VIII.V. Контроль качества дезинфекционно-стерилизационных меро­приятии.

Контроль качества дезинфекции приводится методом смывов с после­дующим посевом материала на кровяной, желточно-солевой агар и среду Эндо. Контролю подаежит 1% от одновременно обрабатываемых изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц. Оценивается наличие или отсутствие роста золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бак­терий группы кишечной палочки.

Контроль качества предстернлизационной очистки стоматологическо­го инструментария предусматривает:

1. Самоконтроль, который организует и контролирует старшая меди­цинская сестра центральной стеридизационной. В центральной стерилиза-ционной (ЦС) он проводится ежедневно, в отделениях - не реже одного раза в неделю. Кроме того, медицинский персонал, обрабатывающий инст­рументарий, должен самостоятельно контролировать каждую партию об­рабатываемых изделий перед стерилизацией.

2. Контроль качества предстерилизационной очистки, который прово­дят Центры Государственного санитарно-эпидемоологического надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал.

Контролю подлежит: в ЦС - 1% от каждого наименования изделия, в отделениях - 1% одновременно обрабатываемых изделий каждого наиме­нования, но не менее 3 единиц.

Контроль качества предстерилизационной очистки стоматологическо­го инструментария включает:

• Контроль качества предстерилизационной очистки изделий меди­цинского назначения на наличие крови. Его проводят путём постановки азопирамовой или амидопириновой пробы.

• Определение остаточных количеств щелочных компонентов мою­щего средства (только в случаях применения средств, рабочие растворы которых имеют рН более 8,5). Его проводят с помощью фенолфталеиновой пробы.

МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ ПРОБ.

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или 2-3 капли реактива с помощью пипетки наносят на изде­лие. Для контроля труднодоступных мест применяют турунды, смоченные в реактиве.

Азопирамовая проба. Для приготовления 1л исходного раствора азо-пирама смешивают в сухой чистой посуде 100 г амидопирина и 1,0-1.5 г анилина солянокислого, заливают 95% этиловым спиртом до объёма 1 л. Смесь тщательно перемешивают. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4°С (в холодильнике) до 2-х ме-

сяцев: в темноте при комнатной температуре (+18° - +23° С) - не более 1 месяца.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объёмные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 минут. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре.

Интерпретация результатов азопирамовой пробы. При постановке азопирамовой пробы в присутствии следов крови немедленно или позднее. чем через 1 минуту, появляется фиолетовое окрашивание реактива перехо­дящее в течение нескольких секунд в розово-сиреневое или буроватое.

Амидопириновая проба. Непосредственно перед постановкой пробы смешивают равные объёмные количества:

• 5% спиртового раствора амидопирина;

• 30 % раствора уксусной кислоты;

• 3% раствора перекиси водорода.

5% р-р амидопирина, приготовленный на 95% этиловом спирте, может храниться во флаконе с притёртой пробкой в холодильнике в течение 1 ме­сяца. 30% р-р уксусной кислоты и 3% р-р перекиси водорода готовят на дистиллированной воде.

Интерпретация результатов амидопириновой пробы. При постановке амидопириновой пробы о наличии на изделиях остаточных количеств кро­ви свидетельствует немедленное или позже, чем через 1 минуту, появление сине-зелёного окрашивания реактива. Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 минуту, не учитывается.

Фенолфталеиновая проба. В качестве реактива при постановке про­бы используют 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Он может хранить­ся в холодильнике во флаконе с притёртой пробкой в течение 1 месяца.

Интерпретация результатов фенолфталеиновой пробы. Появление при постановке пробы розового окрашивания реактива свидетельствует о на­личии на изделии остаточных количеств щелочных компонентов моющего раствора.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю партию контролируемых изделий, из которой проводилась выборка для контроля, подвергают повторной обработке до получения отрица­тельных результатов (при положительных азопирамовой и амидопи­риновой пробах - предстерилизационной очистке, при положительной фенолфталеиновой пробе - повторному промыванию водой).

94

95

Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров режи­мов стерилизации и оценку её эффективности. Контроль работы стерили­заторов осуществляют с помощью физического, химического и биологиче­ского (бактериологического) методов.

Физический метод предусматривает регистрацию температуры и дав­ления в стерилизационной камере, а также времени проведения стерилиза­ции.

Химический метод контроля предназначен для оперативного отслежи­вания одного или нескольких параметров работы паровых, воздушных и газовых стерилизаторов с помощью химических тестов или термохимиче­ских индикаторов, которые вместе со стерилизуемыми инструментами и материалом помещаются в рабочую камеру стерилизатора.

Химический тест - это тонкостенная стеклянная трубка диаметром 4-5 мм, длиной 30-40 мм с запаянными концами. Внутри неё находится опре­делённое вещество, изменяющее своё агрегатное состояние и цвет при достижении определённой температуры.

Термохимический индикатор представляет собой полоску бумаги, на которую нанесена термоиндикаторная краска. По окончании стерилизации визуально определяют изменение цвета термохимического индикатора и сравнивают с эталоном для данной партии индикаторов. Следует иметь в виду, что индикаторные ленты являются лишь индикаторами процесса и изменяют цвет при достижении необходимых параметров уже через 2-10 минут. Поэтому изменение цвета индикаторной полоски не является сви­детельством стерильности изделий, находящихся в упаковке. Оно лишь подтверждает то, что режим стерилизации был достигнут. Кроме этого, необходимо контролировать время стерилизационной выдержки.

Термохимические индикаторы или тесты размещают в рабочих (кон­трольных) точках при каждой закладке инструментов и материалов в сте­рилизаторе. Схема расположения контрольных точек зависит от вида и конструкции стерилизатора, они должны располагаться на всех уровнях сухожаровых шкафов и автоклавов.

После проведения цикла стерилизации индикаторные ленты вклеива­ют в соответствующую графу «Журнала учёта работы стерилизаторов».

Биологический (бактериологический) контроль работы стерилизаци­онной аппаратуры осуществляют с помощью бнотестов, оценивая гибель спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест-культуры на носителе (или в нём), по­мещённом в упаковку, которая предназначена для сохранения целостности носителя со спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации. В качестве носителей используют флаконы из-под инсули­на, чашечки из алюминиевой фольги (для паровых и воздушных стерили­заторов), а также диски из фильтровальной бумаги (для воздушных стери­лизаторов). Упакованные биотесты помещают в те же контрольные точки

стерилизацнонной камеры, что и средства физического и химического контроля.

Основание для заключения об эффективной работе стератизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бактериологиче­ских исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.

При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля в процессе стерилизационного цикла и после его окончания загрузку считают непростерилизованной.

Кроме того, контроль стерильности стоматологических инструментов проводят бактериологические лаборатории центров Госсанэпиднадзора 2 раза в год или бактериологические лаборатории лечебных учреждений 1 раз в месяц. Контролю на стерильность подлежат не менее 1% общего ко­личества простерилизованного инструментария, но не менее 3-5 единиц одного наименования. Отбор проб осуществляется путём:

- непосредственного погружения мелких инструментов в стерильную питательную среду;

взятие смывов с крупных инструментов стерильными марлевыми салфетками 5x5 см, увлажнённым физиологическим раствором, которые затем засевают на питательные среды (бульон Сабуро или тиогликолевую среду).

Инструменты считаются стерильными при отсутствии роста ве­гетативных и спорообразующих форм микроорганизмов.

96

97

ТЕСТОВЫЕ ЗАДАНИЯ

№ 1. Установите соответствие:

1. Антисептика А. Предупреждение проникновения микробов в

ткани при лечебных и диагностических меро­приятиях

2. Химиотерапия В. Прямое уничтожение возбудителей во

внутренней среде организма

3. Асептика С Ластичное уничтожение потенциатьных возбу -

дителей болезней на объектах внешней среды

4. Дезинфекция D.Удаление, уничтожение и подавление опасных

микроорганизмов в ранах, на коже и слизистых

A. По степени опасности заражения относится к критическим предметам

B. -II - II - к полукритическим

C. -II -II - к некритическим

1. Зеркало стоматологическое

2. Игла инъекционная

3. Гладилка

1. Кресло стоматологическое

2. Экскаватор

№ 3. Антимикробная активность виркона распространяется на весь спектр микроорганизмов, кроме

А. туберкулёзной палочки

В.кокков

C. ВИЧ

D. вирусов гепатита

E. грибов рода Candida

№ 4. Антимикробная активность этилового спирта распространяется на весь спектр микроорганизмов, кроме

A. кокков

B. грибов рода Candida

C. ВИЧ

Б. туберкулёзной палочки Е. вирусов гепатита

№ 5. К хлоргексидину менее всего чувствительны

A. грибы рода Candida

B. ВИЧ

C. вирусы гепатита D.кокки

Е. споры

1. Терминатор

2. Турбоклин

3. Гласперленовый стерилизатор

4. «Серьга»

5. «Ассистина»

A. Аппарат с нагретыми до t° 240° С стеклянными шариками

B. Аппарат, в тоннель которого подается под давлением дезинфицирующая жидкость

C. Ультразвуковая мойка

D. Воздушно-компрессорный пистолет для смазывания и дезинфекции наконечников

E. Аппарат для смазывания и дезинфекции наконечников

№ 7. Наиболее надежный способ стерилизацни цельнометаллических ин­струментов

A. воздушный (в сухо-жаровом шкафу)

B. паровой (автоклавирование)

C. химический (холодная стерилизацияО

D. в гласперленовом стерилизаторе

E. все способы одинаково надежны

JVs 8. Химический способ используется для стерилизации

A. наконечников

B. зондов

C. ватных валиков

D. боров

E. пинцетов

№ 9. Для некроэктомии дентина менее всего подходит

A. алмазный бор с красным кольцом

B. экскаватор

C. стальной бор

D. 6-ти насечковый карбидный бор

E. алмазный бор с синим кольцом

№ 10.

1. Бор с чёрным кольцом А. Для препарирования кариозной полости

2. Бор без цветного кольца В. Для финишной обработки пломбы

3. Бор с красным кольцом С. Для того и другого

4. Бор с жёлтым кольцом D. Ни для того, ни для другого

5. Бор с белым кольцом

98

99

6. К-файл

7. Н-файл

№11.

1. Гладилка А. Для осмотра

2. Экскаватор В. Для препарирования

3. Зеркало С. Для пломбирования

4. Зонд

5. Пинцет

№ 12. Для финишной обработки пломбы используют все инструменты, кроме

A. резиновых головок

B. силиконовых дисков

C. алмазных боров с жёлтым кольцом

D. алмазных боров с белым кольцом

E. алмазных боров без цветного кольца

№ 13.

1. Стальные боры А. Для низкоскоростного наконечника

2. Карбидные боры В. Для турбинного наконечника

3. Алмазные боры С. И для того, и для другого

4. Карборундовые головки D. Ни для того, ни для другого

5. Штрипсы

№ 14.

Название инструмента Символ

1. К-ример

2. К-файл _

3. Н-файл q ^

4. Лентуло р Щ

5. Рашпиль £ q.

№ 15, Для удаления содержимого корневого канала можно использовать все инструменты, кроме

A. пульпоэкстрактор

B. рашпиль

C. К-файл

D. Н-файл

E. спредер

№ 16.

1. Корневая игла А. Для прохождения корневого канала

2. К-ример В. Дда расширения и выравнивания корневого канала

3. К-флексоример С. и то и другое

D. Ни то, ни другое

Л» 17. Для расширения устьев корневых каналов менее всего подходит

A. Gates Glidden

B. Largo

C. Orifice Opener

D. Шаровидный бора малого размера

E. Н-файл

№ 18. Безопасный кончик (Ban-tip) имеют все инструменты, кроме

A. Нитифлекс

B. Патфайндер

C. Профайл

D. Джити ротари файл

E. Протейпер

№ 19. Из перечисленных эндодонтнческих инструментов наибольшей нусностью обладает

A. К-ример

B. К-файл

C. Нитифлекс-файл

D. Профайл

E. Н-файл

№ 20.

1. Каналонаполнитель

2, Спредер З.Плаггер

4, Н-файл

5. Хит-керриер

A. Для расширения канала

B. Дня внесения в канал силлера

C. Для разогревания гуттаперчи

D. Для конденсации гуттапечи

№ 21.

1. Перекись водорода 3%

2. «HPU-15»

3. «Скандонест»

4. «Эндосольв R»

5. Лидокаин 2%

A. Препарат для химического расширения корневого канала

B. Ирригант

C. Препарат для распломбирования корневого канала

D. Обезболивающий препарат

ко-

100

101

A. Гипохлорит натрия 3-5%

B. Перекись водорода 3%

C. Оба

D. Ни то. ни другое

A. Силикатный цемент

B. СИЦ

C. Оба

D. Ни то, ни другое

№ 22. Гвоздичное масло обладает всеми перечисленными свойствами.

кроме

A. гипосенсибилизирующего

B. раздражающего

C. антисептического

D. противовоспалительного

E. обезболивающего

№ 23.

1. Бактерицидное действие

2. Противовоспалительное действие

3. Кровоостанавливающее действие

4. Отбеливающее действие

5. Растворяет некротизированные ткани

№ 24. Для изолирующей прокладки может быть использован

A. Каласепт

B. Биодент

C. Цинкоксидэвгенольньй цемент

D. Поликарбоксилатный цемент

E. Кальцесил

№ 25. Из перечисленных цементов наиболее токсичен для пульпы

A. цинк-фосфатный

B. силикатный

C. силикофосфатный

D. поликарбокснлатный

E. стеклоиономерный

№26.

1. Содержит фтор

2. Высокая токсичность для пульпы

3. Хорошая адгезия к тканям зуба

4. Удовлетворительные эстетические свойства

5. Высокая механическая прочность

№ 27. Амальгама обладает всеми ниже перечисленными свойствами, кроме

A. высокая механическая прочность на сжатие

B. высокая механическая прочность на изгиб

C. высокая твёрдость

D. хорошая адгезия к тканям зуба

E. простота применения

X» 28. В качестве изолирующей прокладки под минеральный цемент может быть использован

A. Супрадент

B. Кальцидонт

C. Цинкоксидэвгенольный цемент

D. Д айкал

E. Реокап

.У» 29. К гибридным композитам относится

A. Evicrol

B. Concise

C. Silux Plus

D. Drafill

E. Призма

№ 30.

1. Ketac-endo А. Материал для пломбирования корневых каналов

на основе окиси цинка и эвгенола

2. Seal-apex В. -//-// - на основе эпоксидных смол

3. АН-26 С. СИЦ

4. Endometason D. Полимерный, содержащий гидроокись кальция

№ 31. Основной структурный компонент зубной бляшки

A. эпителиальные клетки

B. лейкоциты

C. макрофаги

D. микроэлементы

E. микроорганизмы

№ 32. Минеральным образованием является А.кутикула

B. зубной камень

C. пищевые остатки

D. зубная бляшка

E. пелликула

№ 33. ЭОД проводится для определения

A. электропроводности твердых тканей зуба

B. электровозбуднмости пульпы

C. рабочей длины зуба

D. количества заместительного дентина

E. слоя интактного дентина

102

103

№ 34. Рентгенологический метод исследования позволяет определить

A. наличие воспачения в пульпе зуба

B. степень деминерализации эмали

C. состояние тканей, окружающих зуб

D. жизнеспособность пульпы

E. количество третичного дентина

№ 35. Для метода витального окрашивания эмали по методике Л.А. Акса­мит используют

A. фуксин

B. нитрат серебра

C. эритрозин

D. метиленовый синий

E. йод-йоднстокалневый раствор

№ 36. Для диагностики кариеса эмали в фиссурах проводят

A. электроодонтометрию

B. измерение электропроводности эмали

C. калориметрический тест

D. определение кислотоустойчивости эмали

E. клиническую оценку скорости ремннерализации эмали

№ 37.

A. Начальный кариес

B. Пятнистая гипоплазия

C. Флюороз

1. Гладкие, блестящие белые пятна на вестибулярных поверхностях временных резцов, клыков и моляров

2. Множественные пигментированные пятна на эмали всех постоянных зубов

3. Меловидные пятна на эмали в пришеечной области резцов, обнаруженные

после снятия зубного налета

№ 38.

A. Клиновидный дефект

B. Средний кариес

C. Эрозия эмали

На вестибулярной поверхности в пришееч­ной области зубов 3.3,3.4,3.5 дефекты, переходящие эмалево-дентинную границу, образованные двумя сходящимися под уг­лом стенками, гладкими и безболезненны­ми при зондировании

На вестибулярной поверхности в пришееч­ной области зуба 4.4 дефект, переходящий эмалево-дентинную границу с шерохова-

тым и болезненным при зондировании дном 3. На вестибулярной поверхности в области экватора зубов 2.3, 2.4. 2.5 дефекты, пере­ходящие эмалево-дентинную границу, в виде блюдцеобразного углубления с глад­ким, болезненным при зондировании дном

№39.

1. Болезненное зондирование дна А. Глубокий кариес

2. Холодное вызывает болевой приступ В. Острый очаговый пульпит

3. Безболезненная перкуссия С. Оба

4. Вскрытая полость зуба D.Ни то. ни другое

5. Иррадиация боли

№40.

1. Бессимптомное течение А. Средний кариес

2. Отсутствие болевой реакции при В. Хронический периодонтит зондировании и на холодовой С. Оба

раздражитель D.Ни то ни другое

3. Изменения у апекса на R-грамме

4. ЭОД 10 мкА

5. Резко болезненная перкуссия

№41.«Этиотропная»профилактика кариеса включает

A. изменение численности и качественного i ос пжа микрофлоры зубной бляшки

B. устранение продуктов жизнедеятельностии микрофлоры

C. улучшение самоочищения зубов

D. проведение профессиональной гигиены

E. всё вышеперечисленное

№ 42. Какой метод применения фторидов рациональнее для профилактнки и лечения кариеса после окончательного созревания эмали?

A. фторирование воды

B. фторирование соли

C. фторирование молока

D. таблетированнын фторид натрия

E. местное применение фторидов

104

105

№ 43. Наибольшее поступление кальция в организм обеспечивают

A. рыба и морепродукты

B. молочные продукты

C. хлебные злаки

D. орехи

E. яйца

№ 44. В клинике чаще всего встречается пульпит

A. острый очаговый

B. острый диффузный

C. хронический фиброзный

D. хронический гангренозный

E. хрошгаескнй гипертрофический

№ 45. Пациент жалуется на боли от горячего, неприятный запах изо рта, тёмный цвет зуба. Наиболее вероятный диагноз

A. глубокий кариес

B. хронический фиброзный пульпит

C. хронический гангренозный пульпит

D. хронический периодонтит

E. острый гнойный пульпит

№ 46. Хронический гипертрофический пульпит первую очередь диффе­ренцируют с

A. хроническим фиброзным пульпитом

B. хроническим гангренозным пульпитом

C. хроническим периодонтитом

D. глубоким кариесом

E. хроническим гипертрофическим папиллитом

№ 47.

1. A. Хронический гипер — трофический пульпит

   B. Хронический гангренозный пульпит

   C. Хронический фиброзный пульпит

   D. Глубокий кариес

   E. Острый очаговый пульпит

   Быстропроходящая боль от холодного

2. Чувство распирания от горячего

3. Глубокая кариозная полость заполненная разросшейся мягкой тканью

4. Полость зуба вскрыта, зондирование

пульпы болезненно

5. Самопроизвольные ночные бати

№ 48.

1. Боли от холодного А. Острый диффузный пульпит

2. Острые боли при накусывании на зуб В. Острый верхушечный

периодонтит

3. Наличие глубокой кариозной полости С. Оба

3. Зондирование дна кариозной полости D. Ни то. ни другое болезненно

4. Деструктивные изменения в области верхушки корня на R-грамме

№ 49. Полное удаление пульпы после некротизации её мыпгьяко; пастой предполагает метод

A. витальной экстирпации

B. девитальной экстирпации

C. витальной ампутации

D. девитальной ампутации

E. биологический

№ 50. Наибольший процент осложнений в виде хронического периодонти­та в отдалённые сроки дает метод

A. витальной экстирпации

B. девитальной экстирпации

C. витальной ампутации

D. девитальной ампутации

E. биологический

106

107

ОТВЕТЫ РТА. ТЕСТЫ

1.		ID. 2В. ЗА. 4С	26		1С.2А, 3B.4C.5D
2,		1В. 2А. ЗВ, 4С. 5В	27		D
3.		А	28		С
4.		D	29		Е
5.		Е	30		1С. 2D, ЗВ, 4А
6.		1В. 2D. ЗА. 4С. 5Е	31		Е
7.		В	32		В
8.		А	33		В
9.		А	34		С
10		1А. 2А. ЗС. 4В, 5В	35		D
11		1С. 2В, ЗА, 4А. 5А	36		В
12		Е	37		IB, 2С. ЗА
13		1А. 2С. ЗС. 4А, 5D	38		1А. 2В, ЗС
14		1С, 2В.ЗА,4Е, 5D	39		1С, 2В. ЗС, 4D, 5В
15		Е	40		1С, 2С, ЗВ, 4А. 5D
16		ID, 2А, ЗА, 4С, 5В	41		Е
17		Е	42		Е
18		В	43		В
19		D	44		С
20		1В, 2D. 3D, 4А, 5С	45		С
21		1В, 2А, 3D, 4С, 5D	46		Е
22		А	47		ID. 2В. ЗА. 4С. 5Е
23		1С, 2D, ЗВ,4С, 5А	48		1А, 2В, ЗС, 4А. 5D
24		D	49		В
25		В	50		D

ЛИТЕРАТУРА:

1. Вагнер. В.Д. Пособие по стоматологии / В.Д. Вагнер - М.: Мед. кни­га; Н.Новгород: Изд-во НГМА. 2000. - 264 с.

2. Гажва, СИ. Санитарно-эпидемический режим в учреждениях стома­тологического профиля / СИ. Гажва, ГА. Черняева. Ю.А. Щабель-скнй -Н. Новгород: Изд-во НГМА, 2000. - 111 с.

3. Колотков, А.П. Рентгенодиагностика в стоматологии: учебное посо­бие / А.П. Колотков. Е.Ф. Вайман - Кемерово. 2001. - 70 с.

4. Методические рекомендации «По организации санитарно-гигиенического и противоэпидемического режимов в амбулаторно-поликлинических учреждениях стоматологического профиля». - Ке­мерово. 2001. - 36 с.

5. Николаев. А.И. Санитарно-гигиенический режим в терапевтических стоматологических кабинетах (отделениях) / А.И. Николаев, Л.М. Цепов - М.: МЕДпресс-информ. 2002. - 80 с.

6. Николшпин, А.К. Современная эндодонтня практического врача / А.К. Николшпин - Полтава. 1997. - 112 с.

7. Орехова. Л.Ю., Кудрявцева Т.В. Стоматологическая деятельность / Л.Ю. Орехова, Т.В. Кудрявцева - М.: Медицинская книга, ННовгород: Изд-во НГМА. 2003. - 192 с.

8. Панневиг, Рольф. Помощница врача-стоматолога. Том 1 Основные знания / Панневиг Рольф - М.: Изд-во «Квинтэссенция», 1997. - 128 с.

9. Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений: Санитарные правила и нормы. - М.: Федеральный центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 1999. -20с.

10. Протокол ведения больных. Болезни периапикальных тканей. /Э.М Кузьмина. Ю.М. Максимовский, А.Ю. Малый и др. // М: Медицин­ская книга. - 2011.-116 с.

11. Протокол ведения больных. Болезни пульпы зуба. /Э.М Кузьмина, Ю.М. Максимовский, А.Ю. Малый и др. // М: Медицинская книга. -2011.-104 с.

12. Протокол ведения больных. Кариес зубов. /Э.М Кузьмина, Ю.М. Максимовский. А.Ю. Малый и др. // М: Медицинская книга. - 2011. -76 с.

13.Савельева, СВ. Дезинфекция, предстерилизационная очистка, сте­рилизация и меры защиты на стоматологическом приёме/СВ. Са­вельева, В.Д. Вагнер. В.М. Семенюк и др. - Омск, 1999. - 31 с.

Н.Садовский В.В. Стоматология «в 4 руки». Том I. - М.: ОАО «Стома­тология». 1999. -104 с.

15.Сливинская С.Ф., Веселов А.А.. Шатошина О.В., Щербо А.П. Мето­дические рекомендации по дезинфекции, очистке и стерилизации из-

10S

109

д елий медицинского назначения, проведению текущей дезинфекции и контролю за их качеством в медицинских учреждениях стоматоло­гического профиля. - СПб.: ООО «МЕДИ издательство». 2004. -32 с.

16. Терапевтическая стоматология. Учебник / Под ред. Е.В. Боровского. Ю.М. Макашовского - М.: Медицина, 2001. - 736 с.

17. Терапевтическая стоматология: национальное руководство / под. ред. Л.А. Дмитриевой, Ю.М. Максимовского. - М,: ГЭОТАР-Медиа, 2009. - 912 с.

18. Трезубов В.Н.. Мишнёв Л.М., Соловьёв М.М.. Краснослободцева О.А. Стоматологический кабинет: оборудование, материалы, инст­рументы: Учебное пособие для медицинских вузов / Под ред. Проф. В.Н. Трезубова. - СПб.: СпецЛит. 2002. - 142 с.

110