Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Модуль «Клетка». Содержание лекций, контрольные вопросы, тесты. Методическое пособие

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
07.09.2026
Размер:
1 Мб
Скачать
☆
2. Метод фиксации напряжения (voltage clamp).
Принципиальная схема установки для измерения ионных токов
методом фиксации мембранного потенциала [Рубин, 1989].
У2 – дифференциальный усилитель с высоким коэф­фициентом усиления;
Hа один вход усилителя подается pазность потенци­алов между измеpительным микpоэлектpодом Эи и на­pужным электpодом сpавнения Эс, т.е. мембpанный по­тенциал клетки, котоpый измеpяется усилителем У1. Hа втоpой вход усилителя У2 поступает командный потен­циал ϕ. Если командный потенциал ϕ pавен потенциалу покоя мембpаны ϕМ, напpяжение на выходе диффеpенци­ального усилителя pавно нулю, пpи этом в цепи, включа­ющей токовый микроэлектpод Эт, клеточную мембpану и электpод сpавнения, тока нет. Если командный потенци­ал отличается от потенциала покоя, на выходе диффеpен­циального усилителя возникает напpяжение пpопоpцио­нальное pазности потенциалов (ϕ-ϕМ). В этом случае по цепи обpатной связи чеpез токовый микpоэлектpод Эт, клеточную мембpану и электpод сpавнения Эс потечет электpический ток, который сместит потенциал на мем­бране, приближая его к заданному значению потенциала
Первоначально проводится так же, как patch-clamp, но пропускают ток противоположный по знаку, но рав­ный по абсолютной величине ионному току. В результате трансмембранная разность потенциалов не изменяется. Это дает возможность изучить ионный ток.
61
3. «Русский метод».
Это модификация patch-clamp. Отличие лишь в том, что добавляют различные фармакологические препараты и блокаторы ИК, затем смотрят результат.
Общая физиология возбудимых тканей.
1. Открытие животного электричества.
1. Наблюдение биоэлектрических явлений.
В конце XVIII века (1786 год) профессор анатомии Болонского университета Луиджи Гальвани провел ряд опытов, положивших начало целенаправленным иссле­дованиям биоэлектрических явлений.
Первый опыт Гальвани.
Опыт состоит в том, что при соприкосновении нерв­но-мышечного препарата с биметаллическим пинцетом наблюдается сокращение мышцы.
Готовят нервно-мышечный препарат из двух нераз­деленных задних лапок лягушки. Препарат обильно оро­шают раствором Рингера. Поднимают одну браншу би­металлического пинцета под корешки крестцового отдела спинного мозга, не касаясь препарата другой браншей. В случае соприкосновения второй бранши с мышцами бедра лягушки возникает сокращение мышц всего препарата, ча­стота которого соответствует частоте соприкосновений.
Гальвани высказал предположение о том, что сокра­щение мышц является следствием воздействия на них электричества, источником которого выступают «живот­ные ткани» – мышцы и нервы.
62
Однако другой итальянский исследователь – физик и физиолог Вольта оспорил это заключение, по его мне­нию, причиной сокращения мышц был электрический ток, возникающий в области контакта двух разнородных материалов (медь и железо – гальваническая пара) с тка­нями лягушки.
С целью проверки своей гипотезы Л. Гальвани провел второй опыт.
Второй опыт Гальвани.
Готовят препарат задней лапки лягушки с седалищным нервом. Затем набрасывают седалищный нерв лягушки на мышцу бедра так, чтобы он одновременно касался по­врежденного и неповрежденного участков мышцы, и на­блюдают сокращение мышц конечности.
Второй опыт Гальвани считается опытом, в котором были получены абсолютные доказательства существова­ния «животного электричества».
Опыт Маттеучи.
Готовят два нервно-мышечных препарата лягушки, накладывают нерв второго препарата на мышцу первого; ритмичное раздражение нерва первого препарата вызыва­ет тетаническое сокращение обеих мышц.
2. Мембранная теория Ходжкина-Хаксли-Катца. Мембранный потенциал.
Первые публикации о способе взаимодействия нерв­ных клеток через специфические контакты, или синап­сы, появились в 1893 году. Открытие синапсов связано с именем испанского ученого Рамона-и-Кахала, который, используя методику импрегнации нейронов серебром Гольджи, обнаружил, что подавляющее большинство нейронов имеют два функционально различных отростка: дендрит и аксон.
63
Рамон-и-Кахал также нашел на поверхности дендри­тов небольшие выросты, которые назвал дендритными шипиками, и выдвинул гипотезу, что места контактов дендритных шипиков с аксонами представляют синапсы, посредством которых осуществляется передача электри­ческого импульса с аксона на дендрит.
Английские ученые Хаксли и Ходжкин в опытах на кальмарах детально изучили механизм работы аксона, который участвует в проведении электрических импуль­сов из тела нейрона либо к соседним нейронам, либо к различным органам и тканям, например мышцам. Длина аксонов может достигать десятков сантиметров. Диаметр 1 мм.
Аксон находится в морской воде. Один электрод по­гружают в аксон, другой – в морскую воду. Измеряют ПП. Авторы погружали микроэлектрод на разную глуби­ну аксона и установили, что величина ПП в разных точках одинакова. Заряд внутри клетки является отрицательным как абсолютно, так и относительно наружной поверхно­сти КМ.
ϕкм
t
А – стимуляция аксона электрическим стимулом прямоугольной
формы; Б – форма потенциала действия, зарегистрированная в
данном опыте. 1 – аксон; 2 – активный электрод; 3 – электрод
сравнения; 4 – усилитель. Стрелками показано направление
распространения возбуждения.
В 1952 году Хаксли и Ходжкин создали математиче­скую модель, увязывающую потенциал действия с разме­ром аксона, а в 1963 получили за исследование Нобелев-
64
скую премию (совместно с австралийским физиологом Эклсом).
Хаксли исследовал синапсы нервных волокон и фи­зико-химические изменения при передаче нервного им­пульса, ионные механизмы возбуждения и торможения в нервной системе. Ходжкин теоретически и эксперимен­тально доказал, что возникновение биопотенциалов свя­зано с избирательной проницаемостью клеточной мем­браны для ионов, разработал и применил оригинальный метод фиксации потенциала на мембране для исследова­ния механизма потенциала действия в нервном волокне. Эклс внес важный вклад в изучение ионных механизмов возбуждения и торможения
Согласно мембранно-ионной теории (теория Ходжки­на-Хаксли-Катца, 1952 г.) непосредственной причиной потенциала покоя (ПП) является неодинаковая концен­трация анионов и катионов в клетке и вне клетки. В нерв­ных и мышечных клетках концентрация калия в 30-40 раз больше, чем вне клетки; концентрация натрия вне клетки в 10-12 раз больше, чем в клетке. Хлора вне клетки в 30-50 раз больше, чем в клетке. В клетке имеется небольшое ко­личество ионов магния. Кальций в свободном состоянии в основном находится вне клетки. Он содержится еще в эндоплазматическом ретикулуме (ЭПР), в гиалоплаз­ме его мало, т.к. это обуславливается от части активным транспортом кальция наружу через КМ, от части пере­мещением его ЭПР (резервуар кальция) и другими орга­неллами (митохондрии), связыванием кальция цитратом, глутаматом.
В клетке есть отрицательные анионы (аспартат, орга­нические фосфаты). Они не могут проходить через КМ из-за больших размеров.
Ионы распределены неравномерно по обе стороны КМ, т.к.:
1. Мембрана для различных ионов различно прони­цаема.
2. в результате работы ионных насосов, транспорти­рующих ионы в клетку и из клетки соответственно концентрационному и электрическому градиентам.
65
Т.е. согласно мембранной теории биоэлектрические потенциалы обусловлены неодинаковой концентрацией ионов калия, натрия, хлора, кальция внутри и вне клет­ки и различной проницаемостью мембраны для них.
Суть теории:
Все клетки имеют электрический заряд, обеспечива­емый неодинаковой концентрацией анионов и катионов внутри и вне клетки. Различная концентрация анионов и катионов внутри и вне клетки является следствием рабо­ты ионных насосов и неодинаковой проницаемости КМ для различных ионов. Однако свойства КМ возбудимых клеток существенно отличается от таковых невозбудимых клеток. При действии раздражителя на клетку возбудимой ткани изменяется проницаемость ее КМ (вначале, как правило, очень быстро изменяется проницаемость КМ для ионов натрия и быстро возвращается к норме и более медленно несколько позже повышается проницаемость для ионов калия и так же более медленно возвращается к норме). Вследствие чего ионы быстро перемещаются согласно электрохимическому градиенту (совокупность концентрационного и электрического градиентов) – это и есть процесс возбуждения. Его основой является ПП (мембранный потенциал). Движущей силой для ионов является электрохимический градиент, а условием дви­жения ионов – увеличение проницаемости КМ.
Регистрация биоэлектрических явлений (ПП и ПД).
Впервые регистрация была осуществлена с помощью гальванометра, одна их клемм которого присоединялась к поврежденному участку мышцы, другая – к неповрежден­ному (Маттеучи, 1838 г), при этом стрелка гальванометра отклонялась. Размыкание цепи гальванометра сопровож­далось возвращением стрелки гальванометра в прежнее (нулевое) положение.
В настоящее время существует много различных ва­риантов регистрации биоэлектрических явлений, но их можно объединить в две основные группы:
1. По местоположению (внутриклеточные и внекле-
точные).
66
2. По числу отводящих электродов (монополярные,
биполярные, мультиполярные).
Электроды могут быть стеклянными и металличе­скими.
В случае монополярного отведения один электрод ак­тивные, второй – индифферентный, его площадь в де­сятки раз больше активного электрода.
При внутриклеточном отведении применяется сте- клянный микроэлектрод, который представляет собой микропипетку с диаметром кончика 0,5-1 мкм. Ми­кроэлектрод заполняется 3 М КCl. В широкую часть микроэлектрода вставляется серебряная проволочка, соединяемая с регистрирующим устройством. Индиф­ферентным клеточным электродом является хлориро­ванная серебряная пластинка. При внутриклеточном отведении клетка способна функционировать в течение нескольких часов.
Микроэлектродный способ регистрации биопотенци­алов обеспечил изучение механизмов создания электри­ческих зарядов клеткой, возникновения возбуждения в живых клетках. Однако еще задолго до появления микро­электродной техники (конец XIX в.) стало ясно, что «жи­вотное электричество» обусловлено процессами, проис­ходящими на КМ (Герман, Дюбуа-Реймон, Бернштейн). В настоящее время достаточно хорошо изучены механиз­мы формирования ПП и ПД, т.е. процесса возбуждения клетки.
Регистрация ПП.
Пока микроэлектрод не проник в клетку, разности по­тенциалов между двумя электродами нет (регистрируется нуль). Когда микроэлектрод проходит в клетку регистри­руется разность потенциалов. При этом за мембранный потенциал принимают потенциал внутренней поверхно­сти относительно наружной, т.е. потенциал покоя (ПП) или мембранный потенциал (МП) – это трансмембранный потенциал (разность электрических потенциалов) между двумя прилегающими к плазмолемме водными фазами (внутриклеточной и внеклеточной), регистрируемый до начала действия раздражителя.
67
Величина ПП довольно вариабельна. Для эритроци­тов он равен –10 мВ, для скелетных мышц –90 мВ, для нервных клеток – 80мВ, для волокон Пуркинье сердца –100мВ.
Непосредственной причиной ПП является различная концентрация анионов и катионов по обе стороны мем­браны. Почему же ионы так расположены? Во-первых, КМ различно проницаема для различных ионов (в покое проницаемость для калия в 25 раз больше проницаемости для натрия, т.к. много «каналов утечки»; крупномолеку­лярные анионы вообще не выходят из клетки, т.к. для них КМ не проницаема. Во-вторых, разность концентрации анионов и катионов внутри и вне клетки поддерживается наличием постоянно работающих ионных помп – белко­вые молекулы – натрий калиевая пампа – АТФ-аза.
Ионные механизмы формирования ПП.
В состоянии покоя калий выходит из клетки, натрий заходит в клетку. В этом состоянии клетка внутри заряже­на отрицательно, а снаружи положительно. Ионы калия выходят из клетки против концентрационного градиента, выносят с собой положительные заряды и заряжают на­ружную поверхность КМ положительно. Внутри клетки остается избыток отрицательных анионов, которые созда­ют отрицательный заряд на внутренней поверхности мем­браны. При чем этот отрицательный заряд во всех точках клетки практически одинаков. Об этом свидетельствует одинаковая величина ПП при введении микроэлектрода на разную глубину внутрь клетки, как это было в опытах Ходжкина, Хаксли, Катца на гигантском аксоне кальма-
68
ра. По мере того как на наружной поверхности мембраны клетки накапливается положительный заряд, формирует­ся электрический градиент, направленный внутрь клетки (т.е. препятствующий дальнейшему выходу ионов калия). Этот процесс продолжается до тех пор, пока не устано­вится МП, т.е. разность потенциалов между наружной и внутренней поверхностью КМ.
Следовательно, калий – основной ион формирования ПП. Об этот свидетельствуют результаты опыта с перфу- зией внутреннего содержимого гигантского аксона кальмара солевыми растворами. При уменьшении концентрации калия в перфузате ПП уменьшается, при увеличении – увеличивается.
В покоящейся клетке устанавливается динамическое равновесие между числом входящих в клетку ионов калия и выходящих из клетки ионов калия. Электрический и кон­центрационный градиенты противодействуют друг другу: согласно концентрационному градиенту калий стремится выйти из клетки, отрицательный заряд внутри клетки и положительный снаружи препятствуют этому. Когда кон­центрационный и электрический градиенты уравновесят друг друга, число выходящих из клетки ионов калия ста­нет рано числу входящих в клетку ионов калия, это ведет к формированию равновесного калиевого потенциала.
Равновесный потенциал – это такой МП, при котором концентрационный и электрический градиенты равны друг другу, но противоположны по направлению, в ре­зультате суммарная движущая сила для диффузии ионов равна нулю, следовательно, поток ионов через КМ пре­кращается.
ϕк – равновесный потенциал для калия.
ϕNa – равновесный потенциал для натрия.
Равновесный потенциал для любого иона можно рас­считать по формуле Нернста (уравнение Нернста):
RT
ϕ
=
рав
ZF [C]
где
ϕ
– равновесный потенциал, создаваемый данным
рав
• ln
[C]
o
i
ионом.
69
[C]o и [C]i – внешняя и внутренняя концентрация ио­нов соответственно;
R – универсальная газовая постоянная;
Т – абсолютная температура;
F – постоянная Фарадея;
Z – валентность.
Равновесный потенциал для ионов калия равен –97 мВ, но реально ПП для миоцита несколько меньше –90 мВ для теплокровных животных, т.к. в его формировании принимают участие и другие ионы.
Роль ионов натрия и хлора в формировании ПП:
Проницаемость КМ в покое для натрия меньше, чем для калия, но она есть. Следовательно, натрий согласно концентрационному и электрическому градиентам стре­мится и в небольшом количестве проходит внутрь клетки, следовательно, уменьшается ПП, т.к. на внешней поверх­ности КМ суммарное число положительно заряженных ионов уменьшается, а часть отрицательных ионов внутри клетки нейтрализуется входящими в клетку положитель­но заряженными ионами натрия. В результате входящий в клетку натрий уменьшает ПП.
Влияние ионов хлора противоположно натрию и за­висит от проницаемости КМ (она в 2 раза меньше, чем для калия). Хлор согласно концентрационному градиенту стремится и проходит в клетку. Препятствует входу хло­ра в клетку электрический градиент, т.к. хлор – отрица­тельно заряженный ион, и в клетке тоже отрицательный заряд. Следовательно, наступает равновесие сил концен­трационного градиента, способствующего входу хлора в клетку, и электрического градиента, препятствующе­го входу хлора в клетку. Поэтому концентрация хлора в клетке 5-10 ммоль\л, вне клетки – 120-130 ммоль\л. При поступлении хлора внутрь клетки число отрицательных зарядов вне клетки уменьшается, а внутри клетки увели­чивается. В результате совместно с имеющимися в клетке отрицательными анионами хлор увеличивает ПП.
Частично, как и вне клетки, ионы натрия и хлора вну­три клетки нейтрализуют друг друга. Следовательно, со-
70
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]