VET_1-2003

Уважаемый читатель!

Перед вами первый номер настоящего издания журнала «Ветеринар» в 2003 году. Как и ранее, мы продолжаем освещать проблемы ветеринарной медицины в соответствии с программой образования в ветеринарных вузах России. В рубрике «Исследование» вашему вниманию предлагается статья «Пересадка почки как активный метод лечения острой почечной недостаточности у собаки и кошки». В данной статье рассматривается вопрос о возможности трансплантации почки мелким домашним животным в случае острой и хронической почечной недостаточности. Первые попытки исследования указывают на различия методов трансплантации почки у собаки и кошки, где также показано, что трансплантация почки на временной основе более физиологична по сравнению с перитонеальным диализом. Мы

также обращаем ваше внимание на то, что в 2003 году планируется издание специального номера «Неврология». Более подробную информацию об этом источнике вы найдете на третьей странице настоящего издания.

Как и прежде, мы напоминаем вам о подписке на 2003 год.

Чтобы удовлетворить потребности в питании стерилизованных кошек,

Royal Canin разработал специальную гамму кормов “Veterinary Cat”, адаптированную к возрасту животного.

Информация в Интернете: http://www.royal-canin.ru

СОДЕРЖАНИЕ

Болезни лошадей

4Гормонотерапия в репродукции лошадей

Болезни птиц

6Гельминтозы хищных птиц

Диагностика

16Эхография

пищеварительного тракта у домашних

плотоядных

Техника и картина нормального эхографического изображения

Исследование

20Пересадка почки как активный метод лечения острой и хронической почечной недостаточности у собаки и кошки

Клинический

случай

24Злокачественный

гистиоцитоз,

ассоциированный с паранеопластической гиперкальциемией

28Два случая плазмоцитарного пододерматита у кошек

Микроэкология

34Лекарственные

дисбактериозы:

причины и последствия

3, 40 Информация

Гормонотерапия в репродукции лошадей

Вплеменном коневодстве для коррекции полового цикла у кобыл или лечения его аномалий

применяют гормоны.

Вданной статье представлены различные терапевтические схемы и перспективы развития этого направления.

эффективным у кобыл с нарушениями полового цикла; следовательно, такой тип лечения не стоит назначать в начале случного периода.

• Применение только прогестагенов (прогестинов):

Эта группа гормонов прерывает регуляцию гипоталамо-гипофизарной системы по принципу обратной связи, ингибируя овуляцию. При прерывании лечения в последующие дни должна проявляться овуляция. На практике лечение обычно продолжают ещё 2 дня после завершения фазы лютеинизации, что соответствует 15 – 18 суткам. Индукция эструса происходит на 3 – 5 день с момента последнего введения прогестагенов.

Положительные результаты отмечают при парентеральном введении прогестерона в дозе 150 мг в сутки внутримышечно, или при назначении аллил тремболона (allyl trembolone, Regumate ND**) в дозе 0,044 мг/кг перорально, что соответ-

**Regumat ND – препарат для обеспечения репродукции у свиноматок с нарушением полового цикла.

Состав

Масляный раствор:

Соевое масло q.s.p. – 100 ml

Свойства

Благодаря прогестагенным свойствам «Regumate ND» позволяет программировать возобновление течки у молодых половозрелых свиноматок для обеспечения у них половых циклов и планирования опороса.

Показания

Свиноматкам с нарушением полового цикла: синхронизация половой охоты.

Назначение и дозы

Перорально Молодая свиноматка: 1 доза (5 мл) в сутки в течение

18 дней. Суточная доза назначается индивидуально вместе с кормом.

Осторожность применения Показано только для свиноматок с нарушением полового цикла.

Время выведения из организма - 14 дней.

ствует для свиней примерно 10 мл коммерческого препарата, производимого во Франции (нет разрешения для продажи в коневодстве). Однако при наличии персистирующего желтого тела лечение может оказаться неэффективным. Поэтому в конце случного сезона следует избегать использования этой схемы, так как в противном случае очень часто отмечают нарушение лютеолиза. Преимуществом схемы комплексного лечения является возможность ее применения в течение всего сезона:

• Ассоциация прогестагенов и простагландинов

Интерес к такой схеме лечения заключается в подавлении (задержке) овуляции с помощью прогестагенов в течение непродолжительного периода времени. Далее за счет иньекций простагландинов

впоследний день назначения прогестагенного препарата добиваются лютеолиза.

Вданном случае возможно использование двух схем лечения:

- либо прогестерон назначают в дозе 150 мг парентерально один раз в сутки в течение 7 – 10 дней;

- либо Regumate ND в дозе 0,044 мг/кг

втечение 7 – 10 дней;

Один из этих препаратов применяют в сочетании с парентеральным введением PGF2 альфа или его аналога в конце лечения. Эструс проявляется обычно на 3–5 сутки после прекращения курса лечения. Тем не менее, рекомендуется проведение эхографического исследования в день окончания курса терапии или на следующие сутки, что позволяет выявить возможную преждевременную овуляцию, которая может пройти незамеченной.

При такой сочетанной терапии отмечают самые высокие результаты.

Параллельно, что иногда бывает необходимым для проведения успешной син-

ностью роста фолликулов. Овуляции из фолликулов не происходит, и они подвергаются атрезии. Когда у кобылы выявляют гиперэструс, то случки или ИО противопоказаны. При этом мы можем ждать самостоятельной физиологической саморегуляции или назначить лечение прогестагенами. Но при этом надо соблюдать осторожность, так как в момент течки кобыла часто восприимчива к внутриматочным инфекциям. Наконец, можно искусственно вызвать овуляцию, используя hCG. Однако, учитывая риск иммунизации препаратом животного, следует помнить об ограничениях применения гонадолиберина.

Практикующий врач будет выбирать одну из трех упомянутых схем лечения в зависимости от состояния конкретного животного.

Лютеинизацию при отсутствии овуляции диагностируют a posteriori с помощью эхографии. Предупредить данный процесс нельзя, но можно сократить длительность фазы анэструса, используя PGF2 альфа через 4 – 5 дней после образования желтого тела.

НЕДОСТАТОЧНОСТЬ ЖЕЛТОГО ТЕЛА В НАЧАЛЕ БЕРЕМЕННОСТИ

Болезни птиц

Гельминтозы хищных птиц

Э. С. МАИЛЯН

Паразитозы занимают первое место в патологии как среди домашних, прирученных, так и диких птиц. Пернатые хищники не являются исключением и являются обширным полем для изучения паразитозов, разработки методов их диагностики, лечения и профилактики.

Паразитозы, и в частности гельминтозы, вызываемые различными видами нематод, трематод, цестод и скребней, занимают основное место в патологии птиц. Эндопаразитозы являются у них наиболее частой причиной расстройства аппетита и пищеварения. Отмечено, что у свободноживущих пернатых хищников частота гельминтной инвазии с субклиническим течением очень высока, причем 60% всех гельминтозов составляют нематодозы (Forbes N.A., 1996). При попадании в неволю вследствие неизбежного стресса заболевание, протекаю-

6щее до этого латентно, проявляется клинически. Поэтому все отловленные птицы в обязательном порядке должны быть подвергнуты профилактической дегельминтизации или паразитологическому обследованию, включая обязательную микроскопию фекалий.

Smith A. (1993) провел прижизненное гельминтоовоскопическое исследование диких и содержащихся в неволе пернатых хищников: 115 особей, которые относятся к 15 видам отряда соколообразных (Falconiformes) и 102 особи, принадлежащие к 8 видам отряда совообразных (Strigiformes). Установлено, что степень поражения птиц различными гельминтами составила 62% для соколов и 68% для сов. Причем в обеих группах частота встречаемости паразитарной инвазии у диких птиц, находящихся на свободе, превышала таковую у особей, содержащихся в неволе (табл. 1).

Согласно данным, собранным в соколином госпитале Deauville у 1526 пациентов (1999-2000), поступивших в клинику с различной патологией, было зарегистрировано 1185 случаев паразитозов (табл. 2).

Следует обратить внимание, что заболевания пернатых хищников, вызываемые гельминтами, по частоте встречаемости среди регулярно диагностируемых паразитозов стоят на первом месте.

Ниже приводится краткое описание наиболее часто регистрируемых у хищных птиц гельминтозов, их возбудителей, а

появления клинических признаков позволяет обнаружить яйца паразита и своевременно начать лечение.

Подотряд Spirurata

Род Physaloptera

У хищных птиц встречаются следующие виды паразитарной инвазии: Physaloptera alata alata, Ph. acuticauda, Ph. subalata, Ph. reevesi и др.

Для завершения жизненного цикла паразита необходим беспозвоночный промежуточный хозяин.

Клинические признаки

Physaloptera alata alata встречается на слизистой верхней трети пищевода соколов, преобладает у Средиземноморского (рыжеголового) сокола (F. biarmicus) (Samour J. H., Маилян Э. С., 1999-2000). При этом отмечают анорексию, беспокойство, рвоту, потерю веса, изъязвление слизистой оболочки вплоть до гибели птицы.

Диагностика

Инвазия характеризуется анорексией и потерей веса.

Диагностику осуществляют методом визуального обнаружения гельминтов при

Таблица 2. Паразиты, обнаруженные при обследовании ловчих соколов в государстве

8Катар (Маилян Э.С., Qatar, 2000)

эндоскопии ротовой полости и просвета пищевода, а также идентификацией яиц паразита в мазке из слюны и фекалий. Размеры тела половозрелой особи достигают 35-40 мм в длину и 1-1,5 мм в диаметре (рис. 2). Яйца мелкие, овальной формы, с гладкой оболочкой и сформированной личинкой (фото 2h).

Лечение (табл. 7)

Терапия включает механическое удаление нематод из пищевода с последующим назначением антибиотиков (амоксициллин в дозе 50 мг/кг в течение 5 дней). В случае истощения и отказа птицы от корма

Фото 2. Яйца паразитов (Heidenreich M., 1997;; ): a - Syngamus spp.; b - Capillaria spp.; c - Serratospiculum spp.; d - Strigea falconis (Samour J., 2000); e - Ascaridia galli; f - Acanthocephala; g - Porrocaecum spp. h - Physaloptera spp. (Fox J.C., Oklahoma State University, 2002).

Схема 1. Жизненный цикл нематод рода Capillaria требует участия переносчиков (векторов) - в данном случае дождевого червя, в теле которого не происходит дальнейшего развития паразита. Дефинитивным хозяином явлется птица, поедающая червей или насекомых (R. Gattung-Petith и A. Gattung у Heidenreich M., 1997).

Схема 2. Избежать контакта птицы с промежуточными хозяевами и переносчиками

гельминтов можно, обеспечив ее чистым и сухим субстратом, изолированным от окружающей почвы (R.Gattung-Petith and A.Gattung,

у Heidenreich M., 1997).

невысока. Иногда концентрация половозрелых особей гельминта в просвете воздухоносных мешков бывает настолько выраженной, что напоминает тарелку со спагетти (фото 4a, b). При сопутствующей патологии возможно осложнение в виде аэ-

росаккулита (фото 5). Больная птица мо- 9 жет откашливать яйца гельминта в ротовую полость и снова заглатывать, после чего они попадают в желудочно-кишечный тракт и выделяются во внешнюю среду с пометом.

Клинические признаки

Проявляются на поздних стадиях паразитарной инвазии в форме истощения, анорексии, диспноэ, летаргического состояния (фото 6a, b), диареи, возможна рвота.

Сильная степень инвазии, а также состояние стресса часто приводят к летальному исходу (Kocan and Gordon, 1976).

Диагностика

Тонкостенные яйца гельминта (фото 2c) с заключенными в них личинками обнаруживают при микроскопии фекалий, слюны и аспирируемого содержимого из полости воздухоносного мешка (фото 7a, b). Обнаружить самих паразитов в полостях воздухоносных мешков можно с помощью метода эндоскопии через каудальные грудные воздухоносные мешки. Манипуляцию проводят под общей анестезией по аналогии с определением пола у птиц.

Лечение затруднено по причине плохого кровоснабжения стенок воздухоносных мешков, где чаще всего паразитируют эти гельминты.

Антигельминтики (табл. 7) назначают в сочетании с антибиотикотерапией и последующим механическим удалением мертвых гельминтов с помощью эндоскопии (фото 8). В случае сильного истощения птицы необходим постоянный мониторинг ее состояния, принудительное кормление в сочетании с поддерживающей флюидо- и витаминотерапией. Наличие мертвых гельминтов в полости воздухоносных мешков может привести к летальному исходу для пациента.

Профилактика

В неволе инвазии можно избежать, исключив контакт птицы с переносчиками.

Среди других часто встречаемых представителей подотряда Filariata, поражающих респираторный аппарат пернатых хищников, следует отметить Diplotriaena falconis, Aprocta lissonema, относящихся к родам Splendidofilaria, Cardiofilaria, Chandlerella и Avioserpens (Samour J., 2000).

Подотряд Strongylata

Представитель - Syngamus trachea (Рис.1- III) у соколов встречается редко, чаще - у канюков и других падальщиков.

Этот кровососущий паразит отличается половым диморфизмом (самка 20 мм, самец - 6 мм длиной). Пара (самец и самка) постоянно находится в состоянии копуля-

10 ции, что придает им Y-образную форму. Цикл развития прямой, однако, зачастую векторами могут служить земляные черви и улитки. Заражение птиц происходит при поедании переносчика с яйцами. Личинка мигрирует сначала в печень, а затем в трахею. Более крупная самка прикрепляется к слизистой оболочке трахеи, вызывая сильную воспалительную реакцию с образованием большого количества слизи. Яйца гельминта, по аналогии с Serratospiculum spp., откашливаются вместе со слизью через трахею в ротовую полость, откуда при проглатывании попадают в желудок, а затем и кишечник.

Клинические признаки появляются при значительной степени инвазии: хрипы в верхних отделах респираторного аппарата, диспноэ, характерное вытягивание шеи и «заглатывание» воздуха открытым ртом, частое чихание, потрясывание головой и кашель. Отличием от аспергиллеза является то, что не наблюдают брюшного типа дыхания. Питаясь кровью, паразит может вызвать серьезную анемию. Одной из причин смерти может быть асфиксия.

Диагностика

Постановку диагноза осуществляют на основании осмотра верхних отделов дыхательного аппарата. Гельминтов можно обнаружить невооруженным глазом или с помощью эндоскопа.

Фото 3а. Ранняя стадия поражения нематодой Capillaria spp. (орофарингеальная форма). На слизистой оболочке ротовой полости серого кречета (F. rusticolus) заметны небольшие участки желтоватого налета.

Фото 3b. Молодой сапсан (F. peregrinus) с серьезным поражением слизистой оболочки области левой комиссуры ротовой щели. При микроскопии образца материала, взятого из пораженного участка, было обнаружено большое количество яиц Capillaria spp.