- •Биологическая химия и молекулярная биология Руководство к лабораторным работам
- •Содержание
- •Рабочая программа курса «биохимия и молекулярная биология»
- •Техника безопасности при работе в биохимической лаборатории
- •Часть 1 Раздел 1 Углеводы
- •Открытие углеводов в растворах
- •2. Восстанавливающие свойства углеводов
- •1.3. Полисахариды Работа 6. Кислотный гидролиз крахмала
- •Работа 7. Выделение гликогена из печени
- •Раздел 2. Липиды
- •Работа 8. Определение кислотного числа
- •Работа 9. Определение числа омыления
- •Работа 11. Качественные реакции на обнаружение витамина е
- •Работа 12. Качественные реакции на ацетон и ацетоуксусную кислоту
- •Раздел 3 Белки
- •3.1. Химическая природа белка (цветные реакции)
- •3. 2. Физико-химические свойства белка
- •3.2.1. Реакции осаждения белков
- •3.2.2. Растворимость белков
- •Высаливание белков
- •3.2.4. Определение изоэлектрической точки белков
- •3. 3. Гидролиз белков
- •Качественные реакции на открытие составных частей сложных белков
- •Раздел 4 Нуклеотиды
- •Работа 29. Исследование состава нуклеиновых кислот
- •Раздел 5. Витамины
- •Работа 30. Количественное определение аскорбиновой кислоты
- •Работа 31. Количественное определение витамина р в чае
- •Контрольные вопросы
- •Раздел 6. Ферменты
- •6.1. Влияние температуры на скорость ферментативной реакции
- •Работа 32. Влияние температуры на активность амилазы слюны
- •Влияние температуры на активность амилазы слюны
- •Влияние температуры на активность холинэстерзы
- •6.2. Влияние рН на скорость ферментативных реакций
- •Работа 34. Влияние рН на активность амилазы слюны
- •Влияние рН на активность амилазы слюны
- •6.3. Специфичность действия ферментов
- •Работа 35. Специфичность действия α-амилазы слюны
- •Работа 36. Специфичность действия сахаразы
- •6.4. Открытие ферментов различных классов
- •Работа 37. Идентификация оксидоредуктаз в биологическом материале
- •Буферные растворы
- •Фосфатный буфер (0,1м), рН 5,8-8,0
- •Бикарбонатный буфер (0,1 м), рН 9,2-10,8
- •Трис-буфер (0,05 м), рН 7,2-9,1
- •Раздел 2. Обмен углеводов
- •Работа 43. Количественное определение углеводов
- •Определение содержания глюкозы в сыворотке крови энзиматическим методом
- •Работа 44. Влияние инсулина на содержание глюкозы в крови
- •Работа 45. Влияние адреналина на содержание глюкозы в крови
- •Работа 46. Определение гликолитической активности эритроцитов
- •Работа 47. Количественное определение содержания гликогена в печени и скелетных мышцах крысы
- •Раздел 3. Биоэнергетика
- •Работа 48. Сравнительное изучение активности сукцинатдегидрогеназы в различных тканях крыс и ее конкурентное торможение
- •Работа 49. Количественное определение макроэргических соединений в мышцах (атр и креатинфосфата)
- •Контрольные вопросы
- •Раздел 4. Обмен липидов Работа 50. Исследование действия липазы поджелудочной железы.
- •Работа 51. Определение общих липидов в сыворотке крови
- •Работа 52. Количественное определение липопротеинов низкой плотности (лпнп) в сыворотке крови
- •Работа 53. Определение общего холестерина в сыворотке крови, основанное на реакции Либермана-Бурхарда (метод Илька)
- •Работа 54. Определение общих фосфолипидов в плазме крови
- •Раздел 5. Обмен нуклеиновых кислот
- •Работа 55. Спектрофотометрическое определение суммарного содержания нуклеиновых кислот
- •Работа 56. Определение температуры «плавления» водородных связей
- •Работа 57. Определение содержания мочевой кислоты
- •Работа 58. Определение активности рибонуклеазы
- •Раздел 6. Обмен белков и аминокислот Работа 59. Количественное определение белка
- •1. Биуретовый метод
- •2. Микробиуретовый метод
- •3. Метод Брэдфорд
- •4. Спектрофотометричекий метод
- •Работа 60. Определение концентрации мочевины в сыворотке крови и моче
- •Работа 61. Определение активности аргиназы печени
- •Работа 62. Количественное определение креатинина в моче и сыворотке крови
- •Работа 63. Определение активности аланинаминотрасферазы и аспартатаминотрасферазы
- •Работа 64. Переаминирование аминокислот
- •Работа 65. Оценка биосинтетической функции ткани по соотношению рнк и днк к белку
Работа 58. Определение активности рибонуклеазы
Нуклеиновые кислоты вовлекаются в деструктивный обмен при участии разнообразных нуклеаз. Существует несколько методов выявления их активности . Чаще всего пользуются измерением экстинкции при 260 нм до и после ферментативного гидролиза нуклеиновых кислот, реже - измерением содержания фосфора или пентоз. Активность нуклеаз определяют также по изменению вязкости раствора ДНК в процессе гидролиза и по величине гиперхромного эффекта.
Данный метод основан на том, что под влиянием рибонуклеазы (КФ 2.7.7.16) происходит расщепление фосфодиэфирных связей в молекуле РНК с образованием свободных кислых групп, которые обнаруживаются титрованием.
Исследуемый материал: разбавленная в 10 раз моча; кровь; 5%-ные водные гомогенаты тканей в количестве 0,5 мл.
Оборудование: холодильник, бюретка, пипетки на 1, 5, 10 мл, колбы конические на 50 мл.
Реактивы: раствор дрожжевой РНК (1%-ный) в ацетате натрия (0,1 М), NaOH (0,02 н.), фенолфталеин (0,5 %-ный спиртовой раствор).
ХОД РАБОТЫ. В две конические колбы вносят по 10 мл 1%-ного раствора дрожжевой РНК в 0,1 М растворе ацетата натрия. В одну колбу добавляют 0,2 мл 0,1%-ного раствора РНКазы, в другую – 0,2 мл воды. Содержимое колб перемешивают и смесь оставляют при 5С на 1 ч. По истечении указанного времени из содержимого каждой колбы отбирают по 0,5 мл, добавляют по 2 капли фенолфталеина и титруют 0,02 н раствором гидроксида натрия до появления розового окрашивания. Оставшуюся смесь в колбах оставляют еще на 1 ч при 5С. Затем из опыта и контроля берут пробы по 5 мл и оттитровывают их. Об активности РНКазы судят по разнице между количеством фосфатных групп в опытной и в контрольной пробах.
Если вместо раствора РНКазы используется слюна, кровь, моча или водные гомогенаты тканей, то вместо воды в контрольную пробу добавляют тот же объем биологической жидкости, что и в опыте, перемешивают, и немедленно фильтруют или центрифугируют и сразу же титруют 0,02 н раствором гидроксида натрия. Опытную пробу инкубируют 1-2 ч и обрабатывают затем подобным образом.
Контрольные вопросы
-
Биологические функции нуклеотидов и полинуклеотидов.
-
Строение нуклеотидов и полинуклеотидов.
-
Биосинтез пуриновых и пиримидиновых оснований.
-
Катаболизм пуриновых и пиримидиновых оснований.
-
Нарушение обмена пуриновых и пиримидиновых оснований.
Раздел 6. Обмен белков и аминокислот Работа 59. Количественное определение белка
Для количественного определения белков используют физические, химические и биологические методы.
Из физических методов простейшим является взвешивание чистого белка. Однако белки очень гигроскопичны, и полностью удалить из их состава воду очень трудно, поэтому этот способ применяют редко.
Наибольшее распространение из физических методов количественного определения белков получили три – рефрактометрический (по показателю преломления белковых растворов), спектрофотометрический (по поглощению в ультрафиолетовой области спектра) и полярографический (по кривым, показывающим зависимость между силой тока и напряжением, приложенным к системе, содержащей белок), пикнографический метод (по плотности белковых растворов).
Химические методы количественного определения белков разнообразны. Наиболее простой химический метод определения - количественное определение общего или белкового (после осаждения белка и отделения его от растворимых азотсодержащих веществ) азота.
Самым распространенным методом количественного определения белков является колориметрический метод. Он основан на измерении интенсивности цветных реакций, развивающихся при взаимодействии белков с тем или иным специфическим реагентом. Чтобы рассчитать концентрацию белка, строят калибровочный график.
Биологические методы количественного определения белков применимы лишь к белкам, обладающим ферментативной и гормональной активностью. Измеряя степень биологической активности препарата, можно составить представление о содержании в нем белка, обладающего данной активностью. Этот метод не дает абсолютных результатов.