![](/user_photo/2706_HbeT2.jpg)
- •Курсовая работа
- •Реферат
- •Содержание
- •Введение
- •1 Основная часть
- •Биоповреждения материалов и изделий и их вид
- •1.1.1 Виды бактериальных биоповреждений и их характеристика
- •1.1.2 Факторы, влияющие на биоповреждения объектов
- •1.1.3 Механизмы бактериальных биоповреждений
- •Характеристика микроорганизмов-декструкторов
- •1.2.1 Хемолитотрофные микроорганизмы (тионовые, нитрифицирующие, железобактерии)
- •1.2.2 Гетеротрофные бактерии (протеолитические, липолитические, гликолитические)
- •1.2.3 Метаногенные бактерии и их характеристика
- •1.3 Методы обнаружения бактерий и идентификации микроорганизмов
- •1.3.1 Методы обнаружения бактерий и определения их численности
- •1.3.2 Методы-выделения микроорганизмов-деструкторов
- •1.3.3 Методы определения активности микроорганизмов и продуктов их метаболизма
- •1.4 Способы защиты материалов и изделий от биоповреждений м/о
- •1.4.1 Использование защитных покрытий
- •1.4.2 Полимерные материалы с антимикробными свойствами
- •1.5 Методы оценки биостойкости материалов и защитных покрытий
- •1.5.1 Почвенный метод
- •1.5.2 Метод агаровых сеток
- •1.5.3 Метод агаровых блоков
- •1.5.4 Методы оценки адаптации бактерий к антимикробным веществам
- •2 Экспериментальная часть
- •2.1 Материалы и оборудование
- •2.2 Микроорганизмы и питательные среды
- •2.2.1Питательные среды для культивирования грибов
- •2.2.2 Выделение чистых культур бактерий
- •2.3 Методы анализа
- •2.3.1 Определение общего количества бактерий методом культивирования
- •2.3.2 Построение калибровочных зависимостей микроорганизмов по спектру мутности
- •2.3.3 Анализ физиологической активности бактерий редуктазным методом
- •2.3.4 Метод определения эффективных концентраций биоцидов
- •2.3.5 Оценка защитного действия биоцидных веществ методом «агаровой сетки» и «агаровых блоков»
- •2.3.6 Оценка защитного действия биоцидных веществ микрокалориметричеким методом
- •2.4 Результаты исследований и их обсуждение
- •2.4.1 Оценки биостойкости материалов по гост 9.048
- •2.4.2 Анализ биостойкости материалов по методу «агаровой сетки» и агаровых блоков
- •2.4.3 Характеристика биостойкости материалов микрокалориметрическим методом
- •Заключение
- •Используемая литература
2 Экспериментальная часть
2.1 Материалы и оборудование
Для осуществления экспериментальных исследований были использованы:
Стерильная посуда: чашки Петри, пробирки, пипетки.
Лабораторное оборудование: спиртовка, штатив для пробирок, термостат, микроскоп, микрокалориметр МКМ-Ц, водяная баня, стерильные бумажные фильтры, микробиологические шпатели, спички.
Испытуемые материалы: металлическая пластинка, пленкообразующие вещества, молоко 3,2 % жирности, кондитерские изделия (шоколад, конфеты, пряники).
Химические вещества: стерильная вода, спирт, метиленовый синий, антисептические вещества.
Культуры бактерий Bacillus subtilis и грибов Aspergillus niger.
Питательные среды по 2.2.1.
2.2 Микроорганизмы и питательные среды
2.2.1Питательные среды для культивирования грибов
При составлении питательных сред для микроорганизмов необходимо учитывать их потребность в элементах питания. По составу питательные среды подразделяются на две группы: естественные (натуральные) и синтетические.
Естественными обычно называют среды, которые состоят из продуктов животного или растительного происхождения, имеющих сложный неопределенный химический состав.
На естественных средах хорошо развиваются многие микроорганизмы, так как в этих средах имеются, обычно, все компоненты, необходимые для роста и развития. Однако среды с неопределенным составом малопригодны для изучения физиологии обмена веществ микроорганизмов, поскольку они не позволяют учесть потребление ряда компонентов среды, а с другой стороны, выяснить, какие вещества образуются по ходу развития микроорганизмов. Это связано с тем, что состав естественных сред очень сложен; кроме того, он не является постоянным, так как существенно колеблется в зависимости от сырья и способа приготовления сред. Это заметно влияет на рост микроорганизмов. Естественные среды неопределенного состава используются главным образом для поддержания культур микроорганизмов, накопления их биомассы и для диагностических целей.
Для грибов, наиболее широко используют полноценные среды, приготовленные на основе солодового сусла. В состав сусла входят глюкоза, фруктоза, сахароза, мальтоза, мальтотриоза, небольшое количество пентоз – арабиноза, ксилоза, рибоза. Эти вещества и являются основными источниками углерода и энергии для грибов. В сусле имеются также аминокислоты, витамины и минеральные вещества. Для культивирования грибов в питательных средах обычно устанавливают рН 5–6, поскольку грибы в большинстве своем являются ацидофильными микроорганизмами.
Синтетические среды − это такие среды, в состав которых входят только определенные, химически чистые соединения, взятые в точно указанных концентрациях. Синтетические среды следует готовить на дистиллированной воде. Для разработки синтетических сред, обеспечивающих нормальный рост изучаемого микроорганизма или максимальный биосинтез какого-либо продукта его жизнедеятельности, необходимо знать особенности обмена веществ данного организма и его потребности в источниках питания. В настоящее время в распоряжении микробиологов имеется достаточное количество синтетических сред, не уступающих по своим качествам сложным средам неизвестного состава. Синтетические среды могут иметь относительно большой набор компонентов, но могут быть и довольно простыми по составу. Синтетические среды наиболее удобны для исследования обмена веществ микроорганизмов. Зная точный состав и количество входящих в среду компонентов, можно изучить их потребление и превращение в соответствующие продукты обмена.
Для курсового проекта были использованы следующие питательные среды:
- питательный агар (ПА) готовят из коммерческого препарата «Питательный агар для культивирования микроорганизмов сухой», который содержит панкреатический гидролизат кильки, хлорид натрия и агар-агар. Обычно для приготовления плотной среды требуется вносить в среду дополнительное количество агар-агар. Поскольку эта среда содержит агар-агар, который растворяется в воде только при температуре 98оС, навески порошка вносят во флаконы, заливают нужным объемом воды и стерилизуют автоклавированием при 1 ати 20-30 мин;
- сусло-агар (СА). Поскольку основой служит сусло-бульон с кислой среды, для получения плотных агаризованных сред берут небольшой избыток агар-агар в расчете на то, что в процессе стерилизации часть его подвергнется температурно-кислотному гидролизу. Во флаконы с сусло-бульоном вносят агар-агар до концентрации 2–2,5% для плотной среды и 1,0-1,5% для полужидкой. Стерилизуют при 0,5 ати 30 мин.
- питательный бульон (ПБ) готовят из коммерческого препарата «Питательный бульон для культивирования микроорганизмов сухой», который содержит панкреатический гидролизат кильки и рыбной муки и хлорид натрия. Растворяют навеску порошка в воде в пропорции, обозначенной на этикетке. Контролируют рН, разливают по флаконам и стерилизуют автоклавированием при 1 ати 20-30 мин;
- питательный агар для грибов (агар Чапека)
Для приготовления агара Чапека берут 20−30 г агар-агара, заливают его 1000 мл дистиллированной воды и вымачивают в течение 2 ч при комнатной температуре. Воду сливают и измеряют ее объем для определения количества воды, впитавшейся агаром. Затем агар промывают 2−3 раза дистиллированной водой.
Взвешивают остальные компоненты среды (сахароза − 30,0 г, азотнокислый натрий −3,0 г, фосфорнокислый однозамещенный калий −1,0 г, сернокислый магний − 0,5 г, хлористый калий − 0,5 г, сернокислое закисное железо−0,01 г) и растворяют в дистиллированной воде, которую берут в объеме, равном количеству воды, слитой при вымачивании агара. К раствору добавляют отмытый агар, после чего среду варят в автоклаве текучим паром в течение часа.
Полученную среду фильтруют, разливают по пробиркам или колбам и стерилизуют в автоклаве при температуре 110−112°С (под давлением 0,05 МПа по показанию манометра) в течение 20 мин.
- среда Сабуро
Для ее приготовлении к 100 см3 дистиллированной воды добавляют 1,8 г агара и оставляют на 30 мин для его набухания, затем добавляют 4 г мальтозы или глюкозы и 1 г пептона, нагревают до полного растворения (при наличии осадка фильтруют). Стерилизуют среду при температуре 115 0С в течение 15 минут.
Для повышения селективности, т.е. подавления развития посторонних микроорганизмов, в среду Сабуро добавляют растворы антибиотиков – пенициллина (50 ЕД/см3), левомицетина (10 мкг/см3). [6]
Кроме того, в курсовом проекте был использован физиологический раствор (ФР). Для его приготовления 8,5 г хлористого натрия растворяют в 1 л дистиллированной воды. Стерилизуют при 0,15 МПа в течение 20 минут [19].