Основные методы стерилизации

Метод стерилизации	Аппарат	Режим стерилизации (время, t°С, давление, кратность)	Надежность (что остается)	Стерилизуемые материалы
Прокаливание на огне	Спиртовка газ.горелка	Однократно до покраснения	Полная	Предметное стекло, пинцет
Лучевая стерилизация	Бактерицидная лампа	200-300мкм	Бактерии	Вакцина, сыворотки
УЗ	УЗ-й дезинтеграл	20000Гц	Полная	Пищевые продукты и др.предметы
Кипячение	Стерилизатор	30-45’+1%р-р соды t=100	Бактерии, Вирусы гепатита	Инструменты, шприцы, иглы
Сухим жаром	Сухожаровой шкаф		Неполная	Стекло, вата, марля, чашки Петри
Пастеризация	Пастеризатор	t=50-60 15-30’ t=70-80 10-15’	Споры	Молоко, вина
Фильтрование	Фильтр	Нагревание под давлением через поры	Вирусы	Сыворотка, лекарственные средства
Паром
1.под паром	Автоклав	t=100 15-20 p=1 Атм p=2 Атм t=138	Споры полная	Инструменты, питательные среды
2.текуч.паром	Аппарат Коха	t=100 30-40’	Споры	Питательные среды
3.дробная стерилизация	Водяная баня	T=100 20-30’ 3дня	Споры	Желатин, молоко

Ряд гисса (короткий)

Кишечная

палочка

Возбудитель

брюшной

тифа

Возбудитель

паратифа А

Возбудитель

паратифа В

лактоза глюкоза мальтоза манит сахароза МПБ

расщепление расщепление расщепление

углеводов углеводов углеводов

отсутствует до кислоты до кислоты

и газа

Занятие № 7 Тема: дыхание микроорганизмов. Выделение чистой культуры анаэробов. Рост и размножение микробов. Дезинфекция.

Цель занятия: изучить морфологию анаэробов, освоить методы культивирования анаэробов и методы выделения чистой культуры анаэробов, продолжить выделение чистой культуры аэробов (3-й день).

Методы культивирования анаэробов. Физические методы

1. Кипячение питательной среды на водяной бане в течение 15-20 мин, с последующим охлаждением до 45-50°С.

После посева питательную среду заливают стерильным вазелиновым маслом или парафином.

2. Посев в высокий столбик плотной или полужидкой питательной среды.

3. Эвакуационно-заместительный метод заключается в удалении воздуха из (анаэростатов, анаэробных боксов) с помощью вакуумного насоса с последующей заменой его инертным газом (азот, аргон, гелий). Для поглощения водных паров на дно анаэростата помещают 5-6 г хлористого кальция, 10-12 г силикогеля или 20-30 г хлористого натрия.

Химические методы

1. Применение щелочных растворов пирогаллола для поглощения кислорода в замкнутой воздушной среде. Для поглощения кислорода из 220 мл воздуха применяют смесь, состоящую из 1 мл 20% раствора пирогаллола и 1 мл насыщенного раствора карбоната натрия (Na₂CO₃).

2. Для связывания остатков кислорода в предназначенных для роста анаэробов питательных средах используют вещества-редуценты, к которым относятся тиогликолевая кислота, тиогликолят натрия (0,01 – 0,02%), аскорбиновая кислота (0,1%), различные сахара (0,1 – 3%), цистин и цистеин (0,03 – 0,05%), муравьинокислый натрий (0,25 – 0,75%) и др.