов, называют дефибринированной.

Кровь здоровых животных обладает свойством свертываться, однако в отдельных случаях отмечается пониженная свертываемость или несвертываемость крови- гемофилия. Скорость свертывания крови у разных животных различная. Так, например, у коров кровь начинает свертываться через 5-8 минут, у лошадей - 10-15 минут, у свиней - 3-5 минут, у собак - 2-3 минут, у птиц - 1-2 минуты.

Предотвратить (затормозить) свертывание крови можно: путем добавления гепарина, гирудина, трилона Б и т.д.

Цель занятия: 1. Сформировать представление о системе крови как ткани и внутренней среде организма.

2. Ознакомиться с физико-химическими свойствами крови.

Домашнее задание:

1. Перечислить элементы системы крови.

2. Перечислить функции крови.

Вопросы для подготовки :

1. Значение крови в организме.

2. Кровь и ее состав.

3. Какой объем занимает плазма и форменные элементы крови.

4. Что такое фибрин и как его выделить из крови.

5. Как получить кровь у животных.

6. Каков механизм свертывания крови.

7. Чем плазма отличается от сыворотки.

8. Чем можно: а) ускорить свертывание крови, б) замедлить, в) предотвратить.

9. Как получить плазму, сыворотку, фибрин.

10. При какой величине кровопотери возможно сохранение жизни животного: 20 %, 30 % или 50 % общего количества крови животного.

Практические работы:

1. Определить скорость свертывания крови у кролика.

2. Определить плотность, вязкость и щелочной резерв исследуемой крови.

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 149-159.

2. Е.М. Федий, стр. 50-53.

3. А.А. Сысоев, стр. 61-62.

Работа №1.

Определение скорости свертывания крови у кролика.

Оборудование: предметные стекла (простые и парафинированные), квачи, настойка йода, инъекционные иглы, спиртовые тампоны, вата, ножницы.

Объект исследования: кролик.

Ход работы.

На простое и парафинированное стекла помещают по капле свежеполученной крови кролика. Точно заметить время и через каждые 30 секунд наклонять стекла под углом 45 градусом в одну и другую стороны. Если капля при наклоне стекла меняет форму- свертывание еще не наступило, если не меняет, то кровь свернулась. Скорость свертывания в минутах устанавливается от момента взятия крови до момента свертывания.

Результат :

Вывод:

Работа №2. Определение плотности крови.

Оборудование: штатив с пробирками, дистиллированная вода, растовр медного купороса с плотностью 1,1; пипетки, вискозиметр, глазные чашечки, бюретки для титрования, фенолфталеин, химические стаканчики, микропипетки 0,2 мл., 0,01 н растворы HCI и NaOH.

Объект исследования : кровь животного.

Ход работы.

Готовят раствор медного купороса с плотностью от 1,050 до 1,060. Затем пипеткой вносят по капле свежеполученной или стабилизированной крови животного в раствор медного купороса с разной плотностью. Если капля сразу вплывает, плотность крови ниже плотности раствора, если капля тонет, то наоборот. Плотность раствора равна плотности крови, если капля погрузится в раствор и задерживается во взвешенном состоянии в течение 4-5 секунд.

Результат :

Вывод :

Работа № 3. Определение вязкости крови.

Оборудование: вискозиметр, глазные чашечки, дистиллированная вода.

Объект исследования : кровь животного.

Ход работы.

В правую пипетку до метки “0” насосать через резиновую трубку из глазной чашечке дистиллированную воду. Перекрыть кран. Аналогичным образом из глазной чашечки или с места прокола насосать в другой капилляр кровь до метки “0” ( без пузырьков). Зарядив оба капилляра, поставить краник в положение, при котором оба капилляра сообщаются с резиновой трубкой. Энергично, но осторожно втянуть ртом воздух из обеих трубок, создавая вакуум во всей системе. Оба столбика жидкости будут одновременно продвигаться вперед. Следить за столбиком крови. Как только кровь дойдет точно до метки “1”, прекратить всасывание. Цифра, до которой дойдет за этот период столбик воды, является относительным показателем вязкости крови.

У млекопитающих и птиц он составляет 4-5, у рыб 1,7- 1,8.

Результат :

Вывод:

Работа № 4. Определение щелочного резерва крови.

Оборудование: бюретки для титрования, фенолфталеин, пипетки, химические стаканчики, микропипетки 0,2 мл., 0,01 н растворы HCI и NaOH.

Объект исследования : кровь животного.

Ход работы.

В химический стаканчик 10 мл. 0,01н раствора НСI. После прокола кровеносного сосуда в пипетку насосать 0,2 мл. крови, выдуть ее в стаканчик и перемешать содержимое. Гемолизированный раствор титровать из бюретки 0,01н раствором NaOH до появления помутнения и выпадения белых хлопьев.

В другой стаканчик налить 10 мл. 0,01н раствора НС1, добавить 2 капли фенолфталеина и титровать 0,01н раствором NaOH до бледно-розового окрашивания (контрольная проба).

Рассчитать кислотную емкость крови (в мг %) по формуле:

КЕ= (Х -У) х 200.

Х-количество мл. 0,01 н раствора NaOH, пошедшего на титрование 10мл 0,01 н раствора НС1 в контрольной пробе,

У-количество мл. 0,01н раствора NaOH, пошедшего на титрование испытуемого раствора, 200 - постоянный коэффициент.

Результат :

Вывод:

Занятие №2.

Тема: Эритрон. Методы исследования красной крови.

Эритроном называют совокупность эритроцитов всей крови (erythronum; греч. Erythros- красный) - система красной крови, вкулючающая периферическую кровь, органы эритропоэза и эритроциторазрушения.

Основную массу форменных элементов крови составляют красные кровяные тельца - эритроциты. Это специализированные безъядерные (у млекопитающих) клетки диаметром 7-9 мкм, имеющие форму двояновогнутого диска. Благодаря специфической форме, пористой поверхности, способности к обратимой деформации при прохождении через узкие капилляры эритроциты хорошо приспособлены к выполнению своей основной функции- переносу дыхательных газов (О₂, СО₂). Этот перенос осуществляется благодаря наличию в эритроцитах дыхательных пигментов. У птиц и рыб эритроциты имеют форму двояковыпуклого диска и содержат ядро.

Эритроциты образуются внутри сосудов в синусах красного костного мозга. Поступающие в кровь эритроцитарные клетки уже не имеют ядра, но содержат базофильное вещество, которое окашивается основными красками. Эти юные клетки- непосредственные предшественники зрелых эритроцитов- получили название ретикулоцитов. У взрослых животных они составляют 5-10 % всех эритроцитов крови.

Эритроцит состоит из однородной электронно- оптически плотной цитоплазмы, содержащей гемоглобин. В состав гемоглобина входит простой белок глобин и небелковая пигментная группа гем.

В процессе переноса О₂ гемоглобин превращается в оксигемоглобин (НвО₂), гемоглобин, связанный с СО_2, называют карбогемоглобином (НвСО₂), связанный с угарным газом- карбооксигемоглобин (НвСО), связанный с сильнодействующими окислителями (перманганат калия, бертолетова соль, нейробензол, анилин), образует соединения метгемоглобин (НвОН), в скелетных и сердечной мышцах находится мышечный гемоглобин- миоглобин.

Клеточная мембрана является тем местом, где протекают важнейшие ферментативные процессы и осуществляются иммунные реакции. Она также несет информацию о группах крови и тканевых антигенах. Мембрана состоит из 4 слоев и обладает избирательной проницаемостью. Через нее проходят газы, вода, ионы Н⁺, анионы ОН^-, С1^-, НСО₃^-; она мало проницаема для глюкозы, мочевины, ионов К⁺ и Nа⁺ . Через нее почти не проходит большинство катионов, она совершенно не пропускает белков. Сухой остаток эритроцитов содержит около 95 % гемоглобина, остальное приходится на долю липидов, углеводов, солей, ферментов.

Процесс разрушения эритроцитов, при котором гемоглобин выходит из них в плазму, называют гемолизам.

У новорожденных животных число эритроцитов больше, чем у взрослых. Увеличение числа эритроцитов в результате их усиленного образования носит название истинного эритроцитоза, если же число эритроцитов возрастает из - за их поступления из депо крови- перераспределительного эритроцитоза.

Функции эритроцитов:

1) транспорт О₂ от легких к тканям и СО₂ от тканей к легким,

2) переносят адсорбированные на их поверхности питательные вещества в виде аминокислотных остатков, биологически активные вещества обмениваются липидами с плазмой крови,

3) участвуют в регуляции кислотно-щелочного равновесия в организме, а также ионного равновесия плазмы, водно-солевого обмена организма,

4) принимают участие в явлениях иммунитета, адсорбируя различные яды, которые разрушаются затем клетками РЭС.

5) важную роль играют также в регуляции активности свертывающей системы крови, целые эритроциты, так же как и тромбоциты, влияют на образование тромбопластина.

Созревшие эритроциты циркулируют в крови 100-120 дней, после чего фагоцитируются клетками РЭС печени, селезенке, костного мозга.

В целях диагностики используют различные методы исследования крови.

Цель занятия: Ознакомиться с методами клинического исследования красной крови.

Домашнее задание:

1) Нарисовать в тетради эритроциты млекопитающих и птиц.

2) Составить таблицу по гемолизу эритроцитов в зависимости от различных факторов.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Понятие об эритроне.

2. Строение, количество эритроцитов и их роль.

3. Гемолиз, его виды. Осмотическая резистентность эритроцитов.

4. Гемоглобин и его значение в организме.

5. Соединения гемоглобина с газами.

6. Кислородная емкость крови.

7. Количество гемоглобина и методы определения.

8. СОЭ, какие факторы влияют на этот процесс.

9. Какое значение имеет подсчет форменных элементов крови для практики.

10. Что называют цветным показателем крови.

Практические работы:

1. Техника и методика подсчета эритроцитов.

2. Определение количества гемоглобина в крови.

3. Расчет цветового показателя крови.

4. Определение скорости оседания эритроцитов.

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 163-172, 173-179.

2. А.А. Сысоев, стр. 73-79, 80-81, 85-86.

3. Е.М. Фидий, стр. 54-57, 58-59, 64-65.

Работа №1. Техника и методика подсчета эритроцитов.

Оборудование: микроскоп, камера Горяева, покровные стекла, смеситель для эритроцитов, гипертонический раствор (3 % раствор Na Cl).

Объект исследования: кровь животного.

Ход работы.

В эритроцитарный смеситель набирают кровь до метки 0,5 или 1 гипертонический раствор до метки 101. Перемешивают в течение 1-2 минут, затем первые две капли выпускают на фильтровальную бумагу. К сетке Горяева притирают покровное стекло до появления колец Ньютона. Капельку средней величины из смесителя помещают под покровное стекло камеры Горяева. Через одну две минуты камеру Горяева ставят под микроскоп и приступают к подсчету эритроцитов. Считают эритроциты в 5 больших квадратах расположенных по диагонали. Учитывают все эритроциты которые лежат внутри квадрата, а также те которые лежат на его левой и верхней границе и большей частью принадлежит данному квадрату.

Расчет ведут по формуле:

Х- число эритроцитов в 1 мкм крови.

П- число эритроцитов в 5 больших квадратов.

4000- объем маленького квадрата.

100 (200)- разведение крови.

80 - количество маленьких квадратов.

Результат :

Вывод:

Работа №2. Определение количества гемоглобина в крови.

Оборудование: гемометр Сали, дистиллированная вода, 0,1н раствор НС1.

Объект исследования: кровь животного.

Ход работы.

В среднюю пробирку наливают 0,1 раствор НС1 до нижней метки. В градуированную пипетку набирают 0,2 мл. исследуемой крови и выдувают ее в 0,1н раствор НС1. Не вынимая пипетку, споласкивают ее соляной кислотой, содержимое пробирки перемешивают стеклянной палочкой оставляют на 3-5 минут, для того чтобы гемоглобин перешел в солянокислый гематин, на что будет указывать коричневое окрашивание. Затем прибавляют по каплям дистиллированную воду до тех пор, пока цвет полученного раствора не будет совершенно одинаков с цветом стандарта (добавляя воду, раствор перемешивают стеклянной палочкой).

Цифра, стоящая на уровне полученного раствора, показывает относительный процент содержания гемоглобина в исследуемой крови.

Результат :

Вывод:

Работа №3. Расчет цветового показателя крови.

Оборудование: исходные данные по подсчету эритроцитов и определения гемоглобина в крови.

Соотношение между количеством гемоглобина крови и числом эритроцитов носит название цветного показателя. Цветной показатель позволяет оценить степень насыщения эритроцитов гемоглобином.

В патологии цветной показатель может быть выше единицы (гиперхромазия) или ниже единицы (гипохромазия). В норме он составляет 0,8-1. Вычисление цветного показателя имеет большое диагностическое значение.

Ход работы.

Определив в исследуемой крови количество гемоглобина и число эритроцитов, высчитывают цветной показатель по формуле:

Ц.П. = найденное количество гемоглобина* найденное число эритроцитов/нормальное количество гемоглобина* нормальное число эритроцитов.

Результат :

Вывод:

Работа №4. Определение скорости оседания эритроцитов по методу Панченкова.

Оборудование: штатив и пипетка Панченкова, антикоагулянт, спиртовые тампоны, вата, инъекционные иглы, настойка йода, глазные чашечки.

Объект исследования: кровь животного.

Ход работы.

Капиллярную пипетку Панченкова несколько раз промыть антикоагулянтом и набрать его в пипетку до метки Р(50) и выдувают его в глазную чашечку. С места прокола насосать кровь в этот же капилляр до метки К(О), держа его горизонтально. Выпустить взятую кровь в ту же глазную чашечку, снова набрать кровь до метки К и выдуть ее в глазную чашечку. Концом капилляра тщательно перемешать кровь с антикоагулянтом и насосать ее в капилляр до метки К, избегая попадания воздуха. Верхний конец капилляра зажать указательным пальцем, нижний- обтереть ваткой и установить в штативе строго вертикально на один час. Затем отмечают на сколько делений опустилась в пипетке верхняя граница слоя эритроцитов.

Результат :

Вывод:

Занятие № 3.

Тема: Физиология лейкона. Методы исследования белой крови.

Лейкоциты обеспечивают иммунитет - защиту организма от любых чужеродных агентов. Увеличение количества лейкоцитов- лейкоцитоз, уменьшение - лейкопения. Процентное соотношение различных форм лейкоцитов называют лейкоцитарной формулой. Анализ лейкоцитарной формулы имеет большое диагностическое и прогностическое значение при оценке функциональной особенности кроветворных органов. Она имеет видовые отличия и характерно изменяется при заболеваниях, поэтому ее изучению придается большое значение в клинике.

При микроскопе окрашенного мазка крови можно обнаружить, что лейкоциты имеют неодинаковые размеры, различную форму ядра, неодинаковую протоплазму. Клетки, содержащие в протоплазме зернистость, относятся к группе гранулоцитов; не содержащие зернистости - к группе агранулоцитов.

Зернистые лейкоциты развиваются (как и эритроциты) в красном костном мозге эпифизов трубчатых костей из особых клеток- гематоцитобластов. Более “молодые” зернистые лейкоциты имеют компактное, несколько вытянутое ядро и называются палочкоядерными; более “зрелых” клеток - сегментированных- ядро расщеплено на несколько соединенных между собой частей.

Зерна в протоплазме красятся основными или кислыми красителями. К зернистым лейкоцитам относятся нейтрофилы, эозинофилы и базофилы.

Незернистые лейкоциты развиваются в ретикулоэдотелиальной ткани лимфатических узлов и селезенки. Сюда относятся лимфоциты- небольшие клетки, почти весь объем которых занят плотным синим ядром, окаймленным голубым ободком протоплазмы: моноциты - крупные клетки с бобовидным рыхлым ядром голубовато- серой вуалеобразной протоплазмой.

Существенным показателем физиологического состояния (в частности, реактивности) организма животного служит кроветворная система, чутко реагирующая на воздействие самых разнообразных факторов.

В крови сельскохозяйственных животных и птиц в наибольшем количестве содержатся лимфоциты и нейтрофилы. Изменение лейкоцитарной формулы может быть в сторону как увеличения, так и в сторону уменьшения тех или иных форм лейкоцитов.

Цель занятия:

1.Сформировать понятие системы лейкона, ее роли в поддержании гомеостаза.

2.Выяснить изменения в системе лейкона при различных физиологических состояниях.

3.Познакомиться с методами лабораторного исследования лейкоцитов.

Домашнее задание:

1. Написать лейкоцитарную формулу.

2. Перечислить функции лейкоцитов.

3. Нарисовать схему нейрогуморальной регуляции лейкопоэза.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Лейкоциты и их физиологическое значение?

2. Морфологическая и функциональная характеристика различных форм лейкоцитов.

3. Понятие о лейкоцитозе, лейкопении, индекс сдвига.

4. Что такое лейкоцитарная формула и с какой целью она выводится?

Практические работы:

1. Определение количества лейкоцитов.

2. Анализ лейкоцитарной формулы.

Литература:

В.И. Георгиевский, стр. 179-181.

А.А. Сысоев, стр. 81-83.

Работа № 1. Анализ лейкоцитарной формулы.

Оборудование: микроскоп, иммерсионное масло.

Объект исследования: мазки крови (окрашенные по Гимза- Романовскому),

Ход работы.

На окрашенный мазок нанести каплю иммерсионнго масла и, закрепив препарат в препаратоводителе, просматривать его при окуляре 7(10) и объективе 90.

В мазке найти все основные элементы, сравнив их форму, размеры, структуру у разных видов животных.

Произвести подсчет (100) или (200) лейкоцитов, передвигая препарат лестницеобразно, смещая препарат справа налево. Подсчитанную сумму отдельных лейкоцитов вычислить их процентное содержание, вывести лейкоцитарную формулу.

Результат:

Вывод:

Работа № 2. Подсчет количества лейкоцитов.

Цель работы: Ознакомиться с методикой подсчета лейкоцитов.

Оборудование: Микроскоп, смеситель для лейкоцитов, жидкость Тюрка, спиртовые тампоны, глазные пипетки, камера Горяева, покровные стекла.

Объект исследования: кровь.

Ход работы.

1. Перед началом работы необходимо изучить устройство счетной камеры Горяева. Для этого помещают камеру под микроскоп. Сначала под малым, а затем под большим увеличением рассматривают сетку, находят малые квадратики и большие квадраты. Зарисовывают.

2. В глазную чашечку наливают жидкость Тюрка (3-4 % раствор уксусной кислоты, подкрашенный красным генцианвиолетом) для разбавления крови.

3. В смеситель для лейкоцитов кровь набирают до отметки 1 (или 0,5) жидкость Тюрка до метки 11.

Подсчет лейкоцитов: Берут заполненный смеситель для лейкоцитов и перемешав его содержимое, заполняют счетную камеру Горяева. Подсчет ведут в 100 больших квадратах, взятых подряд. Рассчитывают по формуле:

Х = П х 4000 х 10 (20)

1600

Результат :

Вывод :

Раздел: Физиология пищеварения.

Занятие № 1.

Тема: Функции системы пищеварения (секреторная, моторная, всасывательная).

Пищеварение - безусловная, врожденная, сложнорефлекторная реакция, организма, связанная с приемом корма, его переработкой и продвижением по пищеварительному каналу, химическим изменением, всасыванием и выведением из организма не усвоенных экскретируемых веществ.

Ротовая полость является начальным участком желудочно-кишечного тракта, куда изливается секрет трех пар слюнных желез: околоушные-серозные, подчелюстные-смешанные и подъязычные- слизистые.

Слюноотделение - рефлекторный акт, возникающий под влиянием безусловных и условных раздражений (вид, запах пищи).

Для получения чистой слюны и изучения ее состава, а также для исследования секреторной деятельности слюнных желез применяется способ наложения слюнных фистул Павлова-Глинского.

Слюна представляет собой прозрачную, слегка опалесцирующуюся жидкость, лишенную вкуса и запаха, содержащую 98-99,5 % воды, с плотностью 1,001-1,009, рн 7,2-8,5. В состав слюны входят: глюкопротеид муцин, небольшое количество белков (белки плазмы, иммуноглобулины, ферменты: амилаза, щелочная и кислая фосфатазы, нуклеаза), электролиты: катионы- Nа⁺, К⁺, Са⁺⁺, Mg⁺⁺, анионы- С1^-, J^-, НСО₃^-, Н₂РО₄^—, SCN).

У всех видов сельскохозяйственных животных слюна:

а) способствует размягчению корма при его пережевывании,

б) экстрагирует из корма вкусовые вещества, в) облегчает формирование пищевого кома и его заглатывание, г) обладает бактерицидными и дезинфицирующими свойствами (благодаря наличию лизоцима и родонатов), д) экстретирует некоторые продукты обмена и лекарственных веществ из крови (мочевину, алкоголь, йодистые соединения, соли тяжелых металлов и др. С целью освобождения крови от избытка этих продуктов или поддержания постоянства состава желудочного содержимого, е) обладает кровоостанавливающим действием благодаря наличию тромбопластических веществ.

У некоторых видов животных (свиньи, кролики, лошади) слюна содержит ферменты альфа-амилазу и альфа-глюкозидазу, расщепляющие в щелочной среде крахмал (крахмал-декстрины- мальтоза- глюкоза).

В лаборатории Павлова была доказана приспособляемость слюнных желез к характеру кормления. Так, на сухарный порошок у собак больше выделяется слюны, чем на хлеб; при введении в рот отвергаемых веществ - отмытого песка, раствора слабой кислоты выделяется так называемая отмывная слюна - обильная, жидкая, бедная органическими веществами.

Из ротовой полости пищевой ком поступает в желудок, где подвергается механической и химической обработке. У разных видов животных желудок состоит из разного числа камер, (отделов). Соответственно этому различают желудки - однокамерные и многокамерные.

Экпериментальное изучение желудочной секреции впервые было начато русским хирургом В.А. Басовым и итальянским ученым Блондло (1842), которые создали искусственную фистулу желудка у собак.

Методику получения чистого желудочного сока разработал Павлов с сотрудниками (мнимого кормления, изолированный желудочек).

Желудочный сок - бесцветная, прозрачная жидкость кислой реакции, содержащая органические и неорганические вещества. Неорганические вещества - это хлористо-водородная кислота, хлористые соли калия, натрия, кальция, аммония и магния; имеются также сульфаты и фосфаты.

К органическим веществам относят белки - значительную часть из них составляют ферменты желудочного сока (пепсин, липаза, химозин, желатиназа),молочная, фосфорная и аденозинтрифосфорная кислоты. В желудочном соке встречаются некоторые промежуточные продукты белкового обмена: аминокислоты, креатинин, мочевая кислота.

Кроме сока, в желудке вырабатывается слизь. Обкладочными клетками вырабатывается внутренний фактор - гликопротеид, способствующий всасыванию витамина В₁₂, отсутствие этого фактора нарушает функцию кроветворения. Переход пищевых масс из желудка в кишечник происходит небольшими порциями. Пилорический сфинктер периодически то открывается, то закрывается, понемногу пропуская разжиженные пищевые массы (химус) в двенадцатиперстную кишку, это происходит рефлекторно. Пилорический рефлекс, обнаруженный в 1899г. Сердюковым в лаборатории Павлова, был назван запирательным пилорическим рефлексом. Поступившие в двенадцатиперстную кишку кормовые массы подвергаются воздействию сока поджелудочный железы, желчи и кишечного сока, которые имеют щелочную реакцию. Двигательная функция кишечника обеспечивает перемешивание и перед движением кормовых масс, создает лучшие условия для их переваривания (ферментативного расщепления) и всасывания продуктов переваривания.

Кишечная мускулатура всегда находится в состоянии некоторого тонуса. На фоне этого тонуса совершаются перистальтические и маятникообразные сокращения, стимулирующиеся механическими и химическими агентами из полости с помощью пищеварительного канала. Даже вырезанный из организма кишечник сохраняет способность к этим движениям, что доказывает его способность к автоматии.

Цель занятия:

1. Ознакомиться с методами исследования секреторной и моторной деятельности пищеварительного аппарата в эксперименте и клинике.

2. Рассмотреть механизмы регуляции секреторной и моторной функции пищеварительной системы.

Домашнее задание:

1. Перечислить ферментный состав пищеварительных соков.

2. Перечислить основные виды сокращения желудка и кишечника.

3. Нарисовать схему функциональной системы поддержания концентрации питательных веществ.

Вопросы для подготовки к занятию:

0. Роль пищеварения.

1. Этапы пищеварения.

2. Методы исследования секреторной и моторной деятельности пищеварительной системы.

3. Секреция слюны, её пищеварительное значение, зависимость от состава и рода пищи.

4. Фазы желудочной секреции. Секреция желудочного сока на различные пищевые вещества.

5. Состав и действие панкреатического сока.

6. Роль печени в системе пищеварения.

7. Процесс пищеварения в кишечнике.

Практические работы:

1.Определение протеолитической активности желудочного сока и влияние на неё реакции среды и температуры.

2.Наблюдение за двигательной активностью кишечника. Влияние на перистальтику и тонус кишечника механического раздражения и действия химических веществ (ацетилхолина и адреналина).

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 89-97, стр. 136-138.

2. А.А. Сысоев, И.П. Битюков, стр., 32, 38-43, 44-45, 46.

Работа № 1. Определение протеолитической активности желудочного сока и влияние на неё реакции среды и температуры.

Оборудование: штатив с пробирками, рентгеновская пленка, мел, 0,5 % НС1, пипетки, спиртовка, водяная баня.

Объект исследования : желудочный сок.

Ход работы.

Берут четыре пробирки. В первую наливают 2мл. желудочного сока, во вторую - 2мл. желудочного сока прокипяченного и охлажденного, в третью- 2мл. 0,5 % раствора НС1, и в четвертую- 2мл. желудочного сока и добавляем мел до осадка. В каждую пробирку бросают по кусочку рентгеновской пленки. Затем штатив с пробирками ставят в водяную баню при температуре 38⁰ С на 15-30 минут. По истечении указанного времени пробирки вынимают и отмечают состояние эмульсии на каждой пленке.

Результат:

Вывод:

Работа № 2. Наблюдение за двигательной активностью кишечника при механическом и химическом раздражении.

Оборудование: препаровальный набор, кюветка с салфеткой, раствор Рингера, дощечка, штатив с рычажком Энгельмана, растворы адреналина и ацетилхолина в разведении 1:1000, кимограф.

Объект исследования: лягушка.

Ход работы.

Обездвиживают лягушку, кладут на дощечку брюшком кверху, разрезают брюшную стенку, обнаруживают желудок, кишечник, прямую кишку и клоаку (клоакой называется конечный участок кишечной трубки, в которой открываются, кроме прямой кишки, мочеточники и яйцеводы.

Наносят механическое раздражение пинцетом или булавкой в одном из верхних отделов пищеварительной трубке. Наблюдаются перистальтические движения.

Находят прямую кишку, освобождают ее от брыжейки и на 1-2 сантиметра выше начала прямой кишки перевязывают тонкую кишку в двух местах рядом. Между этими двумя лигатурами кишку перерезают. Свободный конец кишки при помощи серфинки соединяют с рычажком Энгельмана, приближают к барабану кимографа и записывают сокращение кишки.

Не останавливая кимографа, капают на поверхность кишки 1 каплю раствора ацетилхолина. Через некоторое время под действием ацетилхолина тонус кишки повышается: рычажок резко идет вверх. Сокращения усиливаются, а иногда и учащаются. Отмывают кишку от ацетилхолина раствором Рингера.

Затем капают на поверхность кишки 1 каплю раствора адреналина. Убеждаются, что под влиянием адреналина тонус кишки понижается, а сокращения прекращаются: рычажок идет вниз и пишет прямую линию.

Результат : нарисовать (или приклеить) полученные кимограммы.

Вывод:

Занятие № 2.

Тема: Пищеварение в многокамерном желудке.

Желудок жвачных сложный, многокамерный. Он состоит из четырех отделов: рубца, сетки, книжки и сычуга. Первые три отдела называют преджелудками и только сычуг является истинным желудком.

Рубец - самая большая начальная камера желудка жвачных и составляет у крс 100-300, у овец и коз 13-23 л. Слизистая оболочка имеет желез, она выстлана плоским ороговевшим с поверхности многослойным эпителием и формирует множество различной величины сосочков до 1 см длины (у мелких жвачных- до 0,5 см).

В рубце переваривается до 70 % сухого вещества рациона, это происходит без участия пищеварительных ферментов. Расщепление клетчатки и других вещества корма осуществляется ферментами микроорганизмов, а также ферментами растений. Пищеварение в рубце зависит и от поступление в него слюны.

В преджелудках жвачных в основном развиваются анаэробные микроорганизмы (инфузории и бактерии), содержатся кокки, стрептококки, молочнокислые, целлюлозолитические другие бактерии, которые попадают в рубец с кормом и водой и благодаря оптимальным условиям активно размножаются.

Простейшие, населяющие преджелудки жвачных, представлены классом ресничных инфузорий, который включает в себя около 100 видов. В рубце крс обнаружено более 30 видов инфузорий в рубце овец- около 15. В 1 мл. рубцового содержимого насчитывается от 0,2 до 2 мл. инфузорий в зависимости от количества и качества принятого корма.

Инфузории имеют размер от 20 до 200 мкм; общая их масса составляет до 20 % массы содержимого рубца. Инфузории перемешивают и разрыхляют содержимого рубца (клетчатку); инфузории переваривая белки, крахмал, сахара и частично клетчатку, накапливают в своем теле полисахариды. В процессе жизнедеятельности микроорганизмы синтезируют белки своего тела. Продвигаясь вместе с кормовой массой по пищеварительному тракту, они перевариваются и используется организмом животного, доставляя ему более полноценный белок по сравнению с тем, который был получен с кормом (около 100 г. белка). В процессе жизнедеятельности микроорганизмы рубца синтезируют витамины группы В: рибофлавин, тиамин, никотиновую, фолиевую и пантотеновые кислоты, биотин, пиридоксин, цианкобаламин (В₁₂), а также жирорастворимый витамин К (филлохинон).

Цель занятия: Ознакомиться с особенностями функционирования многокамерного желудка жвачных животных.

Домашнее задание:

1. Перечислить особенности пищеварения у жвачных животных.

2. Особенности пищеварения в желудке у лошади и свиньи.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Роль микрофлоры и микрофауны в пищеварительных процессах.

2. Особенности пищеварения у жвачных животных.

3. Особенность желудочного пищеварения у телят молозивного периода.

4. Какие жирные кислоты образуются в рубце жвачных животных и их значение.

Практическая работа:

1. Наблюдение инфузорий рубцового содержимого под микроскопом.

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 130-132

2. А.А. Сысоев, И.П. Битюков, стр. 47.

Работа № 1. Наблюдение инфузорий рубцового содержимого под микроскопом.

Цель работы: Ознакомиться с разновидностями рубцовых инфузорий, их размерами и характером движения.

Оборудование: микроскоп, столик Морозова, покровные и предметные стекла, стеклянная палочка, термометр, вода с температурой 38-40* С, марлевая салфетка.

Объект исследования: содержимое рубца жвачных, взятое под слой прокипяченного вазелинового масла.

Ход работы:

Стеклянной палочкой наносят на предметное стекло каплю рубцового содержимого. На каплю помещают покровное стекло. Предметное стекло кладут на подогреваемый столик Морозова, который помещают на столик микроскопа. При малом увеличении микроскопа наблюдают за движением инфузорий. В тетради зарисовывают различные виды увиденных инфузорий.

Результат:

Вывод:

Раздел: Физиология дыхания

Тема: Внешнее дыхание. Структура дыхательного цикла.

Дыхание - совокупность процессов, в результате которых происходит обеспечение тканей О₂ и выведение из организма

С О₂ , образующегося в результате обмена веществ.

Различают внешнее, или легочное, и внутреннее, или тканевое, дыхание. За счет внешнего дыхания обеспечивается газовый гомеостаз крови. В нем принимают участие легкие, передние дыхательные пути, диафрагма, мышцы грудной клетки и живота.

В передних дыхательных путях (носовой полости, гортани, трахее, крупных бронхах) происходит согревание поступающего извне воздуха, его увлажнение и очищение. Железистые клетки слизистой выделяют слизь, которая улавливает взвешенные в воздухе мелкие частицы (пыль, микробы). Движениями ресничек мерцательного эпителия задержанные частицы С О₂ слизью передвигаются к наружным отверстиям и выводятся из организма.

Дыхание характеризуется двумя последовательно протекающими фазами - вдохом и выдохом. При вдохе грудная полость увеличивается, легкие расширяются и атмосферный воздух поступает в дыхательные пути. При выдохе объем грудной полости уменьшается, легкие сжимаются и выдыхаемый воздух удаляется наружу. Важное значение в этих процессах имеет диафрагма, которая принимает активное участие в дыхание. Легкие являются основными органами дыхания. Основная структурная единица легких- альвеолы. В них происходит газообмен, при котором капилляры легких обогащаются О₂ воздуха и кровь становится артериальной.

Цель занятия:

1. Рассмотреть основные этапы дыхания.

2. Изучить механизм внешнего дыхания и газообмена в легких.

Ознакомиться с процессами внешнего дыхания.

Домашнее задание:

1. Перечислить основные функциональные блоки системы дыхания.

2. Изобразить контуры регуляции дыхания.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Дыхание и его значение для организма. Строение легких.

2. Механизм вдоха и выдоха.

3. Значение верхних дыхательных путей.

4. Факторы, обусловливающие газообмен в легких.

5. Что такое пневмография.

6. Что такое вентиляция легких.

7. Из каких объемов воздуха состоит ЖЕЛ, их определение.

Практические работы:

1. Запись дыхательных движений грудной клетки (пневмография).

2. Определение экскурсии грудной клетки у человека.

3. Определение жизненной емкости легких (спирометрия).

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 221-224, 226-229.

2. А.А. Сысоев, И.П. Битюков, стр. 113-117.

3. Е.М. Федий, В.В. Науменко, стр. 93-96.

Работа № 1. Запись дыхательных движений грудной клетки (пневмография) в спокойном состоянии, после физической нагрузки.

Оборудование: пневмограф, кимограф.

Объект исследования: кролик, человек.

Ход работы.

Пневмограф укрепляют с помощью тесемок на грудной клетке кролика (можно человека). Присоединить пневмограф с помощью резиновых трубок к капсуле Марея и записать дыхательные движения на барабане кимографа:

1. при спокойном дыхании,

2. после физической нагрузки (бег, приседание),

3. после максимальной задержки дыхания на вдохе (в норме задержка дыхания на вдохе составляет до 60 секунд), на выдохе (составляет 40 секунд),

4. при чтении.

При анализе пневмограммы определить: частоту дыхания во всех исследуемых случаях за 1 минуту, продолжительность максимальной задержки дыхания.

Результат :

Вывод:

Работа № 2. Определение экскурсии грудной клетки у человека.

Экскурсией грудной клетки (подвижность) называется разница объемов в сантиметрах в момент наиболее глубокого выдоха и глубокого вдоха. При характеристике экскурсии следует иметь ввиду, что : 1) экскурсия меньше 5см. - плохая, 2) экскурсия равная 5-8 см. - удовлетворительная, 3) экскурсия равная 9-11 см. - хорошая.

Результат :

Вывод:

Работа № 3. Определение жизненной емкости легких (спирометрия).

Оборудование: спирометр (воздушный и водный), спиртовые тампоны.

Объект исследования: человек.

Ход работы.

Протирают мундштук дезинфицирующим раствором и подносят его ко рту. Делают максимальный глубокий вдох, а затем зажав нос, производят максимально глубокий выдох в спирометр - это будет жизненная емкость легких, она состоит из дыхательного, резервного объема вдоха и выдоха.

1) Определение дыхательного объема.

После спокойного вдоха делают спокойных выдох в спирометр и отмечают показатели спирометра. Повторить 3-5 раз и вычисляют среднее.

2) Определение резервного объема вдоха.

Подняв внутренний цилиндр спирометра, установить его на определенном уровне (например 3000 мл). Сделать спокойный вдох из атмосферы, затем, зажав нос, произвести максимальный вдох из спирометра. Разность показания шкалы спирометра до и после вдоха составляют резервный объем вдоха.

3) Определение резервного объема выдоха.

Испытуемый после спокойного выдоха производит максимальный выдох в спирометр - отмечают показание шкалы.

Результат :

Вывод:

Раздел: Физиология выделения

Занятие № 1.

Тема: Физиология выделения.

Последним этапом обмена веществ является выведение из организма продуктов диссимиляции. Выведение их из организма- обязательное условие жизни, иначе наступит самоотравление и гибель животного.

Выделительную функцию выполняют легкие, кожа с потовыми и сальными железами, пищеварительный тракт. Почки - это основные выделительные органы. Образуя и выделяя мочу, они удаляют из организма воду и растворенные в ней продукты обмена веществ, особенно белкового- мочевину, мочевую кислоту, аммиак, креатинин и др. Вместе с мочой из организма уходят излишки минеральных солей, а также инородные вещества, поступившее извне (лекарственные вещества, краски и др.). Этим самым почки регулируют водно-солевой обмен, поддерживают относительное постоянство осмотического давления крови, кислотно-щелочной баланс организма.

Функциональными единицами почек служат многочисленные нефроны, в них происходят основные процессы мочеобразования.

Мочу от сельскохозяйственных животных можно собирать в мочеприемнике непосредственно в денниках, стойлах, станках при очередном акте мочеиспускания. При необходимости получать мочу в определенный период времени прибегают к катетеризации животных. Хронические опыты проводятся обычно на животных с фистулами мочевого пузыря и мочеточников (И.П. Павлов, Л.А. Орбели).

Цель занятия:

1. Добиться четкого понимания места и роли выделительной системы и обеспечения гомеостаза организма, как открытой термодинамической системы.

2. Составить представление о полифункциональной роли почек.

3. Изучить механизмы диуретической деятельности почек.

4. Составить представление о механизмах регуляции выделительной системы организма.

Домашнее задание:

1. Нарисовать схему функциональной системы поддержания водно-солевого гомеостаза.

2. Описать механизм образования мочи.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Понятие о выделительной системе организма.

2. Диуретическая функция почки, механизмы и этапы формирования мочи.

3. Методы изучения функции почек.

4. Нервная и гуморальная регуляция мочеобразования.

5. Какая реакция мочи у моно- и полигастричных животных.

6. О чем свидетельствует повышенная содержание ацетоновых тел в моче.

7. Какое влияние на диурез оказывает введение в кровь изотонического раствора и мочевины.

Практические работы:

1. Определение сахара в моче.

2. Определение белка в моче.

3. Определение аммиака в моче.

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 250-255.

3. В.М. Федий, стр. 109-111.

4. А.А. Сысоев, стр. 135-141.

Работа № 1. Определение сахара в моче.

Оборудование: штатив с пробирками, бюретка для титрования, 0,1 н раствор NаОН, 1 % раствор фенолфталеина, формалин, концентрированная азотная кислота, реактив Гайнеса, спиртовка, химические стаканчики.

Объект исследования : моча животного.

Ход работы.

В пробирку налить 2-3 мл реактива Гайнеса и нагреть на спиртовке до кипения. Прибавить 8-10 капель исследуемой мочи и вновь нагреть до кипения. В присутствии сахара и в зависимости от его концентрации появляется красное, оранжевое или желтое окрашивание.

Результат :

Вывод:

Работа № 2. Определение белка в моче.

Оборудование : штатив с пробирками, концентрированная азотная кислота.

Объект исследования : моча животного.

Ход работы.

В пробирку наливают 2-3 мл концентрированной азотной кислоты, сверху наслаивают равный объем исследуемой мочи. В присутствии белка на границе между двумя жидкостями слои их не перемешивать образуется мутноватый белый слой- белковое кольцо. В случае же нормальной мочи на границе жидкостей появляется коричневое кольцо, в результате изменения мочевых пигментов под влиянием азотной кислоты. Проба с азотной кислотой способна обнаружить в моче даже весьма небольшое количество белка (до 0,033 %).

Результат :

Вывод:

Работа № 3. Определение аммиака в моче.

Оборудование : химические стаканчики, бюретка для титрования 0,1 норм. растовр NaOH, 1 % ратсвор фенолфталеина, формалин.

Объект исследования : моча животного.

Ход работы.

а) Нейтрализация формалина. К 5 мл формалина добавляют 1 каплю фенолфталеина и нейтрализуют 0,1 н раствором NаОН до слабо розового окрашивания (количество щелочи не учитывается).

б) Нейтрализация мочи. К 5 мл мочи добавляют 1 каплю 1% раствора фенолфталеина. И титруют 0,1н раствором NаОН до слабого розового окрашивания (количество щелочи не учитывается).

К нейтрализованной моче добавляю 5 мл нейтрального формалина (раствор становится бесцветным), титруют 0,1 н раствором NаОН до слабо розового окрашивания (количество щелочи учитывается).

1 мл 0,1 н раствора NаОН эквивалентен 1,7 мг аммиака.

Рассчитать количество аммиака в суточном диурезе у сельскохозяйственных животных.

Результат :

Вывод:

Раздел: Физиология сенсорных систем

Тема: Общие вопросы физиологии анализаторов. Зрительный,слуховой, кожный анализаторы.

Все живые организмы нуждаются в информации об окружающей среде как для поисков пищи и особей другого пола, так и при избежании разного рода опасности. Кроме того, они должны ориентироваться в пространстве и оценивать его важнейшее свойство. Эту возможность обеспечивают сенсорные системы (анализаторы).

Согласно учению И.П. Павлова анализатор состоит из рецептора, афферентных проводящих путей, соответствующих центральных образований, включая кору головного мозга.

Для восприятия раздражений, поступающих в ц.н.с. из внешней и внутренней среды, организм снабжен специальными аппаратами- рецепторами. Рецепторы обладают высокой возбудимостью и способностью воспринимать только определенный вид раздражений, связанных со специфической формой энергии - световой, звуковой, тепловой и т.д.

Кроме того, все раздражители подразделяются на адекватные и неадекватные. Адекватные раздражители - это те к которым рецептор обладает избирательной чувствительностью и его пороговая интенсивность значительно ниже по сравнению с неадекватными раздражителями.

Деятельность любой сенсорной системы начинается с восприятия рецепторами внешней для мозга физической и химической энергии, трансформации ее в нервные импульсы и передачи их в мозг через цепи нейронов.

Процесс передачи сенсорного сообщения сопровождается многократным преобразованием, перекодированием и завершается общим анализом и синтезом. После этого происходит выбор или разработка программы ответной реакции организма. Без информации, поступающей в мозг, не могут осуществляться простые рефлекторные акты вплоть до психической деятельности человека.

Цель занятия:

1. Сформировать представление об анализаторах, как системе восприятия и переработки информации.

2. Изучить общие закономерности деятельности рецепторных образований.

3. Участие анализаторных систем как афферентного звена безусловно- и условнорефлекторной регуляции.

Домашнее задание:

1. Схематически изобразить структуру зрительного анализатора с указанием локализации рецепторов, нейронов проводникового и коркового конца.

2. Нарисуйте путь аккомадационного и зрачкового рефлексов.

Практические работы:

1. Опыт Мариотта.

2. Определение полей зрения черно-белого и цветного.

3. Исследование костной и воздушной проводимости.

4. Определение порога тактильной чувствительности.

5. Наблюдение тактильной иллюзии.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Понятие об анализаторной системе, её строении.

2. Рецепторный отдел, классификация рецепторов.

3. Зрительный анализатор. Структура, значение.

4. Зрачковый и аккомадационный рефлексы, их значение.

5. Влияние фармакологических веществ на ширину зрачка.

6. Сущность и биологический смысл явления адаптации.

7. Слуховой анализатор. Структура, значение.

8. Физиологическое значение наружного и среднего уха.

9. Строение внутреннего уха.

10. Кожный анализатор. Структура, биологическое значение.

Литература:

1. И.П. Битюков, А.А. Сысоев, стр. 205-210, 210-212, 212-216.

2. Е.М. Федий, В.В. Науменко, стр. 160-166, 166-168, 168-172.

3. И.П. Битюков, В.Ф. Лысов и др., стр. 224-228, 228-230, 231.

Работа № 1. Опыт Мариотта и определение поля зрения.

Оборудование: таблицы, периметр Форстера.

Объект исследования : человек.

Ход работы:

В тетради рисуют таблицу, позволяющую обнаружить существование слепого пятна. Кружок диаметром 1,5 см., и крестик диаметром 0,5 см. Расстояние между ними должно составлять в 6-8 см. Закрыв левый глаз, испытуемый смотрит правым глазом на кружок медленно приближают рисунок к глазу. На расстоянии примерно 15-25 см изображение белого крестика исчезает, происходит это потому, что лучи от крестика падают на слепое пятно сетчатки, где нет ни палочек, ни колбочек. Лучи о кружка “В” при определенном расстоянии рисунка от глаза упадут на слепое пятно “ГД” и белый кружок перестанет быть видимым.

Периметр ставят против света. Испытуемого сажают спиной к свету и просят его поставить подбородок в выемку подставки штатива периметра. Если определяется поле зрения левого глаза, то подбородок ставиться на правую часть подставки. Высота подставки регулируется так, чтобы деревянный конец штатива пришелся к нижнему краю глазницы. Испытуемый фиксирует одним глазом белый кружок в центре дуги, а другой глаз закрывают рукой.

Устанавливают дугу в горизонтальное положение и начинают измерение.

Для этого двигают медленно белую марку по внутренней поверхности дуги от 90* к 0* и просят испытуемого указать тот момент, когда марка впервые видна неподвижно фиксированному глазу. Отмечают угол.

Провести несколько повторных наблюдений и на стандартном бланке-схеме поля зрения отметить точкой, соединить их между собой, получим поле зрения для исследуемого глаза.

Определить тем же способом поле зрения для другого глаза. Сравнить поля зрения друг с другом, выявить их совпадения, что имеет существенное значение в пространственном видении предметов.

Определив поля ахроматического зрения, перейти к определению полей для хроматического зрения (для зеленого, желтого, красного и синего цветов).

Результат : Полученные схемы поля зрения наклеить в тетрадь.

Вывод:

Работа № 2. Исследование костной и воздушной проводимости.

Оборудование: камертон, вата, спиртовые тампоны.

Объект исследования : человек.

Ход работы.

Звучащий камертон прикладываем основанием к голове по средней линии. Вследствие наличия костной проводимости испытуемый услышит при этом обоими ушами звук одинаковой силы. Положить в ухо ватный тампон и вновь приложить звучащий камертон к голове по средней линии. Звук, слышимый испытуемым, будит казаться более сильным со стороны тампонированного уха, так как тампонада уменьшает потерю звуковой энергии через наружный слуховой проход. Соединить уши двух испытуемых резиновой трубкой и приложить к голове одного из них звучащий камертон. Второй испытуемый так же услышит звук, так как звуковая энергия, рассеиваясь через наружный слуховой проход, будет воспринята его ухом благодаря воздушной передаче.

Результат :

Вывод:

Работа № 3. Определение порога тактильной чувствительности. Наблюдение тактильной иллюзии.

Оборудование: эстезиометр Вебера-Сивкинга или чертежный циркуль с несколькими затупленными концами, линейка, повязка на глаза, бусинки, волосяная кисточка, булавка, бумажный трафарет с квадратным отверстием в один квадратный сантиметр.

Объект исследования : человек.

Ход работы.

Рецепторами, воспринимающими прикосновение и давление, считаются осязательные тельца Мейснера, тельца Фатер-Пачини. В коже различных областей тела число тактильных рецепторов сильно варьирует. Они очень многочисленны в местах непокрытых волосами, в особенности на мякоти пальцев. Для исследования остроты осязания различных областей кожи служит циркуль Вебера.

Для определения остроты осязания отыскивают то минимальное расстояние, при котором прикосновение двух ножек вызывает еще два различных ощущения. При уменьшении этого расстояния ощущение сливается в одно.

Определяют пороги на кончиках пальцев, предплечье, плече, шее, на кончике языка, носа. При выполнение работ учитывают- ножки циркуля прикладывают одновременно, а не последовательно; давление на обе ножки должно быть равномерным; определение порога на одном и том же участке должно быть повторено 2-3 раза.

В конце опыта проводят концами циркуля, раздвинутыми на два сантиметра, вдоль внутренней поверхности всей руки от плеча к предплечью, ладони и до кончиков пальцев. При этом отмечают, что в начале возникает ощущение одного прикосновения, затем двух и по мере продвижения циркуля к концам пальцев постепенно увеличивается степень расхождения линий.

Перекрестив указательный и средний пальцы, их смежными частями прикасаются к горошине (бусинки). Возникает ощущение двух горошин. Это связанно с тем, что обращенные друг к другу поверхности пальцев могут обычно раздражаться только одним предметом, что и привело к образованию соответствующей временной связи.

Результат :

Вывод:

Раздел: Физиология высшей нервной деятельности.

Тема: Условно-рефлекторная деятельность мозга и основы высшей нервной деятельности.

И.П.Павлов показал, что в основе физиологической деятельности высшего отдела ЦНС - коры больших полушарий головного мозга - лежит тот же принцип нервной деятельности, который является общим для всех отделов ЦНС - рефлекторный.

Рефлексы коры головного мозга были названы условными рефлексами в отличие от другой категории рефлексов - рефлексов низшего порядка, безусловных.

Количество безусловных рефлексов ограничено и они могли бы обеспечить существование организма лишь при постоянстве окружающей (а также внутренней для организма) среды. А так как условия существования весьма сложны, изменчивы и многообразны, то приспособление организма к среде должно обеспечиваться при помощи другого рода реакций- реакций, которые позволили бы организму адекватно реагировать на все изменения окружающей среды. Это и осуществляется благодаря механизму временных связей - условных рефлексов.

Характерной особенностью этих рефлексов является то, что они образуются в течение индивидуальной жизни животного и не является постоянными, они могут исчезать и вновь появляться в зависимости от изменяющихся условий среды.

Временный характер условного рефлекса обеспечивается наличием процесса торможения, который наряду с процессом возбуждения определяет общую динамику корковой деятельности. Причиной возникновения условного торможения является не подкрепление условного сигнала безусловным раздражителем. Процесс торможения лежит также в основе второго важного механизма в работе коры мозга - механизма анализаторов. Сложность окружающей среды и многообразие действующих на организм раздражителей требует от животного различения (дифференцирования) разного рода сигналов, что также лежит в основе приспособления. Способность коры мозга к осуществлению анализа различной тонкости и сложности зависит от уровня ее развития у разных животных, а также от экологических факторов. Последние в значительной мере определяют степень совершенства в деятельности того или другого анализатора. Аналитическая деятельность коры головного мозга находится в неразрывной связи с синтетической, причем в соответствии с требованиями окружающей среды либо одна, либо другая могут приобретать решающее значение.

Детальное изучение условных рефлексов позволило вскрыть основные законы взаимодействия процессов возбуждения, определяющих приспособленную деятельность организма. Проявление различных сторон ВНД зависит от ряда свойств нервной системы, определенная совокупность которых характеризует тот или иной тип нервной системы.

Условный рефлекс вырабатывается на базе какого-либо безусловного рефлекса. При выработке условного рефлекса должно иметь место сочетания действия двух раздражителей: условного и безусловного. Условным раздражителем может быть любой агент, действующий на рецепторы животного (свет, звук, прикосновение и т.д.). Причем сила этого агента должна быть достаточной, чтобы вызвать отчетливую (но не чрезмерную) реакцию организму.

Применение раздражителей должно совпадать во времени, но начало действия индифферентного раздражителя должно предшествовать действию безусловного раздражителя. При выработке условного раздражителя должно быть отсутствие посторонних раздражителей, кроме того животное должно быть здоровое.

Цель занятия:

1. Изучить сравнительные характеристики условных и безусловных рефлексов.

2. Изучить правила выработки условных рефлексов.

3. Рассмотреть роль условно-рефлекторной деятельности как основы ВНД.

Домашнее задание:

1. Нарисовать в тетради рефлекторную дугу условного пищевого рефлекса.

2. Дать характеристику безусловным и условным рефлексам.

Вопросы для подготовки к занятию:

1. Что называется безусловным и условным рефлексом и каковы их основные различия?

2. Каковы условия образования, сохранения и угашения условных рефлексов.

3. Какие Вы знаете натуральные и искусственные условные рефлексы?

4. Значение биологической целесообразности осуществляемого рефлекторного акта.

5. Безусловное торможение, его формы и механизмы.

6. Биологическое значение угасательного торможения.

7. Закономерности развития и характеристика иррадиации и концентрации процессов возбуждения и торможения в коре головного мозга.

Практическая работа:

1. Выработка у крысы двигательно-оборонительного рефлекса.

Литература:

1. В.И. Георгиевский, стр. 314-328.

2. Н.Ф. Попов и др., стр. 223-244

3. А.А. Сысоев и др., стр. 198-204.

Работа № 1. Выработка двигательно-оборонительного рефлекса у крыс.

Цель работы: Ознакомиться с правилами выработки двигательно-оборонительного рефлекса у крыс.

Оборудование: камера условных рефлексов на 80-100 ом, ключ- рубильник перекидной, звонок или лампочка, секундомер, трансформатор.

Объект исследования: две крысы.

Ход работы.

Камера для мелких животных представляет собой две клетки, которые разделены поперечной перегородкой. Стенки клеток стеклянные. В полу прикреплены параллельно друг другу с промежутками в 5 мм алюминиевые или медные пластинки соединенные последовательно через реостат с источником постоянного тока. Животное, сидящее в камере, соединяет своим телом соседние пластинки и тем самым замыкает электрическую цепь. Источники условных раздражителей находятся в обеих камерах. Поставить ключ-рубильник в нейтральное положение. Поместить крыс в одну из клеток. Подобрать минимальную силу тока, при которой животное перебегает из одной клетки в другую. Приступить к выработке условного рефлекса. Для этого через 3-4 секунды после включения условного раздражителя (свет, звонок) замыкать цепь электрического тока в той клетке, где находятся крысы. После ряда сочетаний животное будет перебегать из одной клетки в другую при действии одного условного раздражителя. Промежуток между раздражителями должен быть не менее 2-3 минут. После каждой “пробежки” животного ключ - рубильник ставить в нейтральное положение.

Результат:

Вывод:

Раздел: ФИЗИОЛОГИЯ ЦЕНТРАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ.

Тема: Центральный аппарат регуляции функций.

Центральная нервная система осуществляет регуляцию и координацию всех органов и систем организма, а так же обеспечивает взаимосвязь организма как целого с окружающей средой. Основной принцип функционирования ЦНС рефлекторный. Рефлекс - это сдвиг текущей функции приспособительного характера, возникающий при действии раздражителя на адекватные рецепторы и протекающий с обязательным участием ЦНС.

Условия возникновения рефлекса.

Экзогенные:

- наличие раздражителя адекватного рецепторам

- обладающего определенными силовыми, скоростными, частотными, временными характеристиками.

Эндогенные:

- наличие морфофункционально целостного рефлекторного пути.

Морфологической основой рефлекса является рефлекторный путь.

СТРОЕНИЕ РЕФЛЕКТОРНОГО ПУТИ

отделы	функции отделов
рецептор	восприятие, трансформация, первичный анализ, кодирование информации, тонизирование н. ц.
афферентный путь	проведение информации, анализ (сепарация, борьба с “шумами”)
центральный аппарат регуляции (нервный центр)	анализ и синтез информации с формированием эфферентных команд координированного, интегрированного характера
эфферентный путь	проведение эфферентных команд энергетического и информационного характера
эффектор	сдвиг функции (результат) в соответствии с информацией и исходным состоянием эффектора
обратная связь	информация о результате для коррекции последующих команд в целях достижения конечного приспособительного результата

Изучение ЦНС проводится комплексно несколькими методическими приемами, среди которых важнейшими являются:

1) изучение условных и безусловных рефлексов животного;

2) разрушение или удаление различных отделов ЦНС хирургическим путем с последующим наблюдением за рефлекторной деятельностью животного;

3) раздражение изучаемого отдела ЦНС электрическим током или химическим веществом с оценкой воздействия по реакциям периферического органа;

4) исследованием биотоков различных участков мозга при разных условиях.

Цель занятия:

1. Сформировать представление о рефлексе как основном принципе и механизме деятельности ЦНС.

2. Проанализировать структуру рефлекторного пути и значение его компонентов.

Домашнее задание:

0. Перечислить физиологические свойства и функции нейрона.

1. Перечислить основные свойства нервных центров.

2. Нарисовать простейший рефлекторный путь, указать его составные элементы.

Вопросы для подготовки:

0. Нейрон как структурная и функциональная единица ЦНС.

1. Синапс. Строение. Механизм транссинаптической передачи.

2. Нервный центр. Физиологическое понятие о нервном центре.

3. Свойства и функции нервных центров.

4. Рефлекс. Понятие. Физиологическая роль элементов рефлекторного пути.

Практические работы:

1. Рецептивное поле рефлекса.

2. Анализ рефлекторного пути.

3. Зависимость времени рефлекса от силы раздражителя (по Тюрку).

4. Рефлексы спинного мозга сельскохозяйственных животных.

Работа N 1. Рецептивное поле рефлекса.

Участок тела, при раздражении которого возникает определенный рефлекс, называется рецептивным полем или релексогенной зоной данного рефлекса.

Оборудование: препаровальный набор, кюветка с марлевой салфеткой, раствор Рингера, штатив с лапкой и пробкой, полоски фильтровальной бумаги, 1 % раствор серной кислоты, химические стаканы на 250-300 мл., дощечка.

Объект исследования : лягушка.

Ход работы :

Спинальную лягушку укрепляют в штативе за нижнюю челюсть.

Фильтровальную бумажку смачивают 1% р-ром серной кислоты и прикладывают к задней поверхности бедра.

Отмывают лягушку. Фильтровальную бумажку смоченную в том же растворе прикладывают на брюшко между передними лапками. Фильтровальную бумажку смоченную 1 % р-ром серной кислоты прикладывают на спинку лягушки.

Результат:

Вывод:

Работа N 2. Анализ рефлекторного пути.

Оборудование: препаровольный набор, кюветка с салфеткой, дощечка, раствор Рингера, штатив с лапкой и пробкой, химические стаканы на 250-300 мл., 0,5 % раствор серной кислоты.

Объект исследования : лягушка.

Ход работы.

а) Спинальную лягушку укрепляют в штативе за нижнюю челюсть. После исчезновения спинального шока, погружают заднюю лапку лягушки в глазную чашечку с 0,5 % раствором серной кислоты. Убеждаемся в наличии рефлекса. Отмываем лягушку, просушиваем. Затем делаем круговой разрез кожи вокруг коленного сустава, снимают кожу чулоком и погружают эту лапку в глазную чашечку с 0,5 % раствором серной кислоты.

Результат:

б) На другой лапке ножницами делают разрез кожи вдоль задней поверхности бедра, раздвигают мышцы бедра и осторожно препарируют седалищный нерв, подводят под него лигатуру, нерв перетягивают. Через 3-4 минуты погружают эту лапку в глазную чашечку с 0,5 % раствором серной кислоты.

Результат:

Вывод: Морфологической основой рефлекса является рефлекторный путь. При нарушении анатомической или физиологической целостности любого звена рефлекторного пути рефлекс исчезает.

Работа N 3. Зависимость времени рефлекса от силы раздражителя.

Время рефлекса - время от начала действия раздражителя на рецептор до появления ответной реакции эффектора. Это время для:

- трансформации энергии раздражителя в потенциал действия в рецепторе;

- проведения возбуждения по афферентным волокнам;

- передачи ПД через центральные синапсы;

- прохождения возбуждения по эфферентным волокнам;

- передачи ПД к эффектору через синапс (активация эффектора).

Центральное время рефлекса - время проведения возбуждения в центральной нервной системе (время передачи ПД через центральные синапсы).

ФАКТОРЫ ВЛИЯЮЩИЕ НА ВРЕМЯ РЕФЛЕКСА

Экзогенные:

- сила раздражителя

- скорость наростания силы раздражителя

- время действующего раздражителя

Эндогенные:

- возбудимость каждого отдела рефлекторного пути

- количество синапсов в рефлекторном пути

- время синаптической передачи

Два последних эндогенных фактора влияют на центральное время рефлекса.

Оборудование: препаровальный набор, кюветка с марлевой салфеткой, раствор Рингера, штатив с лапкой и пробкой, полоски фильтровальной бумаги, 0,1; 0,3; 0,5; 1 % растворы серной кислоты, глазные чашечки, химические стаканы на 250-300 мл., дощечка.

Объект исследования : лягушка.

Ход работы:

Спинальную лягушку укрепляют в штативе за нижнюю челюсть. Опускают заднюю лапку лягушки в глазную чашечку с 0,1 % раствором серной кислоты и отмечают время сгибательного рефлекса. Лягушку отмывают водой, просушивают. Повторяют опыт три раза с интервалом в 1,5-2 мин.. Провести определение времени рефлекса при погружении лапки в 0,3 % и 0,5 %, 1 % растворы серной кислоты. Результаты исследования занести в таблицу.

Концентрация серной кислоты	время рефлекса
				средние данные
0,1 %
0,3 %
0,5 %
1 %

Вывод: Сила раздражителя обратно пропорциональна времени рефлекса.

Работа N 4.

Рефлексы спинного мозга сельскохозяйственных животных.

Для оценки функционального состояния центральной нервной системы и двигательного аппарата у сельскохозяйственных животных проводят исследования кожных и двигательных рефлексов. Исследование рефлексов лучше проводить на лошадях. Подходят к животному с левой стороны, соблюдая меры предосторожности.

1. Корниальный или роговичный рефлекс. Тонким кусочком ватки дотрагиваются до роговицы наблюдая, мигает животное или смыкает веки.

2. Рефлекс холки. Слегка прикасаются к коже холки и наблюдают, происходит ли сокращение подкожной мышцы.

3. Рефлекс спины. Надавливают пальцами на область поясницы или пощипывают кожу по ходу сагиттальной линии позвоночника. Отмечают прогибается ли спина.

4. Брюшные рефлексы. Рукояткой перкуссионного молоточка производят штриховые раздражения кожи брюшной стенки. Наблюдают, сокращаются ли брюшные мышцы.

5. Рефлекс хвоста. Прикосновение к коже внутренней поверхности хвоста вызывает резкое подтягивание хвоста к промежности.

6. Анальный рефлекс. Прикасаются перкуссионным молоточком к коже в области ануса, отмечают сокращается или нет наружный анальный сфинктер.

7. Коленный рефлекс. У животного слегка приподнимают конечность, добиваясь расслабления мышц. Слегка ударяют перкуссионным молоточком несколько ниже коленной чашечки, по прямой ее связке. Наблюдают происходят ли разгибательные движения коленного сустава в ответ на постукивание молоточком.

8. Ахиллов рефлекс. Чтобы вызвать рефлекс, поднимают конечность и удерживают ее в слегка в отведенном кзади положении (как при ковке), добиваясь расслабления мышц. Затем перкуссионным молоточком наносят короткий удар по ахиллову сухожилию на 10 - 15 см выше пяточного бугра. При этом скакательный сустав должен разгибаться, а путовый и венечный суставы сгибаться.

Результат:

Наименование рефлекса	Способ обнаружения и рецептивное поле	Характер рефлекторной реакции	Уровень рефлекторной дуги
Кожные рефлексы, рефлекс холки
Брюшной рефлекс
Рефлекс хвоста
Анальный рефлекс
Сухожильный рефлекс Коленный рефлекс
Ахиллов рефлекс
Вегетативные рефлексы Глазо-сердечный рефлекс
Губо-ушно-сердечный рефлекс

Вывод:

Содержание:

Возбудимые ткани...................................................

Кровообращение.....................................................

Пищеварение...........................................................

Кровь.........................................................................

Дыхание....................................................................

Выделение.................................................................

Сенсорные системы.................................................

Центральная нервная система...............................

Высшая нервная деятельность................................