3 курс / 2 семестр / Методы изучения экологии животных и растений / metody_polev_ekol_issl_2014

информация о погоде помогает объяснить возникновение возможных аномальных гидрологических условий, вызвавших сукцессию биоценоза).

Вжурнале должно быть дано визуальное описание гидрологических параметров: скорости течения (по шкале: отсутствует, очень медленное, медленное, спокойное, не очень быстрое, очень быстрое); цвета, прозрачности воды (по шкале: прозрачная, слабо мутная, мутноватая, мутная, сильно мутная); характеристики взвеси с перечислением возможных ее видов (лессовидная, минеральные частицы глины, песка, иловые частицы, растительный детрит, дрифт водорослей перифитона, фитопланктон, бактериальная слизь); степени наполнения русла. Приведенные характеристики лучше перечислить в матрице журнала с тем, чтобы подчеркнуть те из них, которые наблюдаются, либо пометить их наличие знаком «+».

Помимо перечисленных описаний в журнале должно быть оставлено место для записи какой-либо неучтенной характеристики параметров. Следует обратить внимание на тип грунтов с перечислением возможных видов: обломки скал, валуны, камни, галька, крупнозернистый песок, обычный и мелкий песок, глина, наилок или ил (светло-серый, темно-серый, черный), известковый ил, растительный детрит, загрязняющие компоненты. Указать распределение по дну водоема типов грунтов. Отдельно описываются визуальные признаки загрязнения, санитарное состояние прилегающей территории. Специальные графы отводятся для описания основных контролируемых биоценозов водоема.

Информация о бентосе должна содержать сведения о субстрате, с которого отобрана проба, расстоянии от берега, глубине, вертикали отбора пробы, количестве «скребков» или выемок дночерпателя. За один скребок принимается некоторая условная единица облавливаемой площади, выраженная в расстоянии, которое скребок прошел в грунте. Удобно, к примеру, за один скребок принять прохождение режущей кромки 50 см в мягком грунте. Описание зообентоса содержит примечание, куда записываются наблюдения за жизнедеятельностью биоценоза (такие, как вылет насекомых, обилие пустых раковин моллюсков или экзувиев насекомых, несформированность биоценоза и др.).

Взаключение дается общая характеристика загрязненности створа по визуальным наблюдениям; оценивается степень количественного развития биоценозов, включая бентосный, по шкале: очень слабо, слабо, умеренно, хорошо, обильно; приводятся сведения о количестве отобранных проб – всего и по каждому показателю. В случае неясностей в описании той или иной характеристики, имеющей, по мнению наблюдателя, промежуточный характер, отмечаются две граничные характеристики или дается описание типа: слабо – умеренно, хорошо – обильно.

Каждая бентосная проба снабжается этикеткой, на которой указываются номер пробы, название водного объекта, пункта и створа наблюдений, дата отбора, глубина, характер субстрата, количество скребков или выемок дночерпателя. Этикетки можно писать на пергаменте твердым карандашом и поместить внутрь банки с пробой, либо под прокладку крышки.

150

Подготовка бентосной пробы к анализу включает в себя выборку организмов из грунта (разборку пробы) и их сортировку.

Разборку пробы желательно производить сразу же после ее отбора на берегу водоема, поскольку выборка из грунта живых организмов происходит в среднем в 2–3 раза быстрее, чем фиксированных. Благодаря активным движениям даже такие мелкие объекты, как черви наидиды, личинки мокрецов, ранние возрастные стадии насекомых, хорошо видны в белой кювете (иногда применяют черный фон) невооруженным глазом. При невозможности немедленной разборки пробы ее заливают 4%-ным раствором формалина, предварительно нейтрализованным насыщенным раствором соды (NаНСО3). Нейтрализацию формалина проводят для предотвращения растворения помещенных в него известковых раковин моллюсков. В качестве консерванта можно применять также 75%-ный этанол. После фиксации пробу перевозят в лабораторию, где ее разбирают под бинокуляром, поскольку мелкие неподвижные, частично обесцвеченные организмы плохо заметны на фоне растительных остатков и других частиц в пробе.

Основные рекомендации по разборке фиксированной пробы:

-отмыть пробу от формалина под краном с помощью сита, стараясь по возможности меньше перемешивать грунт во избежание повреждения организмов, так как после фиксации они становятся более хрупкими и ломкими;

-поместить отмытый грунт в банку и, взмучивая вращательными движениями верхний слой, слить небольшое количество взвеси вместе с организмами

вчашку Петри; просмотреть всю площадь чашки при 8-кратном увеличении бинокуляра, выбрать организмы с помощью пинцета и поместить их в пробирку или пенициллиновую склянку с 4%-ным раствором формалина;

-пучки водорослей, макрофитов, а также толстые мягкие остатки стеблей камыша разнимать с помощью препаровальных игл. В стеблях могут находиться организмы-минеры;

-наряду с водными организмами вынимать из грунта случайно попавшие

впробу взрослые стадии насекомых, различные фрагменты организмов, могущие пригодиться при определении видов (домики ручейников, жаберные пластинки стрекоз и др.);

-при разборке качественной пробы даже при высокой степени однородности организмов в каждой чашке Петри необходимо просмотреть всю пробу до конца, так как более тяжелые организмы (пиявки, моллюски, олигохеты) чаще обнаруживаются в нижних слоях пробы);

-если разборка пробы переносится на следующий день, необходимо на ночь снова залить ее 4%-ным раствором формалина.

Разобранная проба снабжается такой же этикеткой, как отобранная. Если пункт наблюдений находится сравнительно недалеко от лаборато-

рии и транспортировка пробы занимает не больше 3 часов с момента ее отбора, возможно сохранение пробы в нефиксированном состоянии для дальнейшей ускоренной выборки живых организмов в лаборатории. Для этого необходимо воспользоваться термосом с металлической колбой объемом 3 л, до половины

151

заполненной колотым льдом. Отобранные пробы бентоса в таком случае помещаются не в банку, а в специально сшитые бязевые мешочки, куда вместе с пробой вкладывается этикетка. Мешочки завязывают, укладывают в термос поверх льда (но не внутрь во избежание травмирования организмов), закрывают термос и перевозят в безводном состоянии. Указанным способом целесообразно привозить не больше двух проб в день в расчете на одного исполнителя. Сразу после доставки в лабораторию пробу переносят в банку с водой, туда же помещают кусок льда из термоса и приступают к разборке. Лед необходим, чтобы мелкие оксифильные виды не погибли от нехватки кислорода уже в момент разборки пробы, что затруднило бы их выборку и привело бы к потере гидробиологического материала.

Разобранная проба сортируется по систематическим группам до семейств. Для этой цели пользуются специальными кассетами, изготовленными из плексиглаза. Диаметр мелких углублений в них должен соответствовать полю зрения бинокуляра при 8-кратном увеличении. Кассеты с пробами, снабженными этикеткой, можно ставить одну на другую, разделив, таким образом, этапы подготовки пробы к анализу и собственно анализа (это удобно при наличии двух исполнителей).

6.3.4.Анализ проб

Собственно анализ количественной пробы бентоса включает в себя три

этапа: видовой анализ, определение численности каждого вида, определение биомассы каждого вида. Последний этап требует дополнительной сортировки бентосных организмов до вида.

Видовой анализ организмов бентоса производится по определителям. Для облегчения повторных определений рекомендуется морфологические отличия каждого ранее не встречавшегося вида описывать в журналах, заведенных для разных систематических групп. Желательно рядом с описанием помещать схематический рисунок морфологических признаков, приводить кодированное обозначение водоема и створа, где данный вид отмечен, а также ссылку на используемый определитель. Ссылка нужна ввиду несоответствия наименований одного и того же вида в разных определителях, что связано как с уточнением видовой принадлежности по мере накопления знаний, так и с изменениями международной зоологической номенклатуры.

Помимо описания видов и зарисовок, существенно облегчить определение сложных и разнообразных групп организмов может коллекция постоянных препаратов. Методика изготовления постоянных препаратов представителей разных групп беспозвоночных, как правило, описана в соответствующих определителях. Наиболее просто препарировать хитиновые части насекомых, водных клещей и ракообразных с применением жидкости Фора-Берлезе, которая готовится следующим образом. В 50 частях (по массе) дистиллированной воды растворяют 30 частей сухого гуммиарабика, затем добавляют 20 частей глицерина и 20 частей хлоралгидрата. Смесь нагревают в банке с притертой пробкой

152

на водяной бане до полного растворения, после чего фильтруют через стекловату и охлаждают до комнатной температуры.

Удобство применения жидкости Фора-Берлезе заключается в отсутствии подготовительных этапов изготовления препарата. Объект препарирования переносится на предметное стекло из любой фиксирующей жидкости (этанола, жидкости Удеманса, формалина), помещается в размазанную каплю жидкости Фора-Берлезе и накрывается покровным стеклом. Если препарируется одновременно много хитиновых частей, то чтобы они не разъехались при накрывании покровным стеклом, рекомендуется препарат подержать открытым на столике с подогревом до некоторого загустения жидкости, после чего препарат накрывают покровным стеклом с предварительно нанесенной на его нижнюю поверхность капелькой жидкости Фора-Берлезе.

До момента полного загустения (2–3 недели) препарат должен храниться в горизонтальном положении. Чтобы гуммиарабиковая смесь не испортилась, края покровного стекла через несколько дней после изготовления препарата окантовывают доммарным лаком или бесцветным лаком для ногтей. Препарат снабжается этикеткой, на которой указываются видовое название, место и дата сбора, фамилия специалиста, определившего данный вид. Жидкость ФораБерлезе успешно применяют для препарирования не только членистоногих, но и олигохет. При затруднениях в определении вида следует обратиться к специ- алисту-систематику, для чего необходимо также иметь препараты личинок и имаго трудно определяемых видов.

Численность организмов данного вида определяют прямым подсчетом особей в пробе, биомассу – взвешиванием на торсионных или аналитических весах. Взвешивание нужно производить после непродолжительной обсушки навесок материала на фильтровальной бумаге (до момента, когда организмы не будут оставлять мокрых пятен на ней при легком надавливании).

При обильном развитии одного вида (до нескольких тысяч экземпляров в пробе) для их подсчета рекомендуется определять среднюю массу одной особи из достаточно большой выборки (50–100 экземпляров) и делить на него общую биомассу данного вида. Если многочисленны 2–3 вида, можно проделать ту же операцию, предварительно выяснив общую массу этих видов в пробе, массу выборки этих видов, численность каждого вида в выборке.

Биомасса каждого вида рассчитывается как произведение установленной численности этого вида в пробе на среднюю массу одной особи.

При необходимости выяснения возрастной структуры популяции ее особи сортируются по размеру, определяется масса каждой возрастной стадии, линейные размеры организмов каждого возраста, и эти данные заносятся в журнал произвольной формы.

Результаты анализа видового состава, численности и биомассы организмов вписываются в карточки первичной обработки, по которым производится дальнейшая камеральная обработка результатов анализа. Камеральная обработка выражается в пересчете количественных показателей на 1 м2, выявлении доминантных и субдоминантных видов по численности и биомассе, оценке каче-

153

ства воды с помощью формальных приемов, определении инвариантного состояния биоценоза по его трофической структуре.

В ряде случаев в разрабатываемых методах экологического мониторинга, экспрессных методах оценок качества воды нецелесообразно выполнять трудоемкий количественный анализ проб в полном объеме. В то же время анализ качественных проб без учета количественных показателей не позволяет выявить такие важные в экологическом мониторинге характеристики, как трофическая структура сообщества, основные направления функционирования биоценозов и др. Во всех случаях, когда не требуется высокая точность определения количественных значений, предлагается упростить обработку фиксированных проб в основном за счет этапа подготовки к анализу.

Прежде чем приступить к разборке пробы указанным методом, необходимо по возможности более тщательно перемешать слои отмытой от формалина пробы. Эту работу нужно проводить осторожно, выложив пробу в кювету в безводном состоянии, чтобы не травмировать организмы. В ходе перемешивания нужно дать приблизительную визуальную оценку степени количественного развития организмов в пробе по шкале: 1) очень слабо; 2) слабо; 3) умеренно; 4) хорошо; 5) обильно. В зависимости от степени развития выбирать организмы: 1) из всей пробы; 2) из 1/2 пробы; 3) из 1/4 пробы; 4) из 1/8 пробы; 5) из 1/16 пробы.

Остаток пробы следует просмотреть с тем, чтобы выбрать организмы видов, не попавших в разобранную часть пробы. Если виды невозможно различить по внешним признакам, их следует выбрать из целой пробы. Беспозвоночные, выбранные из остатка пробы, не смешиваются с организмами, выбранными из части пробы. Видовое определение, подсчет и взвешивание организмов проводят отдельно для видов, выбранных из части пробы и из ее остатка. Полученные количественные данные для части пробы пересчитываются на целую пробу, для чего их следует умножить на знаменатель первоначального деления пробы, и заносятся в карточки первичной обработки проб с пометкой о том, что проба обработана упрощенным методом.

Пересчет количественных показателей на 1 м2.

При пересчете численности и биомассы организмов в пробе на 1 м2 необходимо пользоваться коэффициентами пересчета. Коэффициенты пересчета могут быть стандартными (при применении стандартных орудий количественного сбора бентофауны) и вычисленными (при применении нестандартных, изготовленных в мастерской орудий лова). При отборе количественных проб бентоса малыми моделями дночерпателей Экмана-Берджа, Петерсена с площадью захвата 0,025 м2 для пересчета на 1 м2 численность и биомассу организмов в пробе следует умножить на 40. Пользование вычисленными коэффициентами пересчета можно пояснить на следующем примере. Как уже отмечалось, при отборе проб скребком удобно за 1 количественную пробу, или 1 скребок, принять прохождение режущей кромкой в поверхностном слое грунта полосы 50 см. При ширине режущей кромки 16 см облавливаемая площадь составит 800 см2, что меньше 1 м в 12,5 раза. Следовательно, коэффициент пересчета 1 скребка на 1 м равен 1,5; на 2 скребка – 6,25; на 3 скребка – 4,16 и т. д.

154

Обзор методов гидробиологических исследований подготовлен на основе обобщения информации из перечисленных в списке литературы источников.

РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА

Водоросли: Справочник / подобщ. ред. С.П. Вассера. Киев: Наук.думка, 1989. 608 с. Киселев И.А. Планктон морей и континентальных водоемов. Л.: Наука, 1969. Т. 1.

Вводные иобщие вопросы планктологии. 658 с.

Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения микроорганизмов. М.: Наука, 1989.

288 с.

Кузьмин Г.В. Фитопланктон. Видовой состав и обилие // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов / под. ред. Ф.Д. Мордухай-Болтовского. М.: Наука, 1975.

С. 73-87.

Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Фитопланктон и его продукция / Ред. Г.Г.Винберг, Г.М. Лаврентьева. Л.: ГосНИОРХ, ЗИН АН СССР, 1984. 32с.

Методы изучения пресноводного фитопланктона: методическое руководство: автор-сост. Садчиков А.П. М.: Изд-во «Университет и школа», 2003. 157 с.

Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Лабораторное руководство.Л.: Наука, 1974. 193 с.

Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 180 с.

Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. 239 с.

Топачевский А.В., Масюк Н.П. Пресноводные водоросли Украинской ССР. К.: Вища школа. Головное изд-во, 1984. 336 с.

Федоров В.Д. О методах изучения планктона и его активности. М.: Изд-во МГУ, 1979.

168 с.

155

ГЛАВА 7. МЕТОДЫ ГЕЛЬМИНТОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

7.1. Освоение методов гельминтологических исследований

Паразитологическое исследование является одним из важнейших этапов изучения состояния популяций животных и биоценозов в целом. Известно, что экосистемы состоят из структурных элементов, объединяемых в единое целое потоками вещества и энергии. В этом аспекте характеристика паразитарной системы, как составной части экосистемы, приобретает особое значение. Поэтому всестороннее исследование любого вида животных, помимо изучения особенностей его морфологии и физиологии, питания, размножения и развития, биотопического размещения и географического распространения, в обязательном порядке должно включать паразитологическую компоненту. При правильном методологическом подходе и технической организации работы паразитологическое исследование всегда может дать более или менее ясную картину сложных взаимоотношений между паразитами, хозяевами и внешней средой обитания, позволит уточнить экологическую нишу вида, оценить ущерб, наносимый популяции хозяина и выработать комплекс мер по борьбе с паразитами.

Паразиты являются не таксономической, а экологической группой. К ним относятся и мельчайшие, и относительно крупные животные, населяющие организм хозяина внутри и снаружи, которые связаны с ним постоянно или временно, закономерно или случайно. В соответствие с такой многоликостью паразитизма методы паразитологических исследований также разнообразны. Для методологического удобства условно разделим беспозвоночных паразитов на три группы: простейшие, гельминты (паразитические черви) и эктопаразиты (членистоногие).

Изучение паразитических простейших представляет собой значительные трудности для начинающих. Большинство их имеет очень мелкие размеры, что требует обеспеченности микроскопической техникой с большим увеличением. Более того, их очень легко пропустить при осмотре, нарушить локализацию или случайно удалить во время манипуляций с телом хозяина. Вдобавок к этому существует множество нюансов при изготовлении мазков, препаратов и срезов для каждой систематической группы, которые проблематично освоить без руководства опытного наставника. Еще больше затруднений вызывает сложная видовая диагностика системы простейших, результаты которой сильно зависят от качества приготовленных микропрепаратов. Даже при отличном качестве последних окончательное заключение о видовой принадлежности простейших немыслимо без консультаций со специалистами. Указанные обстоятельства делают представителей этой группы паразитов неудобными объектами для начинающих исследователей.

Гельминтами называют систематически разнородные группы плоских, круглых и кольчатых червей, которые обитают внутри (за исключением пиявок и отчасти – моногеней) организма хозяина. Половозрелые черви хорошо видны

156

при небольшом увеличении бинокуляра или даже невооруженным глазом. Их личинки обычно мельче, но также могут быть обнаружены при использовании бинокуляра. Из-за своих размеров гельминты более удобны для манипуляций, нежели паразитические простейшие. Еще одним удобным преимуществом этой сводной группы паразитов могут служить более или менее унифицированные требования, предъявляемые к сбору, фиксации, обработке и изготовлению микропрепаратов гельминтов из разных классов. Но все же, в виду большого разнообразия их видов, консультации специалистов при видовой диагностике необходимы.

Эктопаразиты длительно или кратковременно находятся на поверхности тела хозяина. Их степень взаимодействия с хозяином может быть различной. Одни используют хозяина исключительно для получения пищи, а в остальное время с ним не связаны (клещи, клопы, двукрылые насекомые). Другие находят на хозяине постоянное местообитание (блохи, вши, пухоеды, некоторые ракообразные). Изучение эктопаразитов несколько сложнее, чем гельминтов по ряду причин. Во-первых, многие из них отличаются подвижностью и не всегда могут быть собраны полностью, так как легко покидают тело хозяина, либо меняют свою локализацию. Во-вторых, их извлечение без повреждения требует аккуратности и особых навыков. В-третьих, многие хозяева эктопаразитов (микромаммалии, птицы) часто являются резервуаром и источником возбудителей различных инфекционных заболеваний, а манипуляции с ними могут быть опасны для жизни и здоровья исследователя. Наконец, видовая диагностика эктопаразитов по причине их таксономического разнообразия, затруднена и невозможна без руководства опытного наставника.

Таким образом, начинающим исследователям рекомендуется освоение, в первую очередь, гельминтологических методов и приемов исследования. При этом, интерпретируя полученные результаты работы, всегда нужно помнить, что гельминтофауна – только часть (пусть даже часто весьма значительная) общей паразитофауны.

7.2. Выбор объекта для гельминтологического изучения

Гельминтологическое исследование животных разных таксономических и размерных групп имеет свои особенности. Для освоения метода лучше изучать животных среднего размера. Во-первых, это проще организовать с технической точки зрения. Во-вторых, у небольших животных (насекомых, моллюсков и других беспозвоночных) гельминты, как правило, представлены личиночными формами, имеют небольшие размеры и встречаются спорадически. Наоборот, крупные животные (млекопитающие), хоть и будут заражены достаточным числом взрослых гельминтов, но потребуют для полного обследования много времени и для начинающих исследователей работа с ними затруднительна.

Из животных среднего размера рекомендуется использовать земноводных или рыб, отловить которых несравненно проще, чем рептилий, млекопитающих и особенно птиц. Однако, последующее содержание рыб живыми без потери

157

гельминтов технически очень сложно. Напротив, отловленных амфибий можно длительное время содержать в холодильнике, имитирующем условия зимней спячки, без затрат на кормление. В совокупности, трудно представить себе более удобный объект для начинающего паразитолога, чем земноводные.

Практика показывает, что каждый студент, обладающий усидчивостью, внимательностью и терпением может освоить гельминтологические методы исследования. С другой стороны, овладевая ими, начинающие исследователи обязательно приобретают указанные выше качества.

7.3. Этапы гельминтологического исследования

Гельминтологическое исследование включает в себя ряд этапов.

I. Подготовительный этап.

Выбор актуальной темы для исследования, постановка цели и задач. Выбор объекта-хозяина, определение количества и размера выборок, био-

топа и сроков отлова.

Ознакомление (по литературным данным) с анатомо-физиологическими, биологическими и экологическими особенностями объекта-хозяина, практикой препарирования и гельминтологического исследования.

Подготовка оборудования, инструментов и материалов, приготовление реактивов.

Отлов, транспортировка и сохранение объектов-хозяев.

II. Гельминтологическое вскрытие.

Усыпление и препарирование амфибии. Поиск, сбор и фиксация гельминтов.

Регистрация и этикетирование паразитологического материала.

III. Камеральная обработка гельминтологического материала.

Подготовка проб (промывка, окраска, дифференцировка, обезвоживание, просветление) гельминтов к заключению в препарат.

Изготовление постоянных (тотальных) препаратов гельминтов.

IV. Видовая диагностика гельминтов.

V. Статистическая обработка математических данных. VI. Интерпретация и публикация данных.

Рассмотрим содержание вышеуказанных этапов и пунктов исследования более подробно.

7.3.1.Подготовительный этап

Выбор актуальной темы и планирование исследования. В нашей стране

изучением паразитов земноводных занимается очень ограниченное количество специалистов, в связи с чем, любая информация о гельминтофауне этой группы позвоночных хозяев практически из любого региона неизменно оказывается актуальной. На первых порах начинающий исследователь может выбрать одну из тем, подобных приведенным ниже. Естественно, выбор темы определяет цель, задачи, вид и сроки отлова амфибий-хозяев, тип биотопа.

158

При определении планируемого объема материала для исследований, необходимо исходить из следующих положений. Во-первых, в паразитологии минимальным размером выборки хозяина принято считать 15 экз. При таком количестве обследованных животных обычно выявляется большинство (до 90– 95% фауны) видов гельминтов, свойственных данному хозяину в исследуемой местности. Вероятность находки редких видов паразитов в известной степени зависит от количества изученных особей хозяина, поэтому рекомендуется не ограничиваться паразитологическим минимумом или единственной выборкой. Во-вторых, все особи одной выборки должны быть отловлены в одном биотопе (водоем, луг, лесной массив, урбоценоз и т.д.) в пределах 1–3 км, в одно время (месяц, сезон) и быть примерно равного размера. В-третьих, при подготовке исследования необходимо ориентироваться на численность и статус редкости ви- да-хозяина в биоценозе. Рассмотрим основы планирования исследования на нескольких обычных темах.

Начинают исследования обычно с фаунистической тематики, например: «Гельминтофауна травяной лягушки (любого другого вида или группы видов земноводных) в г. Саранск (Республике Мордовия, Среднем Поволжье)». Эта тема особенно актуальна, если исследования проводятся впервые. Цель: получить данные о составе и структуре гельминтофауны того или иного вида земноводных, зараженности их отдельными видами гельминтов в изучаемой местности. Для достижения данной цели нужно провести гельминтологическое вскрытие не менее 2–3 выборок хозяев, отловленных из нескольких биотопов в одной местности (например, в разных районах города или региона, кварталах лесного массива, берегах водоема и т.д.).

Более трудоемким вариантом фаунистического исследования служит тема сравнительного анализа, например, «Гельминтофауна травяной и остромордой лягушек при их обитании в одном биоценозе» или «Гельминтофауна травяной лягушки в пойменном лесу и агроценозе». Соответственно, в процессе работы потребуется исследовать несколько выборок амфибий разного вида из одного биотопа или, напротив, животных одного вида из разных биотопов.

Гораздо больше усилий потребует от исследователя изучение изменений гельминтофауны хозяина во времени, к примеру, по теме «Сезонная динамика гельминтофауны остромордой лягушки». Цель работы: получить сведения о сезонной динамике состава и структуры гельминтов, зараженности хозяина их отдельными видами. Для ее достижения потребуется вскрывать по выборке амфибий раз в месяц в течение всего периода активности с мая (апреля) по сентябрь (октябрь). Логическим продолжением изучения сезонной динамики может послужить тема «Многолетняя динамика гельминтофауны остромордой лягушки», для осуществления которой весь объем сезонной работы повторяют ежегодно в течение 3–5 лет. Исследования по вышеуказанным темам проводят в биоценозах со стабильно высокой численностью вида-хозяина.

По этому же принципу выполняют исследования, связанные с изучением зависимости гельминтофауны от биологической (половозрастной) структуры популяции хозяина, например, «Возрастные изменения гельминтофауны серой

159