Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Регенерация тканей и хитозан

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
08.09.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
☆
Рис. 22. Расширенные каналы гранулярной цитоплазматической
сети с фиксированными рибосомами и крупные митохондрии
в околоядерной зоне фибробласта. Хитозан. 10 дней. 18 000×
Рис. 23. Множество митохондрий с выраженными и частично
лизированными кристами в цитоплазме активного фибробласта.
Хитозан. 10 дней. 22 000×
71
Рис. 24. Обширные поля правильно ориентированных
коллагеновых волокон в межклеточном пространстве.
Хитозан. 10 дней. 20 000×
Таким образом, результаты исследования тонкой структу­ры фибробластов новообразованной ткани при заживлении ран кожи свидетельствуют о том, что в условиях воздействия хито­зана происходит значительная перестройка всех внутриклеточ­ных органелл, осуществляющих синтез, накопление и выведение коллагена в межклеточное пространство.
72
Глава 4
Динамика содержания фосфоинозитидов
на различных этапах заживления ран кожи
в условиях воздействия хитозаном
4.1. Метаболизм фосфоинозитидов и их роль в процессах посттравматической регенерации
В осуществлении процессов посттравматической регенера­ции существенная роль принадлежит фосфолипидам и жирным кислотам, которые входят в состав мембран клеточных структур. Основная часть липидов (до 90%) в них представлена фосфо­липидами, которые определяют основные физико-химические свойства мембранных структур.
Впервые фосфоинозитиды были выделены из мозга крупно­го рогатого скота Дж. Фолчем в 1949 году, а затем обнаружены во всех субклеточных фракциях, причем подавляющее боль­шинство полифосфоинозитидов находится в плазматических мембранах [4, 37, 78, 168].
Согласно стереоспецифической классификации [111, 225, 242] различают фосфатидилинозиты и их фосфорилированные формы, которые объединены общим названием фосфоинозитиды (ФИН). Наиболее распространенным представителем фосфо­инозитидов является фосфатидилинозит (ФИ). Значительный интерес ряда исследователей к фосфорилированным формам в Д-3, Д-4 позициях инозитольного кольца связан с тем, что при гидролизе последних образуются активные метаболиты, способ­ные регулировать различные внутриклеточные процессы [96, 107, 111, 141, 147, 347].
В настоящее время существует несколько вариантов метабо­лизма ФИ, но общепринятой считается схема [224, 311], в кото­рой ключевой реакцией является образование диацилглицеролов (ДГ) и инозитолтрифосфатов (IP фатидилинозит-4,5-дифосфатов (ФИДФ) под действием фер-
) вследствие гидролиза фос-
3
73
мента фосфолипазы С. На следующем этапе метаболизма, при участии фермента диацилглицеролкиназы и АТФ, происходит образование фосфатидной кислоты. В свою очередь, ДГ и IP играют роль внутриклеточных посредников [243, 336, 372]. Сово­купность реакций метаболизма ФИН или «фосфоинозитидный ответ» является энерго- и ферментозависимым процессом, а так-
2+
же сопряжен с изменениями концентрации ионов Са
в клетке [310, 332]. Содержание фосфоинозитидов варьирует от 2 до 10% от общего содержания фосфолипидов. Отдельные формы фосфо­инозитидов отличаются друг от друга жирнокислотным составом [295], а наиболее распространенными кислотами, входящими в их состав, являются арахидоновая, стеариновая, олеиновая и пальмитиновая [281, 282, 357].
Арахидоновая кислота является предшественником цело­го ряда медиаторов, увеличивает сосудистую проницаемость, вызывает агрегацию тромбоцитов, обладает хемотаксической активностью по отношению к нейтрофильным лейкоцитам, и на ее долю приходится в среднем 14–18% [35, 170, 297, 332]. Метаболизм арахидоновой кислоты осуществляется двумя ос­новными путями. При циклооксигеназной реакции [234] обра­зуется целый ряд физиологически активных веществ, таких как простагландины (ПГ), в том числе простациклин, и тромбок­саны. В свою очередь, ПГ вызывают вазоконстрикцию, а также усиливают хемотаксис лейкоцитов. Вместе с тем, они являются регуляторами сложных процессов на клеточном уровне [295] и поэтому их называют «клеточными» гормонами. При липоок­сикиназном пути метаболизма из АК образуются лейкотриены, которые усиливают хемотаксическое действие на лейкоциты, увеличивают высвобождение из них лизосомальных фермен­тов, стимулируют миграцию макрофагов, эозинофилов [296, 299, 305]. Действие образующихся активных меаболитов связано с действием на рецепторы клеточных мембран, а также способ­ностью непосредственно регулировать активность фосфолипазы
и аденилатциклазы в цитоплазме клеток, которые катализи-
А
2
руют превращение АТФ в циклический аденозинмонофосфат,
3
74
играющего роль «вторичного мессенджера» – универсального посредника гормонов [321, 329, 335, 337].
Фосфоинозитиды относятся к одной из фосфолипидных фракций, свойством которых является непосредственное участие в основных функциях биологических мембран [313, 323, 326]. Учеными обнаружено наличие прямо пропорциональной зависи­мости между процессами пролиферации клетки и метаболизмом инозитсодержащих липидов [24, 166, 333]. Изменения фосфоли­пидного состава ядерных структур и скорости синтеза клеточных фосфолипидов происходят в результате гормональной индукции [118], в процессе опухолевого роста [165], эмбриогенеза, пост­натального развития животных [118], а также при регенерации тканей [4, 243, 305].
Плазматические мембраны, обедненные инозитольными ли­пидами вследствие недостатка ФИН, не могут функционировать нормально [1, 10, 43]. Вместе с тем, фосфоинозитиды, помимо поддержания структуры мембран, участвуют в активном транс­порте ионов, рецепторной функции цитолеммы, присоединении некоторых ферментов, а также обеспечении арахидоновой кис­лотой для синтеза простагландинов [167, 303, 311]. Установлено, что в составе различных форм фосфоинозитидов определяют­ся различные жирнокислотные остатки. На долю аминокислот в среднем приходится от 14 до 18%, которые являются предшес­твенниками целого ряда медиаторов и регуляторов клеточного ответа на внешние сигналы (воспалительные, иммунные реакции и другие).
Известны исследования, доказывающие закономерные из­менения липидного состава ядерных структур [4, 10, 24, 164, 165]. Так, усиление синтеза фосфолипидов и количество мно­гих фосфолипидных фракций в ядрах клеток предшествуют или совпадают по времени с интенсификацией процессов реплика­ции ДНК и транскрипции. Снижение уровня фосфолипидов в ядерных мембранах и внутриклеточных структурах коррелиру­ет с изменением функциональной активности ядерного генома. Известно, что липиды клеточных ядер могут принимать участие
75
в процессах считывания генетической информации. Имеются данные о влиянии фосфолипидов на активность ДНК- и РНК­полимеразы [174, 175, 251]. Установлена способность фосфо­липидов взаимодействовать с ДНК, а также гистоновыми и не­гистоновыми белками ядер [305]. В пролиферирующих клетках скорость обмена фосфоинозитидов по сравнению с покоящими­ся значительно повышается [294, 295].
Высвобождение фосфата из фосфатидилинозита коррелиру­ет с клеточным ростом [311, 337]. Имеется мнение об участии инозитсодержащих липидов в переходе к неконтролируемому росту и трансформации. Считается, что репликация клеток ини-
2+
циируется избытком Са
в цитоплазме, а неопластические клет-
ки пролиферируют автономно потому, что их плазматические
2+
мембраны пропускают излишние количества Са
или их мито-
хондрии оказываются не в состоянии хранить депонированный
2+
[14, 311, 314].
Са
На ранних стадиях репаративной регенерации R.V. Farese, S.P. Kent (1984) установили усиленный выход липопротеинов во внесосудистое пространство, а затем разрушение липидов мембран и других структур клетки. При этом общая концентра­ция фосфолипидов в раневом эксcудате на протяжении первых трех дней составляет около 34% по сравнению с плазмой крови, а уровень фосфатидилсерина и фосфатидилинозита снижается почти в 30 раз [281].
В работах К.Г. Карагезяна, Л.М. Овсеняна, К.Г. Адонца (1990) достаточно полно изучено влияние фосфолипидов на некоторые показатели системы гемостаза [15, 24]. Метаболиты фосфоли­пидов такие, как фосфатидилсерин, вызывают усиление анти­коагулянтного эффекта, замедляют время свертывания крови, уменьшают содержания фибриногена и повышают фибриноли­тическую активность.
Фосфатидилинозитфосфаты являются минорными фосфоли­пидами клеточных мембран. На их долю приходится не более 6% от общего количества фосфолипидов [24, 44]. Однако тот факт, что они имеют четкую функциональную и структурную связь
76
с интегральными белками клеточной мембраны, позволяет рас­сматривать их как один из самых важных элементов в трансмем­бранной передаче сигналов [248, 337]. В покоящихся клетках основными компонентами фосфатидилинозитолов являются два фосфорилированных метаболита: фосфатидилинозит-4-фос­фаты (ФИФ) и фосфатидилинозит-4,5-дифосфаты (ФИДФ).
2+
При стимуляции Са
-мобилизирующих рецепторов происходит активация мембран-ассоциированной фосфолипазы С, которая гидролизует ФИДФ на инозитолтрифосфат и диацилглицерол. Эти два метаболита являются вторичными мессенджерами, пе­редающими сигнал с рецептора клетки на ядро. Инозитолтри-
2+
фосфат высвобождает Са
из немитохондриальной фракции внутриклеточных депо [338]. Диацилглицерол в присутствии ионов кальция активирует протеинкиназу С, фосфорилирую­щую белки для активации генома [251, 327].
В исследованиях А.А. Вишневского, Э.Я. Янгалычева, В.М. Яковлева (1995); Э.С. Геворкяна, Ж.В. Яворяна, И.Г. Арц­руни (1995) сообщается об изменениях скорости реагирования уровня содержания фосфолипидов на различные стимулирую­щие агенты [27, 35, 117]. Под действием холинэргических и адре­нэргических веществ возрастает скорость включения неоргани­ческого фосфата в монофосфоинозитид и фосфатидную кислоту различных тканей.
Сведения о влиянии нейромедиаторов на обмен ди- и трифос­фоинозитидов противоречивы. Так, при действии ацетилхолина на нервную ткань экспериментальных животных одни исследо­ватели не находили изменений в обмене полифосфоинозитидов [288], другие [289, 292] обнаружили снижение, третьи – повы­шение скорости включения фосфата в них [294, 347].
Доказано, что изменение количества фосфолипидов в от­вет на различные воздействия происходит в течение несколь­ких секунд и тесно связано с транспортом ионов, метаболитов, рецепторной и энергетической функциями клетки [120, 292]. Об интеграции регуляторных систем у всех клеток на мембран­но-цитоплазматическом уровне свидетельствует тот факт, что
77
мессенджеры совпадают у различных видов рецепторов, что обуславливает возможность поиска лекарственных препаратов, влияющих на эти системы.
Самостоятельный интерес представляют результаты изучения влияния различных факторов на содержание ФИ в процессе за­живления экспериментальных ран кожи [68, 145, 217].
В исследованиях Петровой М.Б. (1993) показано, что при облучении раневой поверхности низкоинтенсивным лазером наиболее выраженным изменениям подвергается фракция сфин­гомиелинов фосфолипидного компонента мембран. Уменьшение процентного содержания лизофосфолипидов в мембранах от­мечалось на ранних этапах воздействия. При этом процентное содержание диацильных форм (фосфоатидилхолинов, фосфати­дилэтаноламинов и фосфатидилинозитов) существенно не изме­нялось. Вместе с тем, имеются данные о том, что при облучении лазером происходят изменения не только основного фосфои­нозитида, но и его фосфорилированных форм – ФИФ, ФИФ1, ФИДФ [139, 329].
Шестакова В.Г. (1996) в серии экспериментов установила, что при воздействии на различные точки электроакупунктуры наблюдаются разнонаправленные изменения содержания фос­фоинозитидов в эритроцитах, лимфоцитах, макрофагах крови и грануляционной ткани. В этих условиях наибольшим измене­ниям подвергается фракция сфингомиелинов фосфолипидного компонента мембран. Выявлено повышение некоторых про­дуктов метаболизма фосфолипидов – арахидоновой кислоты и диацилглицеролов в крови на начальных этапах заживления в среднем в 1,3 раза по сравнению с последующими сроками реге­нерации ран кожи. Отмечаются существенные изменения дина­мики лизофосфолипидов, что проявляется в резком уменьшении их процентного содержания в мембранах, особенно на начальных этапах воздействия [217].
Изменения содержания ФИ и их фосфорилированных форм изучались в дальнейшем Харитоновой Е.А. (1997) при зажив­лении экспериментальных ран кожи у крыс. Автор установила,
78
что в условиях применения гиалуроновой кислоты на начальных этапах регенерации асептических и инфицированных ран кожи происходит повышение количества полифосфоинозитидов, а уровень содержания фосфоинозитидов и уровень вторичных мессенджеров – диацилглицеролов восстанавливается до исход­ных показателей через 15 дней после нанесения повреждений [145].
Данные, приведенные выше, убедительно показывают, что инозитсодержащие липиды принимают непосредственное учас­тие в осуществлении различных этапов репаративной регенера­ции кожи. Однако работ по исследованию динамики содержания ФИ и их фосфорилированных форм в крови и грануляционной ткани при заживлении полнослойных ран кожи в условиях при­менения хитозана нами не обнаружено.
4.2. Изучение динамики фосфоинозитидов в цельной крови на различных этапах посттравматической регенерации
кожи при применении хитозана
В настоящей главе представлены результаты исследований динамики содержания фосфатидилинозитов (ФИ) и их фосфо­рилированных форм фосфатидилинозит-3-фосфатов (ФИФ1) и фосфатидилинозит-4-фосфатов (ФИФ) в цельной крови и грануляционной ткани в процессе заживления полнослойных ран кожи в результате применения хитозана. Эксперименты вы­полнены на 134 белых крысах, которые были разделены на три серии: 1-я – интактная – животным травму не наносили, 2-я – контрольная – раны животных смазывали вазелиновым маслом, 3-я – животные, на раны которых ежедневно наносили хитозан. Исследование содержания биохимических показателей в цель­ной крови и грануляционной ткани проводилось в динамике: до операции и в различные сроки после нанесения травмы. Для этого взятие материала (навеска грануляционной ткани 500 мг) и 1 мл крови осуществляли через 5, 10 и 15 дней после операции.
79
Установлено, что количество фосфатидилинозитов (ФИ) в цельной крови у животных контрольной серии через 5 дней после операции в среднем в 1,22 раза выше их значений у интакт­ных крыс (табл. 7). На последующих этапах заживления отмеча­лось повышение уровня содержания ФИ. Так, через 10 и 15 дней от начала наблюдения количество фосфатидилинозитов у крыс контрольной серии было соответственно в 1,4 и 1,6 раза выше, чем у неоперированных животных.
Таблица 7
Содержание фосфатидилинозитов (ФИ) в цельной
крови (нмоль фосфора ФИ на 1 мг белка) до операции
и на различных этапах заживления ран
Серии М ± m 5 дней 10 дней 15 дней
Интактная
Контроль
Хитозан
Примечание. * – р < 0,05.
М
m
М
m
М
m
5,0 0,2
6,1*
0,1
10,1*
0,1
5,0 0,2
7,2*
0,2
7,9* 0,14
5,0 0,2
8,2*
0,1
5,3* 0,13
Одновременно нами выявлено, что соотношение фосфори­лированных форм ФИФ1/ФИФ в цельной крови у животных контрольной серии изменялось на различных этапах заживле­ния ран кожи и составляло 0,12:0,05 через 5 дней; 0,13:0,08 через 10 дней; 0,19:0,39 через 15 дней после нанесения травмы.
В условиях применения хитозана нами получены несколько иные биохимические показатели содержания ФИ и их фосфо­рилированных форм в цельной крови при заживлении ран кожи у животных.
Количество ФИ в цельной крови через 5 дней после операции у крыс этой серии в среднем в 2,02 раза выше их значений у не­оперированных животных. Изменение содержания ФИ в цельной крови у оперированных животных сопровождались отчетливыми
80